Le système inductible de racines latérales (LRIS) permet l’induction synchrone des racines latérales et est présenté pour Arabidopsis thaliana et le maïs.
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Article de méthode
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Le système inductible de racines latérales (LRIS) permet l’induction synchrone des racines latérales et est présenté pour Arabidopsis thaliana et le maïs.
Le développement racinaire latéral contribue de manière significative au système racinaire et est donc crucial pour la croissance des plantes. L’étude de l’initiation radiculaire latérale est cependant fastidieuse, car elle ne se produit que dans quelques cellules à l’intérieur de la racine et de manière imprévisible. Pour contourner ce problème, un système inductible de racine latérale (LRIS) a été développé. En traitant les plantules consécutivement avec un inhibiteur de transport de l’auxine et une auxine synthétique, l’initiation latérale hautement contrôlée de la racine se produit de manière synchrone dans la racine primaire, ce qui permet un échantillonnage abondant d’un stade de développement souhaité. Le LRIS a d’abord été développé pour Arabidopsis thaliana, mais peut également être appliqué à d’autres plantes. En conséquence, il a été adapté pour être utilisé dans le maïs (Zea mays). Un aperçu détaillé des différentes étapes du SIIR dans les deux usines est donné. La combinaison de ce système avec la transcriptomique comparative a permis d’identifier des homologues fonctionnels des gènes d’initiation de la racine latérale d’Arabidopsis chez d’autres espèces comme illustré ici pour le CYCLIN B1 ; 1 (CYCB1 ; 1) Gène du cycle cellulaire chez le maïs. Enfin, les principes qui doivent être pris en compte lors de l’élaboration d’un SIIR pour d’autres espèces végétales sont discutés.
Le système racinaire est crucial pour la croissance des plantes, car il assure l'ancrage et l'absorption de l'eau et les nutriments du sol. Étant donné que l'expansion d'un système racinaire repose principalement sur la production de racines latérales, leur initiation et de la formation ont été largement étudiées. Les racines latérales sont lancés dans un sous-ensemble spécifique de cellules péricycle, appelées cellules fondateurs 1. Dans la plupart des dicotylédones, telles que Arabidopsis thaliana, ces cellules se trouvent au niveau des pôles de protoxylème 2, alors que dans les monocotylédones telles que le maïs, ....
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1. Arabidopsis Protocole SCIF
Note: Le texte se réfère à "petits" ou "grands" expériences à grande échelle. Expériences à petite échelle, telles que l'analyse de la ligne de marqueur et coloration histologique 6, 14, ne nécessitent que quelques échantillons. Expériences à grande échelle, tels que quantitative en temps réel qRT-PCR, micro-arrays 9-11 ou séquençage de l'ARN, exigent une plus grande quantité d'échantillons. En tant que tel, un montant de ~ 1000 plants par échantillon a été utilisé par 11 Vanneste et al. Pour effectuer expérience de puces à ADN après segment de raci....
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Application de la SCIF à Effectuer transcriptomique comparative des processus racine Initiation latéral
Une application de la LRIS est la comparaison et de corrélation des profils d'expression de gènes au cours de la formation de racines latérales chez différentes espèces. Transcriptomique comparative des approches de créer la possibilité d'identifier les gènes orthologues impliqués dans le processus d.......
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Dans le protocole d'Arabidopsis LRIS, il est important de transférer uniquement les plants qui ont poussé entièrement en contact avec le milieu de croissance contenant l'APM. Cela garantit que l'initiation de racine latérale est bloquée sur toute la longueur des racines. Afin d'éviter de blesser les plantules pendant le transfert, les bras de la pince courbes peuvent être accrochés sous les cotylédons de la plantule. Lors du transfert, assurez-vous que les racines des plantules sont suffisamment.......
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Les auteurs ont rien à révéler.
Les auteurs remercient Davy Opdenacker pour son assistance technique et sa photographie. Nous remercions grandement la Dre Annick Bleys pour ses suggestions utiles afin d’améliorer le manuscrit. Ce travail a été financé par le Programme Interuniversitaire des Pôles d’Attraction IUAP P7/29 'MARS' de la Politique scientifique fédérale belge, par le FWO grant G027313N et par l’Agence pour l’Innovation par la Science et la Technologie, IWT (IR).
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| ARABIDOPSIS LRIS | |||
| Seeds | |||
| Arabidopsis | seeds Col-0type ecotype | ||
| Stérilisation au gaz des graines | |||
| de micro-centrifugeuse 1,5 ml | SIGMA-ALDRICH | 0030 125.215 | Eppendorf microtubes 3810X, PCR clean |
| micro-centrifugeuses tubes 2 ml | SIGMA-ALDRICH | 0030 120.094 | Eppendorf Safe-Lock microtubes à centrifuger |
| acide chlorhydrique | Merck KGaA | 1,003,171,000 | 37 % (fumant) pour analyse EMSURE ACS,ISO,Reag. |
| Dessiccateur en verre | SIGMA-ALDRICH | Bécher | |
| micro-tubes à centrifuger en plastique boîte ou support | |||
| Stérilisation à l’eau de Javel des graines | |||
| éthanol | fort Chem-Lab nv | CL00.0505.1000 | Éthanol, abs. 100 % a.r. dilué à 70 % |
| hypochlorite de sodium (NaOCl) | Carl Roth | 9062.3 | 12 % |
| Tween 20 | SIGMA-ALDRICH | P1379 | |
| eau | |||
| milieu de croissance | |||
| Murashige et Skoog mélange de sels | DUCHEFA Biochemie B.V. | M0221-0050 | |
| myo-inositol | SIGMA-ALDRICH | I5125-100G | |
| Acide 2-(N-morpholino)éthanesulfonique (MES) | DUCHEFA Biochemie B.V. | M1503.0100 | |
| Saccharose | VWR, International LLC | 27483.294 | D(+)-Saccharose Ph. Eur. |
| KOH | Merck KGaA | 1050211000 | granulés d’analyse (max. 0,002 % Na) EMSURE ACS,ISO,Reag. Ph Eur |
| Plant Tissue Culture Agar | LabM Limited | MC029 | |
| Chemical d’induction latérale des racines | |||
| N-1-naphtylphtalamique acid (NPA) | DUCHEFA Biochemie B.V. | N0926.0250 | 10 & micro ; M (Arabidopsis) |
| Acide 1-naphtalène acétique (NAA) | DUCHEFA Biochemie B.V. | Réf. N0903.0050 | 10 & micro ; M (Arabidopsis) |
| diméthylsulfoxyde (DMSO) | SIGMA-ALDRICH | 494429-1L | |
| Réalisation d’une maille pour transfert | |||
| nylon mesh | Prosep byba | Mesh en nylon synthétique 20 µ ; m | |
| Manipulation des semis et des semis | |||
| plaques carrées de Pétri | GOSSELIN | BP124-05 | 12 x 12 cm |
| 50 ml Tubes DURAN | SIGMA-ALDRICH | CLS430304 | Corning ; Tubes à centrifuger de 50 ml |
| drigalski | Carl Roth | K732.1 | |
| pipette | |||
| coupe pointes de pipette | Daslab | 162001X | Universal 200, coupe 5 mm de pointe avant autoclave |
| ruban respirant ; | 3M Deutschland GmbH | , réf. 1530-1 | |
| pince à épiler | Fiers nv/sa | K342.1 ; K344.1 | Pince à épiler Dumont type a n° 5 ; Pince à épiler Dumont type e nr 7 |
| Conditions de croissance | |||
| croissance room | 21 ° ; C, continu léger | ||
| Matériaux | Entreprise | Catalogue | Commentaires |
| MAÏS LRIS | |||
| Graines | |||
| Noyaux de | B-73 | ||
| Stérilisation à l’eau de Javel des grains | |||
| bécher | |||
| ; | Fiers nv/sa | C267.1 | |
| hypochlorite de sodium (NaOCl) | Carl Roth | 9062.3 | 12 % |
| Produits chimiques d’induction | |||
| N0926.0250 | 50 & micro ; M (racine primaire de maïs), 25 & micro ; M (racine adventice du maïs) | ||
| Acide acétique 1-naphtalène (NAA) | DUCHEFA Biochemie B.V. | N0903.0050 | 50 & micro ; M (maïs) |
| diméthylsulfoxyde (DMSO) | SIGMA-ALDRICH | 494429-1L | |
| Semis et manipulation des semis | |||
| essuie-mains | en papier Kimberly-Clark Professional* | 6681 | SCOTT Essuie-mains - Rouleau / Blanc ; format feuille (24 x 46 cm) |
| papier de germination des graines | Anchor Paper Company | 10 X 15 38# papier de germination des graines | |
| pince à épiler | Fiers nv/sa | K342.1 ; K344.1 | Pince à épiler Dumont type a n° 5 ; Pince à épiler Dumont type e n° 7 |
| tubes de 250 ml (centrifugeuse) | SCHOTT DURAN | 2160136 | environ 5,6 cm de diamètre et 14,7 cm de hauteur |
| Tubes de 700 ml | DURAN GROUP | 213994609 | cylindres, tube de pied rond, D 60 x 250 |
| rack | pour tubes de maïs, | ||
| eau | |||
| C, lumière continue, 70 % d’humidité relative |
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