Summary

Mikrobiologiskt inducerad Calcite Nederbörd medierad av<em> Sporosarcina pasteurii</em

Published: April 16, 2016
doi:

Summary

Protocols for microbiologically induced calcite precipitation (MICP) using the bacterium Sporosarcina pasteurii are presented here. The precipitated calcium carbonate was characterized through optical microscopy and scanning electron microscopy (SEM). It is also shown that exposure to MICP increases the compressive strength of sponge.

Abstract

Den särskilda bakterien under utredning här (S. pasteurii) är unik i sin förmåga, under rätt förutsättningar, för att inducera hydrolys av urea (ureolysis) i naturligt förekommande miljöer genom utsöndring av en enzymet ureas. Denna process av ureolysis, genom en kedja av kemiska reaktioner, leder till bildning av kalciumkarbonat fällningar. Detta kallas Mikrobiologiskt Induced Calcite Nederbörd (MICP). De korrekta kulturprotokoll för MICP beskrivs här. Slutligen tillsattes visualiserings experiment under olika typer av mikroskopi utförs för att förstå olika aspekter av utfällningsprocessen. Tekniker som optisk mikroskopi, var Svepelektronmikroskopi (SEM) och röntgenfotoelektronspektroskopi (XPS) användes för att kemiskt karakterisera slutprodukten. Vidare har förmågan hos dessa fällningar för att täppa till porerna i en naturlig poröst medium påvisas genom en kvalitativ experiment där svampbarer användes för att efterlikna en por-nätverk med ett utbud av längdskalor. En svamp bar doppas i odlingsmedium som innehåller de bakteriella cellerna hårdnar på grund av igensättning av dess porer till följd av det kontinuerliga förfarandet enligt kemisk fällning. Detta härdade svamp bar uppvisar överlägsen styrka jämfört med en kontroll svamp bar som blir komprimerad och pressas under inverkan av en pålagd yttre belastning, medan den härdade bar kan stödja samma vikt med liten deformation.

Introduction

Sporosarcina pasteurii är en grampositiv bakterie kan överleva i starkt alkaliska miljöer (pH ~ 10) 1 och är en av de bakteriearter som kan bli en smittämnen av ett fenomen som kallas Mikrobiologiskt Induced Calcite Nederbörd (MICP) 2-4. MICP är ett förfarande varvid utfällning av kalciumkarbonat induceras av vissa mikrober under lämpliga miljöförhållanden. S. pasteurii har antagit betydelse under de senaste åren på grund av dess identifiering som ett möjligt medel för att framkalla betydande volymer av MICP under vissa förutsättningar. Denna möjlighet härrör från det faktum att S. pasteurii har en unik förmåga att utsöndra stora mängder av enzymet ureas. Detta enzym fungerar som en katalysator, främja en accelererad lys av urea (en naturligt förekommande biokemisk förening med utbredd och rikligt utbud) i närvaro av vattenmolekyler. Genom en kaskad av reaktioner, denna process ultimataly leder till generering av negativt laddade karbonatjoner. Dessa joner, i sin tur, reagera med positiva metalljoner som kalcium för att slutligen bilda utfällningar av kalciumkarbonat (kalcit); hence etiketten MICP 5-9.

Processen för MICP har varit kända och studerats under flera decennier 10,11. Under de senaste åren har MICP undersökts för ett brett spektrum av tekniska och miljömässiga tillämpningar, inklusive bottom-up grönt byggande 12, förstärkning av storskaliga strukturer 13,14 och avskiljning av koldioxid och lagring 15,16.

Till exempel, Cunnigham 17 et. al utformat en högtrycks måttlig temperatur flödesreaktor innehållande en Berea sandsten kärna. Reaktorn ympades med bakterier S. fridgidimarina och under förhållanden med superkritisk koldioxid injektion högtrycks, en massiv ansamling av biomassa inuti pore volvolymerna observerades, vilket ledde till mer än 95% reduktion i permeabilitet. Jonkers och Schlangen 18 studerade effekten av vissa särskilda bakteriestammar på självläkande process i betong. Extern vatten transporteras in i pornätverket in genom ytan porerna förväntas att aktivera vilande bakterier som i sin tur bidrar till strukturell styrka via MICP. Tobler 19 et al. har jämfört ureolytic aktiviteten hos S. pasteurii med en inhemsk grundvatten ureolytic mikrokosmos under betingelser som gynnar storskalig MCIP och fann att S. pasteurii har en konsekvent förmåga att förbättra kalcit nederbörd även när ursprungsbefolkningen saknade tidigare ureasaktivitet. Mortensen 20 et.al har studerat effekterna av yttre faktorer som jordart, koncentration av ammoniumklorid, salthalt, syrehalt och lys av celler på MICP. Deras demonstration att den biologiska reningsprocessen är mycket robust med respect till en stor variation i parameterrymden bestyrker lämplighet av denna process för olika storskaliga sanering program som tillhandahålls en riktig anrikningsprocessen för att förstärka bakterierna görs. Phillips 21 et. al utformade experiment för att studera förändringar i permeabilitet och styrka av en sand kolonn och en sandsten kärnan efter injicerades med S. pasteurii kulturer. De fann att medan genomsläppligheten minskade 2 – 4 gånger medan brotthållfastheten ökade tre gånger.

S. pasteurii och dess roll i MICP är ämnen av aktiv forskning och flera frågor som rör mekanismen för kemisk fällning fortfarande inte helt klarlagda. Mot bakgrund av detta är det mycket viktigt att ha en uppsättning konsekventa standardiserade protokoll för att noggrant kultur en lämpligt anrikad lager av S. pasteurii att uppnå MICP. Här, vi beskriva en rigorös protokoll som garanterar repeterbarhet och reproducerbarhet. denna manuscript beskriver detaljerade protokoll för odling S. pasteurii och på lämpligt sätt berika odlingsmediet för att inducera fällning. Processen undersöks genom olika mikroskopiska tekniker såsom optisk och svepelektronmikroskopi (SEM) och röntgenfotoelektronspektroskopi (XPS). Fokus i manuskriptet är på processen för MICP. Rutiner som SEM och SIMS, som är väletablerade standardprotokoll, beskrivs inte separat.

Protocol

OBS: Utför experimentella protokoll i den ordning som beskrivs nedan. Bakteriekulturen protokollet diskuteras i avsnitt 1 (se även figur 1). Avsnitt 2 beskriver protokollet för att berika odlingsmediet med hjälp av externa tillsatser. Avsnitt 3 beskriver protokoll för multi-mode mikroskopi. Vikter av alla de individuella komponenterna kan mätas med användning av en analytisk våg. Volym av varje lösning kan mätas med användning av en volumetrisk cylinder. OBS: Korr…

Representative Results

S. pasteurii vara en alkaliphile 24 kan överleva relativt svåra förhållanden. När det ovan nämnda odlingsprotokoll följs, och S. pasteurii odlas inuti en kammare, bakterierna leder till utfällning av kalciumkarbonat med tiden (figur 2A). Figur 2 (b) visar ett faskontrast optisk mikroskopisk bild av den bakteriella cellpopulationen inom odlingsmediet. Individuella celler kan klart skiljas, med stavliknande former är k…

Discussion

Kritiska steg: Detta manuskript beskriver i detalj protokollen för odling av en livskraftig prov av S. pasteurii. När kulturen har readied, måste det vara lämpligt berikas. Detta är ett viktigt steg avgörande för framgången av försöket eftersom en underlåtenhet att tillhandahålla den rätta kemiska miljön leder till antingen mycket långa tidsskalor av nederbörd eller en fullständig brist på sådan. S. pasteurii är ganska känslig för flera externa organ och måste od…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We wish to acknowledge the partners in the Helmholtz-Alberta Initiative, the Helmholtz Association and the University of Alberta, for the support resulting from participation in this collaboration. Research funding is provided by the Helmholtz Association’s Initiative and Networking Fund, the participating Helmholtz Centers and by the Government of Alberta through Alberta Environment’s ecoTrust program.

Dr. Tanushree Ghosh is gratefully acknowledged for her critical inputs at a number of crucial stages.

Materials

Petridish Fisher Scientific FB0875712 Petridishes being used as Agar plate
Pyrex Flasks Fisher Scientific S63268 Corning Erlenmeyer
Tris-Base Promega H5133 being used to make Tris-Buffer
Hydrochloric Acid Sigma-Aldrich H9892 1.0 N, Bioreagent, suitable for cell culture
Agar Powder Sigma-Aldrich A1296 microbiology tested, plant cell culture tested, cell culture tested, powder
Ammonium Sulphate Sigma-Aldrich A4418 for Molecular Biology
Yeast extract powder Sigma-Aldrich 51475
Measuring Cylinder Cole-Parmer CP08559GC Cole-Parmer Class A Graduated Cylinder w/Cal Cert,TC;1000ml,1/Pk
Analytical Balance OHAUS AX124E being used to measure weight of reagents
Autoclave Brinkmann 58619000
Autoclave Tape VWR 52428864
Aluminum Foil Sigma-Aldrich Z185140 being used to seal the flask before placing it in Autoclave
Bacterial Stock Cedarlane 11859 -80°C stock of S. pasteurii, ATCC No. is mentioned against Cat. No.
Mline Single-Channel Mechanical Pipettors, Variable Volume Biohit 725010 Marketed by VWR under catalog number 14005976
Micropipette Tip Fisher Scientific 212772B Used for scratching Agar plates
Incubator Binder 80079098 Microbiology Incubator,BF Series
Shaking Incubator VWR 14004300 VWR Signature Benchtop Shaking Incubators
Phosphate Buffer Saline (PBS)  Sigma-Aldrich P7059
BD Falcon Express Pipet-Aid Pipetting Device BD Biosciences 357590 Marketed by VWR under catalog number 53106220
Parafilm Sigma-Aldrich P7793 Being used to seal Agar plates
Urea Sigma-Aldrich U1250 Enrichment for nutrient medium
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich S8875 Enrichment for nutrient medium
Calcium chloride Sigma-Aldrich C1016 Enrichment for nutrient medium

References

  1. Gibson, T. An investigation of the Bacillus pasteurii group. Journal of Bacteriology. 28, 491-502 (1934).
  2. Greenfield, L. J. Metabolism and concentration of calcium and magnesium and precipitation of calcium carbonate by a marine bacterium. Annals of the New York Academy of Sciences. 109, 23-45 (1963).
  3. Phillips, A. J. Engineered applications of ureolytic biomineralization: a review. Biofouling. 29, 715-733 (2013).
  4. Dhami, N. K., et al. Biomineralization of calcium carbonates and their engineered applications: a review. Frontiers in microbiology. 4, 314 (2013).
  5. Cuthbert, M. O., et al. Controls on the rate of ureolysis and the morphology of carbonate precipitated by S. Pasteurii biofilms and limits due to bacterial encapsulation. Ecological Engineering. 41, 32-40 (2012).
  6. Okwadha, G. D., et al. Optimum conditions for microbial carbonate precipitation. Chemosphere. 81, 1143-1148 (2010).
  7. Stocks-Fischer, S., et al. Microbiological precipitation of CaCO3. Soil Biology and Biochemistry. 31, 1563-1571 (1999).
  8. Lauchnor, E. G., et al. Bacterially induced calcium carbonate precipitation and strontium coprecipitation in a porous media flow system. Environmental science & technology. 47, 1557-1564 (2013).
  9. Al Qabany, A., et al. Factors Affecting Efficiency of Microbially Induced Calcite Precipitation. Journal of Geotechnical and Geoenvironmental Engineering. 138, 992-1001 (2012).
  10. Morita, R. Y. Calcite precipitation by marine bacteria. Geomicrobiology Journal. 2, 63-82 (2009).
  11. Chafetz, H. S. Marine peloids: A product of bacterially induced carbonate precipitation. Journal of Sedimentary Petrology. 56, 812-817 (1986).
  12. Whiffin, V. S. . Microbial CaCO3 precipitation for the production of biocement. , (2004).
  13. Paassen, L. A., et al. Scale up of BioGrout: a biological ground reinforcement method. Proceedings of the 17th International Conference on Soil Mechanics and Geotechnical Engineering. , 2328-2333 (2009).
  14. Cunningham, A. B., et al. Microbially enhanced geologic containment of sequestered supercritical CO2. Energy Procedia. 1, 3245-3252 (2009).
  15. Mitchell, A. C., et al. Biofilm enhanced geologic sequestration of supercritical CO2. International Journal of Greenhouse Gas Control. 3, 90-99 (2009).
  16. Cunningham, A. B., et al. Reducing the risk of well bore leakage of CO2 using engineered biomineralization barriers. Energy Procedia. 4, 5178-5185 (2011).
  17. Jonkers, H. M., et al. Application of bacteria as self-healing agent for the development of sustainable concrete. Ecological Engineering. 36, 230-235 (2010).
  18. Tobler, D. J., et al. Transport of Sporosarcina pasteurii in sandstone and its significance for subsurface engineering technologies. Applied Geochemistry. 42, 38-44 (2014).
  19. Mortensen, B. M., et al. Effects of environmental factors on microbial induced calcium carbonate precipitation. Journal of applied microbiology. 111, 338-349 (2011).
  20. Phillips, A. J., et al. Potential CO2 leakage reduction through biofilm-induced calcium carbonate precipitation. Environmental science & technology. 47, 142-149 (2013).
  21. vander Heide, P. . X-ray Photoelectron Spectroscopy: An introduction to Principles and Practices. , (2011).
  22. Wiley, W. R., et al. Requirement of an alkaline pH and ammonia for substrate oxidation by Bacillus pasteurii. Journal of Bacteriology. 84, (1962).
  23. Tagliaferri, F., et al. Observing strain localisation processes in bio-cemented sand using x-ray imaging. Granular Matter. 13, 247-250 (2011).
  24. Kumar, A., et al. Microscale confinement features can affect biofilm formation. Microfluidics and Nanofluidics. 14, 895-902 (2012).
  25. Valiei, A., et al. A web of streamers: biofilm formation in a porous microfluidic device. Lab on a chip. 12, 5133-5137 (2012).
  26. . LIVE/DEAD Bacterial Viability kit, Two-color bacterial viability assay Available from: https://tools.lifetechnologies.com/content/sfs/manuals/mp07007.pdf (2004)
check_url/fr/53253?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Bhaduri, S., Debnath, N., Mitra, S., Liu, Y., Kumar, A. Microbiologically Induced Calcite Precipitation Mediated by Sporosarcina pasteurii. J. Vis. Exp. (110), e53253, doi:10.3791/53253 (2016).

View Video