Summary

En ny strategi kombinera Array-CGH, hela-exome sekvensering och In Utero elektroporation hos gnagare att identifiera orsakande gener för hjärnan missbildningar

Published: December 01, 2017
doi:

Summary

Periventrikulär nodulär heterotopia (PNH) är den vanligaste formen av missbildning av kortikala utveckling (MCD) i vuxen ålder men dess genetiska grunden förblir okänd i mest sporadiska fall. Vi har nyligen utvecklat en strategi att identifiera nya kandidatgener för MCDs och direkt bekräfta deras orsakande roll i vivo.

Abstract

Fosterskador som involverar hjärnbarken – kallas även missbildningar av kortikala utveckling (MCD) — är viktiga orsaker till utvecklingsstörning och står för 20-40% av läkemedelsresistent epilepsi i barndomen. Högupplösta hjärnavbildning har underlättat i vivo identifiering av en stor grupp av MCD fenotyper. Trots framsteg inom hjärnavbildning, genomanalys och generering av djurmodeller saknas ett enkelt arbetsflöde att systematiskt prioriterar kandidatgener och testa funktionella effekter av förmodad mutationer. För att lösa detta problem, var en experimentell strategi som möjliggör identifiering av romanen orsakande gener för MCD utvecklats och validerats. Denna strategi är baserad på identifierande kandidat genomisk regioner eller gener via array-CGH eller hela-exome sekvensering och karaktärisera effekterna av deras inaktivering eller överuttryck av specifika mutationer utveckla gnagare hjärnan via i utero elektroporation. Denna metod ledde till identifiering av genen C6orf70 , som kodar för en förmodad vesikulär protein, till patogenesen av periventrikulär nodulär heterotopia, en MCD som orsakas av defekta neuronala migration.

Introduction

Hjärnbarken spelar en nyckelroll i kognitiva och intellektuella processer och är involverad i emotionell kontroll samt inlärning och minne. Det är därför inte förvånande att många neurologiska och psykiatriska sjukdomar resultera från missbildningar av kortikala utveckling (MCD). Etiologin till MCD är komplex eftersom både förvärvade och genetiska faktorer är inblandade. Den kumulativa förekomsten av genetiskt bestämd andel MCD är ca 2% och de är sporadiska i de flesta fall. Till exempel incidensen av medfödda hjärna missbildning uppskattades vara högre än 1% i den mänskliga befolkningen, och vissa former av MCD observeras i mer än 14% av alla patienter med epilepsi och hos 40% av svår eller svårbehandlad epilepsi1, 2.

Periventrikulär nodulär Heterotopia (PNH) är en av de vanligaste MCDs och orsakas av onormal migration av nervceller från ventrikulära zonen (VZ) att utveckla hjärnbarken. Fel i nervceller att migrera resultat i kluster av heterotop nervceller längs väggarna i de laterala ventriklarna som vanligtvis kan visualiseras med hjälp av magnetisk resonanstomografi (MRT). Kliniska, anatomiska och imaging funktioner i PNH är heterogena. Noduli varierar från små och ensidiga bilateral och symmetrisk. Vanliga kliniska följdtillstånd inkluderar epilepsi och intellektuella funktionshinder3. Mutationer i genen Filamin A (eller FLNAEN), som kartor i Xq28, hittades i 100% av familjer med X-länkade bilaterala PNH och hos 26% av sporadiska patienter3,4. En sällsynt, recessiv form av PNH orsakas av mutationer i genen ARFGEF2 , som kartor i 20q13, har rapporterats i två consanguineous familjer5. Biallelic mutationer i gener som kodar för receptorn-ligand cadherin para DCHS1 och FAT4 har nyligen upptäckts i nio patienter som drabbas av en multisystemisk sjukdom som inkluderar PNH6. PNH har också associerats med skör X syndrom7, Williams syndrom8, 22q11 microdeletion syndrom9, dubletter på 5 p 1510, borttagningar på 1 p 3611, 5q14.3-q1512, 6 p 2513 och 6q terminal radering syndrom14,15,16,17,18,19, vilket tyder på att ytterligare orsakande gener är utspridda hela genomet. För cirka 74% av sporadiska PNH-patienter återstår emellertid den genetiska grunden vara klarlagd17.

Klassiskt gene mappning metoder såsom array jämförande genomisk hybridisering (array-CGH) har visat sig vara ett kraftfullt verktyg för detektion av sub mikroskopiska kromosomavvikelser, men Regionkommittén genomisk identifieras med hjälp av denna metod är ofta stora och innehåller många gener.

Tillkomsten av massiva parallella sekvensering tekniker (dvs. hela-Exome sekvensering (WES) och Whole-Genome sekvensering (WGS)) har avsevärt minskat både kostnaden och tidsåtgången att sekvensera en hela mänskliga exome eller genomet. Tolkning av WES och WGS data är dock fortfarande utmanande i flesta fall, sedan för varje patient tiotals till hundratals (eller ens tusentals, beroende från vilken typ av analys) varianter ur datafiltrering.

För att påskynda processen att identifiera roman MCD orsakande gener, en roman systematisk strategi som kombinerar array-CGH, var WES och Utero elektroporation (IUE) screening av kandidatgener utformad. IUE gör det möjligt att selektivt inaktivera (eller överuttrycka) specifika gener eller mutationer i gnagare hjärnor, möjliggör snabb utvärdering av deras deltagande i corticogenesis18,19. RNAi medierad-knockdown eller överuttryck av en eller flera kandidatgener förväntas orsaka, när genen associeras med sjukdomsutvecklingen, lokaliserade defekter i neuronala migration och/eller mognad. Efter identifiering av en gen vars inaktivering (eller överuttryck) återger den fenotyp som observerats hos patienter i gnagare, blir det en enastående kandidat för screening i sporadiska patienter med MCD. Använder denna metod, avslöjat vi nyligen den C6orf70 genen (även känd som ERMARD) avgörande bidrag i PNH patogenesen hos hysande 6q27 kromosomala borttagningar16.

Protocol

Etik uttalande: Wistar råttor var parad, underhålls och används i INMED djur anläggningar, i samförstånd med Europeiska unionen och franska lagstiftningen. 1. DNA-extraktion och kvantifiering för Array-CGH och WES Extrahera genomiskt DNA (gDNA) från humanblod leukocyter från patienter med hjälp av en automatiserad DNA isolering robot eller kommersiellt tillgängliga manuell DNA extraktion kit enligt tillverkarens protokollet. Kvantifiera alla prover med en spektrofotometer….

Representative Results

Den experimentella strategi som syftar till att identifiera nya MCD orsakande gener är återgetts i figur 1. Genom att utföra array-CGH i en kohort av 155 patienter med utvecklande hjärnan avvikelser steglöst kombinerar PNH (figur 2A), corpus callosum missbildning, colpocephaly, cerebellär hypoplasi och polymicrogyria som är associerad med epilepsi, ataxi och kognitiv svikt, identifierade …

Discussion

MCDs är viktiga orsaker till utvecklingsstörning och står för 20-40% av resistenta barndom epilepsi1,2. Intresset för MCDs har ökat dramatiskt det senaste decenniet som en följd av två huvudfaktorer. Först är förbättringen i hjärnavbildning (särskilt MRT), som tillåter läkare och forskare att visualisera många missbildningar i hjärnan som inte tidigare kändes igen. Den andra är utvecklingen av genetiska verktyg som har tillåtit identifiering …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Dr. G. McGillivray, Pr. J. Clayton-Smith, Pr. W.B. Dobyns, Pr. P. Striano, Pr. dvs Scheffer, Pr. S.P. Roberston och Pr. S.F. Berkovic för att ge MCD patienter. Vi tackar Dr. F. Michel och D. Mei för tekniska råd och hjälp. Detta arbete stöds av finansiering från EU, sju ramprogram önskan projekt, avtalsnummer: hälsa-F2-602531-2013, (till V.C., R.G., A.R., A.F. och C.C.), INSERM (att A.R. och C.C.), Fondation Jérôme Lejeune (R13083AA till Aronsson, E.P.P och C.C) och Région Provence Alpes Côte d’Azur (APO2014 – DEMOTISKA C.C. och arminn). D.A.K är en EMBO Young Investigator och stöds av FWF beviljar (I914 och P24367).

Materials

Picospritzer III Parker Hannifin Corp P/N 051-0500-900 Intracellular Microinjection Dispense Systems
Fast Green FCF Sigma-Aldrich F7252 Fast green allow visual monitoring of the injection
BTX ECM 830 electroporator BTX Harvard Apparatus 45-0002 The ECM 830 is a Square Wave Pulse generator designed for in vitro and in vivo applications
Microtome HM 650 V Microm 10076838 Microtome HM 650 V vibratome 240V 50/60Hz with vibrating blade
FluoView 300 Olympus The Olympus FluoViewTM 300 is a point-scanning, point-detection, confocal laser scanning microscope designed for biology research application
eCELLence software Glance Vision Technologies eCELLence is software designed for the quantitive analysis of cell migration
Agilent Microarray Scanner Bundle Array slides
for 1 x 244K, 2 x 105K, 4 x 44K or 8 x 15K Agilent Agilent p/n G4900DA, G2565CA or G2565BA
for 1 x 1M, 2 x 400K, 4 x 180K or 8 x 60K Agilent Agilent p/n G4900DA or G2565CA
Hybridization Chamber, stainless Agilent Agilent p/n G2534A Chamber for array CGH hybridization
Hybridization Chamber gasket slides, 5-pack Gasket for array CGH hybridization
for 1-pack microarrays or Agilent Agilent p/n G2534-60003
for 2-pack microarrays or Agilent Agilent p/n G2534-60002
for 4-pack microarrays or Agilent Agilent p/n G2534-60011
for 8-pack microarrays Agilent Agilent p/n G2534-60014
Hybridization oven Agilent Agilent p/n G2545A
Hybridization oven rotator for Agilent Microarray Hybridization Chambers Agilent Agilent p/n G2530-60029
Thermal cycler with heated lid Agilent Agilent p/n G8800A or equivalent Termal cycler for incubations
1.5 mL RNase-free Microfuge Tube Ambion p/n AM12400 or equivalent Microcentrifuge
Magnetic stir bar Corning p/n 401435 or equivalent Instrument for stirring
Qubit Fluorometer Life Technologies p/n Q32857 Instrument for DNA quantification
Qubit dsDNA BR Assay Kit, for use with the Qubit fluorometer Invitrogen p/n Q32850 Kit for Qubit fluorometer
UV-VIS spectrophotometer Thermo Scientific NanoDrop 8000 or 2000, or equivalent Instrument for DNA quantification
P10, P20, P200 and P1000 pipettes Pipetman or equivalent DNA dispensation
Vacuum Concentrator Thermo Scientific p/n DNA120-115 or
equivalent
Instrument to concentrate DNA
SureTag Complete DNA Labeling Kit Agilent p/n 5190-4240 DNA Labeling Kit (for Human Samples)
Purification Columns (50 units) Agilent p/n 5190-3391 DNA Labeling Kit (for Human Samples)
AutoScreen A, 96-well plates GE Healthcare p/n 25-9005-98 DNA Labeling Kit (for Human Samples)
GenElute PCR Clean-Up Kit Sigma-Aldrich p/n NA1020 DNA Labeling Kit (for Human Samples)
Human Genomic DNA p/n G1521 DNA Labeling Kit (for Human Samples)
For CGH microarrays: Promega (female) or p/n G1471 (male) Array CGH control DNA
For CGH+SNP microarrays: Coriell p/n NA18507, NA18517, NA12891, NA12878, or NA18579 Array CGH control DNA
Oligo aCGH/ChIP-on-chip Wash Buffer Kit or Agilent p/n 5188-5226 Array CGH hybridization and wash
Oligo aCGH/ChIP-on-chip Wash Buffer 1 and Agilent p/n 5188-5221 Array CGH hybridization and wash
Oligo aCGH/ChIP-on-chip Wash Buffer 2 Agilent p/n 5188-5222 Array CGH hybridization and wash
Stabilization and Drying Solution Agilent p/n 5185-5979 Array CGH hybridization and wash
Oligo aCGH/ChIP-on-chip Hybridization Kit Agilent p/n 5188-5220 (25) or p/n 5188-5380 (100) Array CGH hybridization and wash
Human Cot-1 DNA Agilent p/n 5190-3393 Array CGH hybridization and wash
Agilent C scanner Agilent Scanner for array CGH slides
SureSelect XT2 Reagent Kit Kit for target enrichment
HiSeq platform (HSQ), 16 Samples Agilent p/n G9621A
HiSeq platform (HSQ), 96 Samples Agilent p/n G9621B
HiSeq platform (HSQ), 480 Samples Agilent p/n G9621C
MiSeq platform (MSQ), 16 Samples Agilent p/n G9622A
MiSeq platform (MSQ), 96 Samples Agilent p/n G9622B
MiSeq platform (MSQ), 480 Samples Agilent p/n G9622C
DNA 1000 Kit Agilent p/n 5067-1504 Kit for the separation, sizing and quantification of dsDNA fragments from 25 to 1000 bp.
High Sensitivity DNA Kit Agilent p/n 5067-4626 Kit for analysis of fragmented DNA or DNA libraries.
AMPure XP Kit Kit for automated PCR purification.
5 mL Agencourt p/n A63880
60 mL Agencourt p/n A63881
450 mL Agencourt p/n A63882
Dynabeads MyOne Streptavidin T1 Isolation and handling of biotinylated nucleic acids
2 mL Life Technologies Cat #65601
10 mL Life Technologies Cat #65602
Quant-iT dsDNA BR Assay Kit, for the Qubit fluorometer DNA quantification
100 assays, 2-1000 ng Life Technologies Cat #Q32850
500 assays, 2-1000 ng Life Technologies Cat #Q32853
Qubit assay tubes Life Technologies p/n Q32856 DNA quantification
SureSelec tXT2 Capture Libraries Agilent depending on the experiment Kit for libraries capture
SureCycler 8800 Thermal Cycler Agilent p/n G8800A DNA amplification
96 well plate module for SureCycler 8800 Thermal Cycler Agilent p/n G8810A DNA amplification
SureCycler 8800-compatible 96-well plates Agilent p/n 410088 DNA amplification
Optical strip caps Agilent p/n 401425 DNA amplification
Tube cap strips, domed Agilent p/n 410096 DNA amplification
Compression mats Agilent p/n 410187 DNA amplification
2100 Bioanalyzer Laptop Bundle Agilent p/n G2943CA DNA amplification
2100 Bioanalyzer Electrophoresis Set Agilent p/n G2947CA DNA amplification
Covaris Sample Preparation System, E-series or S-series Covaris DNA shearing
Covaris sample holders p/n 520078 DNA shearing
Nutator plate mixer BD Diagnostics p/n 421105 or equivalent Plate Mixer
GaIIx Illumina next generation sequencing machine

References

  1. Meencke, H. J., Veith, G. Migration disturbances in epilepsy. Epilepsy Res. 9, 31-39 (1992).
  2. Shorvon, S., Stefan, H. Overview of the safety of newer antiepileptic drugs. Epilepsia. 38 (1), 45-51 (1997).
  3. Parrini, E., et al. Periventricular heterotopia: phenotypic heterogeneity and correlation with Filamin A mutations. Brain. 129 (7), 1892-1906 (2006).
  4. Fox, J. W., et al. Mutations in filamin 1 prevent migration of cerebral cortical neurons in human periventricular heterotopia. Neuron. 21 (6), 1315-1325 (1998).
  5. Sheen, V. L., et al. Mutations in ARFGEF2 implicate vesicle trafficking in neural progenitor proliferation and migration in the human cerebral cortex. Nat Genet. 36 (1), 69-76 (2004).
  6. Cappello, S., et al. Mutations in genes encoding the cadherin receptor-ligand pair DCHS1 and FAT4 disrupt cerebral cortical development. Nat Genet. 45 (11), 1300-1308 (2013).
  7. Moro, F., et al. Periventricular heterotopia in fragile X syndrome. Neurology. 67 (4), 713-715 (2006).
  8. Ferland, R. J., Gaitanis, J. N., Apse, K., Tantravahi, U., Walsh, C. A., Sheen, V. L. Periventricular nodular heterotopia and Williams syndrome. Am J Med Genet A. 140 (12), 1305-1311 (2006).
  9. van Kogelenberg, M., et al. Periventricular heterotopia in common microdeletion syndromes. Mol Syndromol. 1 (1), 35-41 (2010).
  10. Sheen, V. L., et al. Periventricular heterotopia associated with chromosome 5p anomalies. Neurology. 60 (6), 1033-1036 (2003).
  11. Neal, J., Apse, K., Sahin, M., Walsh, C. A., Sheen, V. L. Deletion of chromosome 1p36 is associated with periventricular nodular heterotopia. Am J Med Genet A. 140 (15), 1692-1695 (2006).
  12. Cardoso, C., et al. Periventricular heterotopia, mental retardation, and epilepsy associated with 5q14.3-q15 deletion. Neurology. 72 (9), 784-792 (2009).
  13. Cellini, E., et al. Periventricular heterotopia with white matter abnormalities associated with 6p25 deletion. Am J Med Genet A. 158 (7), 1793-1797 (2006).
  14. Bertini, V., De Vito, G., Costa, R., Simi, P., Valetto, A. Isolated 6q terminal deletions: an emerging new syndrome. Am J Med Genet A. 140 (1), 74-81 (2006).
  15. Dobyns, W. B., et al. Consistent chromosome abnormalities identify novel polymicrogyria loci in 1p36.3, 2p16.1-p23.1, 4q21.21-q22.1, 6q26-q27, and 21q2. Am J Med Genet A. 146 (13), 1637-1654 (2008).
  16. Conti, V., et al. Periventricular heterotopia in 6q terminal deletion syndrome: role of the C6orf70 gene. Brain. 136 (11), 3378-3394 (2013).
  17. Sheen, V. L., et al. Etiological heterogeneity of familial periventricular heterotopia and hydrocephalus. Brain Dev. 26 (5), 326-334 (2004).
  18. Jaglin, X. H., et al. Mutations in the beta-tubulin gene TUBB2B result in asymmetrical polymicrogyria. Nat. Genet. 41 (6), 746-752 (2009).
  19. Falace, A., et al. TBC1D24 regulates neuronal migration and maturation through modulation of the ARF6-dependent pathway. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (6), 2337-2342 (2014).
  20. Lunter, G., Goodson, M. Stampy: a statistical algorithm for sensitive and fast mapping of Illumina sequence reads. Genome Res. 21 (6), 936-939 (2011).
  21. Pagnamenta, A. T., et al. Exome sequencing can detect pathogenic mosaic mutations present at low allele frequencies. J Hum Genet. 57 (1), 70-72 (2012).
  22. Yu, J. Y., DeRuiter, S. L., Turner, D. L. RNA interference by expression of short-interfering RNAs and hairpin RNAs in mammalian cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 99 (9), 6047-6052 (2002).
  23. Bai, J., et al. RNAi reveals doublecortin is required for radial migration in rat neocortex. Nat Neurosci. 6 (12), 1277-1283 (2003).
  24. Carabalona, A., et al. A glial origin for periventricular nodular heterotopia caused by impaired expression of Filamin-A. Hum Mol Genet. 21 (5), 1004-1017 (2012).
check_url/fr/53570?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Conti, V., Carabalona, A., Pallesi-Pocachard, E., Leventer, R. J., Schaller, F., Parrini, E., Deparis, A. A., Watrin, F., Buhler, E., Novara, F., Lise, S., Pagnamenta, A. T., Kini, U., Taylor, J. C., Zuffardi, O., Represa, A., Keays, D. A., Guerrini, R., Falace, A., Cardoso, C. A Novel Strategy Combining Array-CGH, Whole-exome Sequencing and In Utero Electroporation in Rodents to Identify Causative Genes for Brain Malformations. J. Vis. Exp. (130), e53570, doi:10.3791/53570 (2017).

View Video