Method Article

Membrane Transport processus analysés par un système hautement parallèle Nanopore Chip à protéine unique Résolution

DOI:

10.3791/53373

August 16th, 2016

In This Article

Summary

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Le protocole présenté décrit l’analyse du transport médié par les protéines membranaires au niveau du transporteur unique à l’aide de bicouches lipidiques sans solvant couvrant les pores. Ceci est réalisé par la création de puces de réseaux de nanopores produites en vrac, combinée à l’acquisition et à l’analyse de données hautement parallèles, permettant la mise en place future de criblages effecteurs de protéines membranaires.

Abstract

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Membrane transport des protéines au niveau de protéine unique échappe encore une analyse détaillée, si le substrat translocation est non-électrogénique. Des efforts considérables ont été faits dans ce domaine, mais les techniques permettant l'analyse automatisée de transport à haut débit en combinaison avec des techniques de bicouches lipidiques sans solvant requis pour l'analyse des transporteurs membranaires sont rares. Cette classe de transporteurs est toutefois crucial dans l'homéostasie cellulaire et donc une cible clé dans le développement de médicaments et de méthodologies pour acquérir de nouvelles connaissances désespérément besoin.

Le manuscrit présenté ici décrit la création et la manipulation d'un roman biopuce pour l'analyse des processus de transport de protéines membranaires médiation à la résolution du transporteur unique. La biopuce est composé de microcavités fermées par nanopores qui est hautement parallèle dans sa conception et peuvent être produits de qualité industrielle et de la quantité. liposomes Protein-hébergeant peuvent être directement appliquées àla surface de la puce formant des bicouches lipidiques pores transmembranaires auto-assemblées à l'aide de SSM-techniques (solide supporté membranes lipidiques). Pores transmembranaires parties de la membrane sont autonomes, fournissant l'interface substrat pour la translocation dans ou hors de l'espace de la cavité, qui peut être suivie par la lecture de fluorescence multispectral en temps réel. La mise en place de procédures normalisées d'exploitation (SOP) permet à la mise en place directe des bicouches lipidiques de protéines hébergeant sur la surface de la puce de pratiquement toutes les protéines de la membrane qui peut être reconstituée fonctionnellement. La seule condition préalable est la mise en place d'un système de lecture fluorescent pour les substrats de transport non électrogènes.

Les applications à haute teneur dépistage sont accomplishable par l'utilisation de microscopes automatisés fluorescents inversés d'enregistrement multiples puces en parallèle. Les grands ensembles de données peuvent être analysées en utilisant le logiciel d'analyse conçu sur mesure librement disponibles. Trois couleurs multiples spectrale fluorescentelecture permet en outre de discrimination de données impartiale dans différentes classes d'événements, ce qui élimine des résultats faussement positifs.

La technologie de la puce est actuellement basée sur SiO 2 surfaces, mais fonctionnalisation supplémentaire en utilisant des surfaces de puces revêtues d' or est également possible.

Introduction

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L'analyse des protéines membranaires est devenue d'un intérêt croissant pour la recherche fondamentale et pharmaceutique au cours des 20 dernières années. Le développement de nouveaux médicaments dépend de l'identification et de la caractérisation détaillée des nouvelles cibles, étant actuellement l'un des facteurs limitants. Le fait que 60% ​​de toutes les cibles médicamenteuses sont des protéines membranaires 1, rend le développement de techniques pour élucider leur fonction la plus importante.

Dans le passé, des techniques pour l'étude des canaux électrogènes et les transporteurs ont été développés dans l....

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Protocol

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1. Préparation du Grand vésicules unilamellaires (LUV)

  1. Nettoyer un ballon à fond rond (10 ml de volume) avec de l'azote gazeux pour éliminer les particules de poussière. Rincer le ballon à fond rond avec de l'éthanol.
    Remarque: L'éthanol résiduel peut être tolérée et ne perturbe pas les étapes ultérieures.
  2. Laver un 1 ml 4x seringue en verre avec du chloroforme, pour éliminer toute contamination. Ajouter 4 ml SoyPC20 (25 mg / ml dans du chloroforme) dans le ballon à fond rond et à doper la solution de lipide DOPE avec une ATTO 390 supplémentaire à une concentration finale de 0,1% en moles.
    Remarque: ....

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Results

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Les membranes de pores transmembranaires peuvent être facilement créées sur la surface de la puce de nanostructures d'une manière auto-assemblée. Toutefois, le processus sous-jacent est toujours délicate et influencée par de nombreux paramètres tels que la taille des liposomes, monodispersité de la population de liposomes, lamellarité, lipides et sel concentration et de surface chimique propriétés. La plupart de ces paramètres ont été soigneusement caractérisés et normalisés dans le prot.......

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Discussion

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La technique présentée ici permet une analyse très parallèle de transport des protéines de la membrane. des systèmes protéiques de la membrane reconstituée peuvent être directement appliquées sur la biopuce, ce qui rend l'adaptation de la théorie, chaque transporteur membranaire ou canaux possibles. l'analyse de transport est seulement limité par la mise en place d'un système de lecture fluorescente, soit par changement direct de fluorescence (translocation des fluorophores ou des substrats marqués par fluor.......

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Disclosures

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Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent.

Acknowledgements

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Nous remercions Barbara Windschiegl pour son aide dans l’établissement des SOP ; Dennis Remme pour son travail sur le logiciel NanoCalcFX et Alina Kollmannsperger, Markus Braner et Milan Gerovac pour leurs suggestions utiles sur le manuscrit. La coopération germano-israélienne (DIP) fournie par la DFG et le ministère fédéral de l’Éducation et de la Recherche à R.T., ainsi que par le ministère fédéral de l’Économie et de la Technologie (ZIM R&D Project) à R.T. et Nanospot GmbH a soutenu ce travail.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
2-(triméthylammonium)éthyl]
méthanethiosulfonate
Toronto Research Chemicals Inc.T792900MTSET ; hydrolisé par l’eau. Conserver au sec à -80 °C. Utiliser immédiatement (30 minutes) après la solubilisation dans le tampon.
Seringue étanche au gaz de 1 mlHamilton#1001
Fiole ronde de 10 mlSchott Duran
2,7 mm billes de verreRothN032.1
2-PropanoleRoth9866.5
30 cm Luer-Lock Extension TubeSarstedt744304
AcétoneRoth5025.5
Bio-Beads SM-2 L’adsorbantBio-Rad152-3920doit être activé avant la première utilisation
CaCl2 DihydratRothHN04.3
CalceinSigmaC0875stocker sombre à -20 ° ; C
Réactif de chloroforme de qualitéVWR Chemicals22711324
DOPEATTO390ATTO-TECAD 390-165stocker sombre à -20 ° ; C
Éthanol absoluSigma-Aldrich32205
Injekt Seringue à usage uniqueBraun460 60 51V
Injekt-F Seringue à usage uniqueBraun91 66 017V
Pinces à keckSchottKC29
L-&alpha ;-Phosphatidylcholine, 20 % (soja)Avanti Polar Lipids5416016stocker sous gaz inerte à -20 ° ; C
NaCl 99,5 % par anRoth3957.2
Nanopore E100 wafer/chipsMicromotive (Mayence/Allemagne)disponible sur demande
Nucleopore Track-Etch Membrane 0.4 µ ; mWhatman800282
Oregon Green Dextran 488 (70 kDa)life TechnologiesD-7173stocker sombre à -20 ° ; C
Oy647Luminartis (Mü ; nster/Allemagne)OY-647-T-1mgse conserve sombre à -20 ° ; C
seringue rotiabo, non stérile, taille des pores 0,22 & micro ; mRothP 818.1
Sephadex G-50Sigma-AldrichG5080Matériau de colonne pour chromatographie d’exclusion stérique
Silastic MDX4-4210Dow CorningAgent de durcissement pour la fixation des copeaux sur le support en verre
de couverture collant-Slide 8 puitsibidi80828Chambre multipuits pour le montage sur des lames de verre (porte-copeaux)
Robinet d’arrêt à trois voies bleuSarstedt744410001
Tris Pufferan 99.9 % Ultra QualitéRoth5429.2
Triton-X 100Roth6683.1
Whatman 0.2 µ ; m filtre à membrane en nitrate de celluloseRothNH69.1
NomEntrepriseNuméro de catalogueComments
>Equipment
Bü ; chi 461bain-marie Bü ; chi
Bü ; chi Rotavapor RE 111Bü ; Specttrophtomètre de fluorescence de l’éclipse de Chi
Cary  ;Varian
LiposoFast Mini ExtruderAvestin
Pompe à membrane  ;Vaccubrand15430
Nanosight Microscope de suivi des nanoparticulesMalvern / NanosightLM 14C
Microscope NyONESynentecdisponible sur demande
Contrôle de la pompeVaccubrandCVC 2II
Bain sonicateur Sonorex RK100HBrandelin31200001107477
Pompe à vide RC5Vaccubrand1805400204
Bain-marie W13Haake002-9910
Nettoyeur plasma PDC-37GHarrick PlasmaPDC-37G
NomEntrepriseNuméro de catalogueComments
Software
ImageJhttp://imagej.nih.gov/ij/scientifique de traitement d’imagesopen source
NanoCalcFXLogiciel gratuit d’analyse/évaluation de données http://sourceforge.net/projects/nanocalc/ pour les ensembles de données cinétiques de transport massif
Logiciel analytique NTA 2.3 Logiciel d’acquisitionNanosightpour le suivi des nanoparticules microscope
NTA 2.3 Temperature Comms Logiciel de contrôle deNanosightpour microscope de suivi des nanoparticules
[ Filtration à la électronique Logiciel ) et d’analyse de données température

References

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  1. Yildirim, M. A., Goh, K. I., Cusick, M. E., Barabasi, A. L., Vidal, M. Drug-target network. Nat Biotechnol. 25, 1119(2007).
  2. Hamill, O. P., Marty, A., Neher, E., Sakmann, B., Sigworth, F. Improved patch-clamp techniques for high-resolution current recording from cells and cell-free me....

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