Summary

Forberedelse og Photoacoustic Analyse af Cellular køretøjer indeholdende guld nanorods

Published: May 02, 2016
doi:

Summary

We show the preparation and address the feasibility of cellular vehicles containing gold nanorods for the photoacoustic imaging of cancer.

Abstract

Guld nanorods er attraktive for en række biomedicinske anvendelser, såsom photothermal ablation og Photoacoustic billeddannelse af cancer, takket være deres intense optisk absorbans i det nærinfrarøde vindue, lav cytotoksicitet og potentiale til hjem i tumorer. Men deres levering til tumorer stadig et problem. En innovativ tilgang består i udnyttelsen af tropisme af tumor-associerede makrofager, som kan belastes med guld nanorods in vitro. Her beskriver vi udarbejdelse og Photoacoustic inspektion af cellulære køretøjer, der indeholder guld nanorods. PEGylerede guld nanorods modificeres med kvaternære ammoniumforbindelser, for at opnå et kationisk profil. Ved kontakt med murine makrofager i almindelige petriskåle, er disse partikler viser sig at undergå massiv optagelse i endocytiske vesikler. Så disse celler er indlejret i biopolymere hydrogeler, der anvendes til at verificere, at stabiliteten af ​​Photoacoustic konverteringaf partiklerne tilbageholdes i deres inklusion i cellulære køretøjer. Vi er overbeviste om, at disse resultater kan give ny inspiration til udvikling af nye strategier til at levere plasmoniske partikler til tumorer.

Introduction

Gennem det seneste årti har forskellige plasmoniske partikler, såsom guld nanorods, nanoshells og nanocages, fået stor opmærksomhed til applikationer i biomedicinsk optik 1, 2, 3, 4. I strid med standard guld nanosfærer, disse nyere partikler genlyd i det nærinfrarøde (NIR) vindue, der giver dybeste optiske penetration gennem kroppen og højeste optiske kontrast løbet endogene komponenter 1. Denne funktion har vakt interesse for innovative applikationer, såsom Photoacoustic (PA) billedbehandling og photothermal ablation af kræft. Men en række spørgsmål begrænse den kliniske indtrængning af disse partikler. For eksempel deres optiske aktivering tendens til at inducere deres overophedning og ændre deres funktionelle udformninger mod flere sfæriske profiler, som styrer en photoinstability 5, 6, 7, 8 </sup>, 9. Et andet spørgsmål, der dominerer den videnskabelige debat er deres systemisk levering i tumorer. Især guld nanorods kombinere størrelser, der er ideel til at gennemsyre tumorer, der viser øget permeabilitet og fastholdelse og nem konjugation med specifikke prober af maligne markører. Derfor er deres forberedelse til en direkte injektion i blodstrømmen opfattes som en mulig ordning 10, 11, 12, 13. Men denne rute stadig problematisk, idet de fleste af partiklerne bliver fanget af det mononukleære fagocytsystem 10, 11, 12. Derudover anden bekymring er den optiske og biokemiske stabilitet af partiklerne efter cirkulation gennem kroppen 14. Når partiklerne mister deres kolloid stabilitet og aggregat, kan deres plasmoniske funktioner og varmeoverførsel dynamik lider plasmoniske kobling 15, </sop> 16, 17 og cross-overophedning 18.

På det seneste er begrebet at udnytte tropisme af tumorassocierede makrofager dukket op som et smart alternativ 19, 20, 21. Disse celler holde en medfødt evne til at opdage og gennemsyre tumorer med høj specificitet. Derfor kan ét perspektiv være at isolere disse celler fra en patient, indlæse dem med guld nanorods in vitro og derefter injicere dem tilbage i patienten, med den hensigt at bruge dem som cellulære køretøjer med ansvar for leverancen. En anden fordel ville være at få mere kontrol over den optiske og biokemiske stabilitet af partiklerne, fordi deres biologiske grænseflade ville være konstrueret in vitro. Stadig, opførelser af disse cellulære køretøjer som optiske kontrastmidler har brug for en kritisk analyse.

I dette arbejde, vi beskriver fremstilling og kritiske spørgsmål af cellular køretøjer, der indeholder guld nanorods for PA billeddannelse af kræft. PEGylerede guld nanorods er modificeret med kvarternære ammoniumforbindelser 22, for at opnå et kationisk profil, der forventes at fremme deres interaktion med plasmatiske membraner 23, 24. Disse partikler gennemgår effektiv og uspecifik optagelse fra de fleste cellulære slags, forhåbentlig uden at forstyrre meget med deres biologiske funktioner. Murine makrofager er fyldt med op til så mange som 200, 000 kationiske guld nanorods per celle, som bliver begrænset inden for stramme endocytiske vesikler. Denne konfiguration skulle opstå bekymring på grund af truslen om plasmoniske kobling og på tværs af overophedning inde i disse vesikler. Derfor er makrofagerne indlejret i biopolymere hydrogeler, der efterligner biologiske væv, for at verificere, at de fleste af stabiliteten af ​​PA omdannelse af partiklerne tilbageholdes i overførslen fra vækstmediet til de endocytiske vesikler. Effective målekriterier er udarbejdet med henblik på at måle stabiliteten af ​​PA konvertering under forhold af umiddelbar interesse for PA billeddannelse. En omforme tærsklen er fastsat til den meget indtræden af ​​optisk ustabilitet efter et tog på 50 laserpulser med den typiske gentagelseshastighed på 10 Hz.

Vi er overbeviste om, at disse resultater kan give momentum for udvikling af nye strategier til at levere plasmoniske partikler til tumorer.

Protocol

Bemærk: Alle koncentrationer af guld nanorods er udtrykt i nominelle Au molariteter. Til sammenligning med andre værker, opmærksom på, at en M Au nogenlunde svarer til 20 uM guld nanorods, i vores tilfælde. 1. Forberedelse af kationiske Gold nanorods Bemærk: Fremgangsmåden begynder med syntesen af cetrimoniumbromid (CTAB) -capped guld nanorods af den autokatalytiske reduktion af HAuCl 4 med ascorbinsyre, ifølge protokollen indført ved Nikoobakht…

Representative Results

Her er muligheden for cellulære køretøjer, der indeholder guld nanorods for PA billeddannelse af kræft vist sammen med typiske resultater af protokollen. TEM-billeder i figur 1 viser den sædvanlige udseende af partiklerne efter trin 1 og deres cellulære køretøjer efter trin 2. Fremstillingen af partiklerne og af cellerne for TEM billeddannelse er beskrevet andetsteds 17. Kationiske guld nano…

Discussion

Begrebet at målrette tumor-associerede makrofager fremstår som et stærkt koncept for kræftbekæmpelse 34, 35, 36. Her, i stedet for deres ødelæggelse, er disse celler rekrutteres som cellulære køretøjer til at bringe guld nanorods i en tumor, ved udnyttelse af deres tropisme. Dette perspektiv kræver en tankevækkende design af partiklerne, deres integration i cellerne og deres karakterisering. Vi har fundet, at fotostabilitet af murine makrofager ladet med…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev delvist støttet af Regione Toscana og Det Europæiske Fællesskab inden for rammerne af den ERANET + Projekter LUS BUBBLE og BI-TRE.

Materials

Hexadecyltrimethylammonium bromide Sigma-Aldrich H6269 To synthesize gold nanorods
Gold(III) chloride trihydrate Sigma-Aldrich 520918 To synthesize gold nanorods
Silver nitrate Sigma-Aldrich S6506 To synthesize gold nanorods
L-ascorbic acid Sigma-Aldrich A5960 To synthesize gold nanorods
Sodium borohydride Sigma-Aldrich To synthesize gold nanoseeds
MeO-PEG-SH Iris Biotech PEG1171 To PEGylate gold nanorods. Molecular weight about 5,000 Da
Acetic acid Sigma-Aldrich 320099 To PEGylate gold nanorods and solubilize chitosan
Sodium acetate Sigma-Aldrich S8750 To PEGylate gold nanorods
(11-Mercaptoundecyl)-N,N,N-trimethylammonium bromide Sigma-Aldrich 733305 To modify gold nanorods with quaternary ammonium compounds
Dimethyl sulfoxide Sigma-Aldrich 276855 To solubilize (11-mercaptoundecyl)-N,N,N-trimethylammonium bromide
  Polysorbate 20 Sigma-Aldrich P2287 To centrifuge PEGylated gold nanorods
PBS Lonza BE17-516F To suspend gold nanorods before incubation with cells and to treat pellets of cells
J774a.1 ATCC TIB-67 Monocyte/macrophage murine cell line
DMEM Lonza BE12-707F Cell culture medium
FBS Lonza DE14-801F To be added to cell culture medium
L-glutamine Lonza BE17-605E To be added to cell culture medium
Penicillin/streptomycin Lonza DE17-602E To be added to cell culture medium
Petri dish NEST 705001 Cell culture dish
Cell scraper EuroClone ES7018 To detach cells
Formaldehyde Fluka 47630 To fix cells
Chitosan, low molecular weight  Sigma-Aldrich 448869 75-85% deacetylated. Molecular weight about 120,000 Da
Sodium hydroxyde Sigma-Aldrich 306576 To insolubilize chitosan and generate the hydrogel
Polystyrene cell culture plates NEST 702011 Used as molds to fabricate chitosan hydrogels
Optical parametric oscillator pumped by the third harmonic of a Q-switched Nd:YAG laser Continuum, Santa Clara, USA  Surelite OPO plus Source of optical excitation for photoacoustic tests
Pyroelectric detector  Gentec, Quebec, Canada QE8SP To monitor optical fluence for photoacoustic tests
Pre amplified needle hydrophone Precision Acoustic, Dorset, UK Model with 1 mm sensor diameter and 1-20 MHz frequency range To measure photoacoustic signals

References

  1. Ratto, F., Matteini, P., Centi, S., Rossi, F., Pini, R. Gold nanorods as new nanochromophores for photothermal therapies. J. Biophotonics. (1-2), 4-41 (2011).
  2. Dreaden, E. C., Alkilany, A. M., Huang, X., Murphy, C. J., El-Sayed, M. A. The golden age: gold nanoparticles for biomedicine. Chem. Soc. Rev. 41, 2740-2779 (2012).
  3. Hahn, M. A., Singh, A. K., Sharma, P., Brown, S. C., Moudgil, B. M. Nanoparticles as Contrast Agents for in-Vivo Bioimaging: Current Status and Future Perspectives. Anal. Bioanal. Chem. 399 (1), 3-27 (2011).
  4. Dreaden, E. C., Austin, L. A., Mackey, M. A., El-Sayed, M. A. Size matters: gold nanoparticles in targeted cancer drug delivery. Ther. Deliv. 3 (4), 457-478 (2012).
  5. Manohar, S., Ungureanu, C., Van Leeuwen, T. G. Gold nanorods as molecular contrast agents in photoacoustic imaging: The promises and the caveats. Contrast Media Mol. Imaging. 6 (5), 389-400 (2011).
  6. Cavigli, L., et al. Size Affects the Stability of the Photoacoustic Conversion of Gold Nanorods. J. Phys. Chem. C. 118 (29), 16140-16146 (2014).
  7. Chen, L. -. C., et al. Enhanced photoacoustic stability of gold nanorods by silica matrix confinement. J. Biomed. Opt. 15 (1), 016010 (2010).
  8. Ratto, F., et al. CW laser-induced photothermal conversion and shape transformation of gold nanodogbones in hydrated chitosan films. J. Nanopart. Res. 13, 4337-4348 (2011).
  9. Mercatelli, R., et al. Quantitative readout of optically encoded gold nanorods using an ordinary dark-field microscope. Nanoscale. 5 (20), 9645-9650 (2013).
  10. Von Maltzahn, G., et al. Computationally guided photothermal tumor therapy using long-circulating gold nanorod antennas. Cancer Res. 69 (9), 3892-3900 (2009).
  11. Jokerst, J. V., Cole, A. J., Van De Sompel, D., Gambhir, S. S. Gold nanorods for ovarian cancer detection with photoacoustic imaging and resection guidance via Raman imaging in living mice. ACS Nano. 6 (11), 10366-10377 (2012).
  12. Huang, X., et al. A reexamination of active and passive tumor targeting by using rod-shaped gold nanocrystals and covalently conjugated peptide ligands. ACS Nano. 4 (10), 5887-5896 (2010).
  13. Alkilany, A. M., Thompson, L. B., Boulos, S. P., Sisco, P. N., Murphy, C. J. Gold nanorods: Their potential for photothermal therapeutics and drug delivery, tempered by the complexity of their biological interactions. Adv. Drug Deliv. Rev. 64, 190-199 (2012).
  14. Centi, S., et al. In vitro assessment of antibody-conjugated gold nanorods for systemic injections. J. Nanobiotechnology. 12, 55 (2014).
  15. Jain, P. K., Eustis, S., El-Sayed, M. A. Plasmon coupling in nanorod assemblies: Optical absorption, discrete dipole approximation simulation, and exciton-coupling model. J. Phys. Chem. B. 110 (37), 18243-18253 (2006).
  16. Funston, A. M., Novo, C., Davis, T. J., Mulvaney, P. Plasmon coupling of gold nanorods at short distances and in different geometries. Nano Lett. 9 (4), 1651-1658 (2009).
  17. Mazzoni, M., Ratto, F., Fortunato, C., Centi, S., Tatini, F., Pini, R. Partial Decoupling in Aggregates of Silanized Gold Nanorods. J. Phys. Chem. C. 118 (34), 20018-20025 (2014).
  18. Lapotko, D. O., Lukianova, E., Oraevsky, A. A. Selective laser nano-thermolysis of human leukemia cells with microbubbles generated around clusters of gold nanoparticles. Lasers Surg. Med. 38 (6), 631-642 (2006).
  19. Choi, M. R., et al. A cellular trojan horse for delivery of therapeutic nanoparticles into tumors. Nano Letters. 7 (12), 3759-3765 (2007).
  20. Dreaden, E. C., Mwakwari, S. C., La Austin, ., Kieffer, M. J., Oyelere, A. K., El-Sayed, M. A. Small molecule-gold nanorod conjugates selectively target and induce macrophage cytotoxicity towards breast cancer cells. Small. 8 (18), 2819-2822 (2012).
  21. Yang, T. D., et al. Real-time phase-contrast imaging of photothermal treatment of head and neck squamous cell carcinoma: an in vitro study of macrophages as a vector for the delivery of gold nanoshells. J. Biomed. Opt. 17 (12), 128003 (2012).
  22. Vigderman, L., Manna, P., Zubarev, E. R. Quantitative Replacement of Cetyl Trimethylammonium Bromide by Cationic Thiol Ligands on the Surface of Gold Nanorods and Their Extremely Large Uptake by Cancer Cells. Angew. Chem. Int. Ed. (English). 51 (3), 636-641 (2012).
  23. Richard, J. P., et al. Cell-penetrating peptides: A reevaluation of the mechanism of cellular uptake. J. Biol. Chem. 278 (1), 585-590 (2003).
  24. Delehanty, J. B., Boeneman, K., Bradburne, C. E., Robertson, K., Bongard, J. E., Medintz, I. L. Peptides for specific intracellular delivery and targeting of nanoparticles: implications for developing nanoparticle-mediated drug delivery. Ther. Deliv. 1, 411-433 (2010).
  25. Nikoobakht, B., El-Sayed, M. A. Preparation and growth mechanism of gold nanorods (NRs) using seed-mediated growth method. Chem. Mater. 15 (10), 1957-1962 (2003).
  26. Ratto, F., Matteini, P., Rossi, F., Pini, R. Size and shape control in the overgrowth of gold nanorods. J. Nanopart. Res. 12 (6), 2029-2036 (2009).
  27. Niidome, T., et al. PEG-modified gold nanorods with a stealth character for in vivo applications. J. Control. Release. 114 (3), 343-347 (2006).
  28. Tatini, F., et al. Size dependent biological profiles of PEGylated gold nanorods. J. Mater. Chem. B. 2, 6072-6080 (2014).
  29. Matteini, P., Ratto, F., Rossi, F., Centi, S., Dei, L., Pini, R. Chitosan films doped with gold nanorods as laser-activatable hybrid bioadhesives. Adv. Mater. 22 (38), 4313-4316 (2010).
  30. Matteini, P., Ratto, F., Rossi, F., de Angelis, M., Cavigli, L., Pini, R. Hybrid nanocomposite films for laser-activated tissue bonding. J. Biophotonics. 5 (11-12), 868-877 (2012).
  31. Matteini, P., Tatini, F., Cavigli, L., Ottaviano, S., Ghini, G., Pini, R. Graphene as a photothermal switch for controlled drug release. Nanoscale. 6, 7947-7953 (2014).
  32. Ratto, F., Witort, E., et al. Plasmonic Particles that Hit Hypoxic Cells. Adv. Funct. Mater. 25 (2), 316-323 (2015).
  33. Chithrani, D. B. Intracellular uptake, transport, and processing of gold nanostructures. Molec. Membrane Biol. 27 (7), 299-311 (2010).
  34. Mitchem, J. B., et al. Targeting tumor-infiltrating macrophages decreases tumor-initiating cells, relieves immunosuppression, and improves chemotherapeutic responses. Cancer Res. 73 (3), 1128-1141 (2013).
  35. Mantovani, A., Allavena, P. The interaction of anticancer therapies with tumor-associated macrophages. J. Exp. Med. 212 (4), 435-445 (2015).
  36. Panni, R. Z., Linehan, D. C., DeNardo, D. G. Targeting tumor-infiltrating macrophages to combat cancer. Immunotherapy. 5 (10), 1075-1087 (2013).
  37. Oh, E., et al. Cellular uptake and fate of PEGylated gold nanoparticles is dependent on both cell-penetration peptides and particle size. ACS Nano. 5 (8), 6434-6448 (2011).
  38. Yuan, H., Fales, A. M., Vo-Dinh, T. TAT peptide-functionalized gold nanostars: Enhanced intracellular delivery and efficient NIR photothermal therapy using ultralow irradiance. J. Am. Chem. Soc. 134 (28), 11358-11361 (2012).
  39. Ladest, S., Fales, A. M., Domard, A. Multi-membrane hydrogels. Nature. 452, 76-79 (2008).
  40. Matteini, P., et al. Photothermally activated hybrid films for quantitative confined release of chemical species. Angew. Chem. Int. Ed. (English). 52, 5956-5960 (2013).
  41. Khor, E., Lim, L. Y. Implantable applications of chitin and chitosan. Biomaterials. 24 (13), 2339-2349 (2003).
  42. Kennedy, L. C., et al. T cells enhance gold nanoparticle delivery to tumors in vivo. Nanoscale Res. Lett. 6 (1), 283 (2011).
  43. Pissuwan, D., Valenzuela, S. M., Killingsworth, M. C., Xu, X., Cortie, M. B. Targeted destruction of murine macrophage cells with bioconjugated gold nanorods. J. Nanopart. Res. 9 (6), 1109-1124 (2007).
  44. Jokerst, J. V., Thangaraj, M., Kempen, P. J., Sinclair, R., Gambhir, S. S. Photoacoustic imaging of mesenchymal stem cells in living mice via silica-coated gold nanorods. ACS Nano. 6 (7), 5920-5930 (2012).
  45. Ding, H., et al. Gold nanorods coated with multilayer polyelectrolyte as contrast agents for multimodal imaging. J. Phys. Chem. C. 111 (34), 12552-12557 (2007).
  46. Esposito, G., et al. et al. In vivo laser assisted microvascular repair and end-to-end anastomosis by means of indocyanine green-infused chitosan patches: A pilot study. Lasers Surg. Med. 45 (5), 318-325 (2013).
check_url/fr/53328?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Cavigli, L., Tatini, F., Borri, C., Ratto, F., Centi, S., Cini, A., Lelli, B., Matteini, P., Pini, R. Preparation and Photoacoustic Analysis of Cellular Vehicles Containing Gold Nanorods. J. Vis. Exp. (111), e53328, doi:10.3791/53328 (2016).

View Video