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Article de méthode

Imagerie Structures subcellulaires dans le Embryo Living Zebrafish

11.6K vues

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DOI :

10.3791/53456

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2 avril 2016

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Dans cet article

Résumé

L’imagerie du comportement dynamique des organites et d’autres structures subcellulaires in vivo peut faire la lumière sur leur fonction dans des conditions physiologiques et pathologiques. Ici, nous présentons des méthodes de marquage génétique de deux organites, les centrosomes et les mitochondries, et d’imagerie de leur dynamique dans des embryons de poisson-zèbre vivants à l’aide de la microscopie à grand champ et confocale.

Résumé

L’imagerie in vivo offre un accès sans précédent au comportement dynamique des structures cellulaires et subcellulaires dans leur contexte naturel. La réalisation de telles expériences d’imagerie chez des vertébrés supérieurs tels que les mammifères nécessite généralement un accès chirurgical au système étudié. L’accessibilité optique des poissons-zèbres embryonnaires et larvaires permet de contourner ces procédures invasives et permet l’imagerie dans l’organisme intact. En effet, le poisson-zèbre est maintenant un modèle bien établi pour visualiser les comportements cellulaires dynamiques à l’aide de la microscopie in vivo dans un large éventail de contextes de développement, de la prolifération à la migration et à la différenciation. Un développement plus récent est l’utilisation croissante du poisson-zèbre pour étudier les événements subcellulaires, y compris le trafic mitochondrial et la dynamique des centrosomes. La relative facilité avec laquelle ces structures subcellulaires peuvent être marquées génétiquement par des protéines fluorescentes et l’utilisation de techniques de microscopie optique pour les imager transforment le poisson-zèbre en un modèle in vivo de biologie cellulaire. Nous décrivons ici des méthodes permettant de générer des constructions génétiques qui marquent des organites par fluorescence, en mettant en évidence les mitochondries et les centrosomes comme exemples spécifiques. Nous utilisons le système bipartite Gal4-UAS dans plusieurs configurations pour restreindre l’expression à des types de cellules spécifiques et fournir des protocoles pour générer des poissons transgéniques stables et exprimant transitoirement. Enfin, nous fournissons des lignes directrices pour choisir les méthodes de microscopie optique les plus appropriées pour l’imagerie de la dynamique subcellulaire.

Introduction

L'imagerie in vivo fournit une visualisation directe des comportements cellulaires dans le contexte le plus physiologique. La transparence des embryons de poisson zèbre, leur développement rapide et externe et un riche éventail d'outils génétiques qui permettent l' étiquetage fluorescent ont tous contribué à l'utilisation croissante de la microscopie in vivo pour élucider la dynamique des événements clés du développement. Les études d'imagerie de développement du système nerveux chez le poisson zèbre ont par exemple considérablement élargi notre connaissance du comportement des cellules progénitrices neurales et le sort de leur p....

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Protocole

Toutes les expériences animales ont été réalisées conformément aux réglementations locales du gouvernement de Haute-Bavière (Munich, Allemagne).

1. Étiquetage Organelles et autres structures subcellulaires

NOTE: Ici journaliste génétique construit cette balise centrosomes fluorescence, les mitochondries et les membranes cellulaires sont décrites.

  1. Utiliser des méthodes classiques de clonage 29 pour générer des protéines de fusion qui étiquettent fluorescence centrosomes et les mitochondries. Cloner la séquence codante de centrin4 poisson zèbre (de cetn4) dans le cadre avec....

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Résultats

Ici, l'utilisation du grand champ et la microscopie confocale à la mitochondrie et centrosomes dans la vie des embryons de poisson zèbre image est directement comparé et contrasté. En fonction de la localisation des cellules dans lesquelles la dynamique des organites doivent être examinés et que la fréquence inhérente des événements subcellulaires spécifiques, en général, soit à grand champ ou la microscopie confocale est le meilleur choix. Nous imagé organites dans les neurones RB s.......

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Discussion

Ici, nous démontrons la polyvalence du système d'expression Gal4-UAS aux mitochondries tag fluorescence, centrosomes et les membranes cellulaires de types cellulaires spécifiques in vivo dans des embryons de poisson zèbre. De nombreuses protéines de fusion fluorescentes qui marquent les autres organites ou structures sous - cellulaires peuvent être trouvés dans la littérature et peuvent être obtenus auprès du laboratoire respectif, les sources commerciales ou des dépôts de plasmides non commerciaux (par.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

P.E. est soutenu par la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) Research Training Group 1373 et la Graduate School de la Technische Universität München (TUM-GS). G.P. a été soutenu par TUM-GS. L.T. est soutenu par une bourse de l’EMBO (EMBO ALTF 108-2013). Les travaux de D.P. sur le poisson-zèbre ont été soutenus par la DFG par le biais du Sonderforschungsbereich « Mécanismes moléculaires de la neurodégénérescence » (SFB 596) ; le Center for Integrated Protein Sciences (Munich) et le septième programme-cadre de la Communauté européenne (FP7/2007-2013) dans le cadre de la convention de subvention n° 200611 (MEMOSAD). Il est actuellement boursier de la New York Stem Cell ....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Agarose (2-hydroxyéthylagarose)Sigma-AldrichA4018-10GTempérature de gélification basse Type VII
Chauffe-blocEppendorfThermomixeur compact
Ca(NO3)2 Hydrate de nitrate de calcium, 99,996 %  ;Aldrich202967-50gPour préparer la caméra CCD 30x de Danieau
QimagingRetiga Exi Fast 1394
Ceramic Coated Dumont #5 ForcepsDumont - Fine Science Tools11252-50#5 Forceps
Microscope confocal à balayage laserOlympusFV1000 Fluoview
Chauffage de la paraboleWarner Instrument CorporationDH-35Anneau chauffant
Ethyl 3-aminobenzoate méthanesulfatesel PharmaQTricaïne PharmaQ-25gTricaïne (anesthésique)
Microscope de dissection de fluorescenceLeicaM205 FA
GeneClean kitMP Biomedicals111001200
Plats de culture à fond de verreMatTek CorporationP35G-0-14-CBoîte de Pétri de 35 mm, micropuits de 14 mm, verre de protection n° 0
Aiguilles en verreWorld Precision Instruments Inc.  ;TW100F-4Pour micro-injections
HEPESSigmaH3375-250gPour préparer 30x Graisse sous vide poussé Danieau’s
Dow Corning  ;DCC000001242 150gGraisse au dioxyde de silicium
KCl 99 %Sigma-AldrichS7643-5kgPour préparer 30x
MgSO4.7H2O de Danieau   ; Sulfate de magnésium heptahydraté 98+ % A.C.S réactifSigma-Aldrich230291-500gPour préparer 30x
Microinjecteur de Danieau  ;EppendorfFemtoJet
MicrochargeursEppendorf9300010070.5-20 ul
MicromanipulateurMaerzhaeuser WetzlarMM33 Rechts/00-42-101-0000/M3301R
Porte-micropipetteIntracelP/N 50-00XX-130-1
mMESSAGE mMACHINE SP6 Transcription KitAmbionAM1340Pour transcrire PCS-Transposase
NaCl BioXtra >99.5 %Sigma-AldrichP9541-1kgPour préparer le nanophotomètre
30x Pour mesurer la concentration d’ADN/ARN
Extracteur d’aiguilleSutter InstrumentP-1000Flaming/Brown
NIR Apo 40x/0.80W  ;Objectifà cône d’immersion dans l’eau
Nikon N-Phénylthiourée Grade I, env. 98 %SigmaP7629-10GPTU (empêche la pigmentation)
Boîtes de PétriSarstedt AG  ;82147292 x 16 mm  ;
Moules en plastique  ;Outils scientifiques adaptatifsTU-1Pour les micro-injections
Couvercle en plexiglas avec un trouSurLe trou dans le couvercle en plexiglas doit être 3 mm plus grand que le diamètre de l’objectif du cône de trempage d’eau
Passoire à thé (plastique)Pour collecter les œufs de poisson-zèbre
Contrôleur de températureWarner Instrument CorporationTC-344BDouble température automatique
Contrôleur Pipettes de transfertSarstedt AG  ;86.1171Pipettes de transfert en plastique de 3,5 ml
UMPlanFI 100x/1.00WObjectif à cône d’immersion dans l’eauOlympus
UMPlanFLN 20x/0.50W  ;Olympus
Microscope grand champOlympusBX51WI
PTU (50x Stock)Dissoudre 76 mg de PTU dans 50 ml d’eau distillée
Remuer vigoureusement à température ambiante  ;
Conserver à -20 oC dans 1 ml d’aliquotes
Utiliser à 1x solution de travail
Tricaïne (20x Stock)Dissoudre 200 mg de Tricaïne dans 48 ml d’eau distillée
Ajouter 2 ml de base 1M Tris (pH9)
Ajuster au pH 7  ;
Conserver à -20 oC dans 1 ml d’aliquotes
Utilisation à 1x solution de travail
Solution de Danieau (30x stock)1,740 mM  ; NaCl  ;
21 mM  ;   ;   ;   ;   ; KCl  ;
12 mM  ;   ;   ;   ;   ; MgSO4.7H2O  ;
18 mM  ;   ;   ;   ;   ; Ca (NO3)2
150 mM  ;   ;   ; Tampon HEPES  ;
Eau distillée jusqu’à 1 L  ;
Store à 4 oC  ;
Utilisation à une solution de travail 0,3x
de Danieau mesure

Références

  1. Alexandre, P., Reugels, A. M., Barker, D., Blanc, E., Clarke, J. D. Neurons derive from the more apical daughter in asymmetric divisions in the zebrafish neural tube. Nat Neurosci. 13 (6), 673-679 (2010).
  2. Distel, M., Hocking, J. C., Volkmann, K., Koster, R. W.

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Réimpressions et autorisations

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