Summary

Bioprinting Cellularized Konstrukt användning av en vävnadsspecifik Hydrogel Bioink

Published: April 21, 2016
doi:

Summary

Vi beskriver en uppsättning protokoll som tillsammans ger en vävnadsliknande hydrogel bioink som funktionella och livskraftiga 3-D konstruktioner vävnads kan bioprinted för användning i in vitro screeningsapplikationer.

Abstract

Bioprinting has emerged as a versatile biofabrication approach for creating tissue engineered organ constructs. These constructs have potential use as organ replacements for implantation in patients, and also, when created on a smaller size scale as model “organoids” that can be used in in vitro systems for drug and toxicology screening.

Despite development of a wide variety of bioprinting devices, application of bioprinting technology can be limited by the availability of materials that both expedite bioprinting procedures and support cell viability and function by providing tissue-specific cues. Here we describe a versatile hyaluronic acid (HA) and gelatin-based hydrogel system comprised of a multi-crosslinker, 2-stage crosslinking protocol, which can provide tissue specific biochemical signals and mimic the mechanical properties of in vivo tissues.

Biochemical factors are provided by incorporating tissue-derived extracellular matrix materials, which include potent growth factors. Tissue mechanical properties are controlled combinations of PEG-based crosslinkers with varying molecular weights, geometries (linear or multi-arm), and functional groups to yield extrudable bioinks and final construct shear stiffness values over a wide range (100 Pa to 20 kPa). Using these parameters, hydrogel bioinks were used to bioprint primary liver spheroids in a liver-specific bioink to create in vitro liver constructs with high cell viability and measurable functional albumin and urea output. This methodology provides a general framework that can be adapted for future customization of hydrogels for biofabrication of a wide range of tissue construct types.

Introduction

Under de senaste åren har en mängd olika tekniker blir tillgängliga som tar upp behovet av alternativa källor till funktionella organ och vävnader genom att försöka tillverka eller biofabricate, dem. Bioprinting har dykt upp som en av de mest lovande av dessa tekniker. Bioprinting kan betraktas som en form av robot additiv tillverkning av biologiska delar, som kan användas för att bygga eller mönster livskraftig organliknande eller vävnadsliknande strukturer i 3 dimensioner. 1 I de flesta fall utnyttjar bioprinting en 3-dimensionell (3 -D) utskriftsenhet som styrs av en dator för att sätta in celler och biomaterial i exakta positioner, vilket rekapitulera anatomiskt liknande fysiologiska arkitekturer. 2 Dessa enheter ut en "bioink", som kan ta formen av cellaggregat, celler inkapslade i hydrogeler eller viskösa vätskor, eller cellsådd mikrobärare, såväl som cellfria polymerer som ger mekaniska struktur eller fungera som cellfritt placeholders. 3,4 Efter bioprinting processen, kan den resulterande strukturen mognat till funktionell vävnad eller organstrukturer och används för sitt avsedda slut ansökan. 5,6 Hittills en komplett fullt fungerande människa-sized organ har inte skrivits ut, men det är fortfarande den främsta långsiktiga mål för bioprinting forskning och utveckling. 2 emellertid småskaliga "organoid" vävnadskonstrukten förs för närvarande i ett antal applikationer, inklusive patologi modellering, läkemedelsutveckling och toxikologi screening.

En av de största hindren som forskare har stött på vid tillämpningen bioprinting tekniken är att mycket få material har utvecklats för det uttryckliga syftet att bioprinting. För att effektivt lyckas bioprinting måste ett biomaterial uppfylla 4 grundläggande krav. Biomaterialet måste ha 1) lämpliga mekaniska egenskaper för att möjliggöra avsättning (oavsett om det strängsprutning genom ett munstycke som en gel eller en inkjet som en droppe), 2) förmågan att hålla sin form som en del av en 3-D struktur efter avsättning, 3) förmåga för användaren kontroll av de 2 tidigare egenskaper, och 4) en cell vänlig och stödjande miljö alls faser av bioprinting förfarande. 7 Historiskt bioprinting arbete har ofta försökt att använda befintliga traditionella biomaterial i bioprinting enheter utan hänsyn till deras kompatibilitet, i stället för att utforma ett biomaterial för att ha de egenskaper som är nödvändiga för bioprinting och efterföljande efterutskriftstillämpningar.

En mängd olika bioinks har nyligen utvecklats för att på ett bättre gränssnitt med avsättningen och tillverkning hårdvara. Standard hydrogel system utgör stora problem eftersom de finns i allmänhet antingen föregångare Fluid Solutions med otillräckliga mekaniska egenskaper, eller polymeriserade hydrogeler som om de utskrivna kan täppa munstycken eller blir delas upp på extruderingsprocessen. Vårt team, liksom andrasrs, har undersökt olika hydrogelformuleringar att ta itu med dessa bioprinting problem, bland annat cell sfäroid utskrift i hydrogel substrat, 5,8 cell och hydrogel filament extrudering från microcapillary rör, 9-11 strängsprut hyaluronsyra (HA) -guld nanopartiklar hydrogeler med dynamiska tvärbindningsegenskaper , 12 temporal kontroll av hydrogel styvhet med användning av fotopolymeriserbara metakrylerade HA och gelatin, 13 fibrinogen-trombin-baserade tvärbindning, 14,15 jonisk utbytes alginat-kollagen-geler, 16 och nyligen snabba polymeriserande ultraviolett ljus (UV) -initiated tvärbindning, 17

Dessa exempel visar möjligheten att generera material som kan genom bioprinted effektivt. Men förutom integration med hårdvara, för att framgångsrikt generera livskraftiga och funktionella 3-D vävnad konstruktioner måste biomaterial innehålla biokemiska och mekaniska signaler som stöd för att upprätthålla cellulärlivsduglighet och funktion. Dessa ytterligare faktorer, biokemiska och mekaniska profiler, kan ha en betydande inverkan på den framgångsrika funktion bioprinted vävnadskonstruktioner.

Båda cellerna och den nativa extracellulära matrisen (ECM) är ansvariga för att presentera ett brett spektrum av signalmolekyler, såsom tillväxtfaktorer och andra cytokiner till andra celler. Kombinationen av dessa signaler varierar från vävnad till vävnad, men kan vara extremt potent och inflytelserik vid reglering cell- och vävnads beteende. 18 Under användning av vävnadsspecifika ECM-komponenter från olika organ och genomförande som en hydrogel eller som del av en hydrogel har undersökts med framgång. 19-21 Detta tillvägagångssätt, som är sammansatt av decellularizing en given vävnad, pulverisering den, och lösa upp den, kan användas för att framställa vävnadsspecifika biokemiska signaler från någon vävnad och kan införlivas i 3-D-hydrogel-konstruktioner. 22

Dessutom,det är allmänt dokumenterat att vävnader i kroppen upptar ett brett spektrum av styvheter. 23 Som sådan, förmågan att avstämma de mekaniska egenskaperna hos biomaterial, såsom elasticitetsmodulen E 'eller skjuvning elasticitetsmodul G', är ett användbart verktyg i vävnadsteknik . Såsom beskrivits ovan, kontroll över bioink mekaniska egenskaper möjliggör extrudering baserade biofabrication med användning av en mjuk gel, som sedan kan manipuleras ytterligare genom sekundär tvärbindning vid en senare punkt, vid vilken elasticitetsmodul nivåer kan uppnås som matchar den hos typ målorganet. Till exempel, kan biomaterial anpassas för att matcha en styvhet på 5-10 kPa som en infödd lever, 23 eller matcha en styvhet på 10 till 15 kPa som nativt hjärtvävnad, 24,25 teoretiskt ökar förmågan hos dessa organoids att fungera i ett liknande sätt som deras nativa vävnads motsvarigheter. Inverkan av miljö styvhet på cellfenotyp har explored under de senaste åren, särskilt med avseende på stamceller. Engler et al. Visade att substrat elasticitet understödda i drivande mesenkymala stamceller (MSC) mot linjerna med vävnadens elasticitet matchar den hos substratet. 25 Detta koncept har vidare utforskas för differentiering till muskel, hjärtfunktion, lever fenotyp, hematopoetisk stamcellsproliferering , och underhåll av stamcells terapeutiska potential. 24,26-29 att kunna ställa en hydrogel till olika elasticitetsmoduler är en viktig egenskap hos ett biomaterial som kommer att användas för att biofabricate vävnadskonstrukten. 30

Här beskriver vi ett protokoll som utgör en mångsidig metod som används i vårt laboratorium för att formulera en hydrogel system som kan extrudering bioprinted och anpassade för att 1) ​​innehåller den biokemiska profilen hos en speciell vävnad typ och 2) härma elasticitetsmodulen hos den vävnadstyp . Genom att ta itu med dessa krav, strävar vi efter att provide ett material som kan sammanfatta de fysiokemiska och biologiska egenskaper för in vivo vävnad. 31 Modul hydrogel kompositsystem som beskrivs häri utnyttjar en flertvärbindande tillvägagångssätt för erhållande av extruderbara bioinks, och tillåter en sekundär tvärbindning för att stabilisera och ökar styvheten hos den end produkter för att matcha en rad vävnadstyper. Biochemical anpassning uppfylls genom att använda vävnadsspecifika ECM-komponenter. Som en demonstration, använder vi en leverspecifik variation av denna hydrogel system Bioprint funktionella lever organoid konstruktioner. Protokollet som beskrivs med ett anpassat 3-D bioprinting enhet. I allmänhet kan detta protokoll anpassas till de flesta extrudering-baserade skrivare, specifika utskriftsparametrar varierar kraftigt för varje typ av enhet och kräver testning av användaren.

Protocol

1. Hydrogel Bioink Formuleringar och förberedelser För att tillhandahålla vävnadsspecifika biokemiska profiler, förbereda vävnadsspecifik ECM smälta lösningar som tidigare beskrivits för lever. 20 Obs: I allmänhet kommer denna ECM Digest omfatta 40% av den slutliga hydrogel bioink volym som används. Flera hundra milliliter av ECM uppslutningslösningen kan framställas, alikvoterades och frystes vid -80 ° C för framtida användning. Före hydrogelformulering, upplösa …

Representative Results

När de förfaranden som beskrivs ovan följs korrekt, bör hydrogeler innehåller en biokemisk profil som är specifik för målvävnaden typ, 20 möjliggöra en hög grad av kontroll över bioprinting och slutelasticitetsmodul, 34 och stödja livskraftiga funktionella celler i vävnadskonstruktioner. hydrogel Anpassning För att bäst härma infödda levern, var hydrogelen bioink…

Discussion

Det finns flera komponenter som är kritiska att tänka på när man försöker biofabricate 3-D vävnadskonstrukten, för eventuell användning i människor, eller för in vitro-screening program. Under användning av lämpliga cellulära komponenterna bestämmer slutet potentiella funktionalitet, medan biofabrication enheten själv bestämmer den allmänna metoden för att nå slutkonstruktionen. Den tredje komponenten, biomaterialet, är lika viktigt, eftersom det tjänar dubbla roller. Specifikt måste biom…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna erkänner tacksamt finansiering från Reduction Agency (DTRA) under Space och Naval Warfare Systems Center Pacific (SSC PACIFIC) kontrakt nr N6601-13-C-2027 Defense Threat. Offentliggörandet av detta material utgör inte godkännande av regeringen av resultaten eller slutsatser häri.

Materials

Hyaluronic acid Sigma 53747
Gelatin Sigma G6144
2-Hydroxy-4′-(2-hydroxyethoxy)-2-methylpropiophenone Sigma 410896
Hyaluronic acid and gelatin hydrogel kit (HyStem-HP) ESI-BIO GS315 Kit contains the components Heprasil (thiolated and heparinized hyaluronic acid), Gelin-S (thiolated gelatin), and Extralink (PEGDA)
PEG 8-Arm Alkyne, 10 kDa Creative PEGWorks PSB-887
Primary human hepatocytes Triangle Research Labs HUCPM6
Primary human liver stellate cells ScienCell 5300
Primary human Kupffer cells Life Technologies HUKCCS
Hepatocyte Basal Media (HBM) Lonza CC-3199
Hepatocyte Media Supplement Kit Lonza CC-3198 HCM SingleQuot Kits (contains ascorbic acid, 0.5mL; bovine serum albumin [fatty acid free], 10 mL; gentamicin sulfate/amphotericin B, 0.5mL; hydrocortisone 21-hemisuccinate, 0.5 mL; insulin, 0.5 mL; human recombinant epidermal growth factor, 0.5 mL; transferring, 0.5 mL)
Triton X-100 Sigma T9284 Other manufacturers are ok.
Ammonium hydroxide Fischer Scientific A669 Other manufacturers are ok.
Fresh porcine cadaver tissue n/a n/a
Lyophilizer any n/a
Freezer mill any n/a
Bioprinter n/a n/a The bioprinter described herein was custom built in-house. In general, other devices are adequate provided they support computer controlled extrusion-based printing of hydrogel materials.
Hanging drop cell culture plate InSphero CS-06-001 InSphero GravityPlus 3D Culture Platform

References

  1. Visconti, R. P., et al. Towards organ printing: engineering an intra-organ branched vascular tree. Expert Opin Biol Ther. 10, 409-420 (2010).
  2. Derby, B. Printing and prototyping of tissues and scaffolds. Science. 338, 921-926 (2012).
  3. Fedorovich, N. E., et al. Hydrogels as extracellular matrices for skeletal tissue engineering: state-of-the-art and novel application in organ printing. Tissue Eng. 13, 1905-1925 (2007).
  4. Mironov, V., Boland, T., Trusk, T., Forgacs, G., Markwald, R. R. Organ printing: computer-aided jet-based 3D tissue engineering. Trends Biotechnol. 21, 157-161 (2003).
  5. Boland, T., Mironov, V., Gutowska, A., Roth, E. A., Markwald, R. R. Cell and organ printing 2: fusion of cell aggregates in three-dimensional gels. Anat Rec A Discov Mol Cell Evol Biol. 272, 497-502 (2003).
  6. Mironov, V., Kasyanov, V., Drake, C., Markwald, R. R. Organ printing: promises and challenges. Regen Med. 3, 93-103 (2008).
  7. Skardal, A., Atala, A. Biomaterials for integration with 3-d bioprinting. Ann Biomed Eng. 43, 730-746 (2015).
  8. Mironov, V., et al. Organ printing: tissue spheroids as building blocks. Biomaterials. 30, 2164-2174 (2009).
  9. Norotte, C., Marga, F. S., Niklason, L. E., Forgacs, G. Scaffold-free vascular tissue engineering using bioprinting. Biomaterials. 30, 5910-5917 (2009).
  10. Skardal, A., Zhang, J., Prestwich, G. D. Bioprinting vessel-like constructs using hyaluronan hydrogels crosslinked with tetrahedral polyethylene glycol tetracrylates. Biomaterials. 31, 6173-6181 (2010).
  11. Bertassoni, L. E., et al. Direct-write bioprinting of cell-laden methacrylated gelatin hydrogels. Biofabrication. 6, 024105 (2014).
  12. Skardal, A., Zhang, J., McCoard, L., Oottamasathien, S., Prestwich, G. D. Dynamically crosslinked gold nanoparticle – hyaluronan hydrogels. Adv Mater. 22, 4736-4740 (2010).
  13. Skardal, A., et al. Photocrosslinkable hyaluronan-gelatin hydrogels for two-step bioprinting. Tissue Eng Part A. 16, 2675-2685 (2010).
  14. Skardal, A., et al. Bioprinted amniotic fluid-derived stem cells accelerate healing of large skin wounds. Stem Cells Transl Med. 1, 792-802 (2012).
  15. Xu, T., et al. Hybrid printing of mechanically and biologically improved constructs for cartilage tissue engineering applications. Biofabrication. 5, 015001 (2013).
  16. Xu, T., et al. Complex heterogeneous tissue constructs containing multiple cell types prepared by inkjet printing technology. Biomaterials. 34, 130-139 (2013).
  17. Murphy, S. V., Skardal, A., Atala, A. Evaluation of hydrogels for bio-printing applications. J Biomed Mater Res A. 101, 272-284 (2013).
  18. Badylak, S. F. The extracellular matrix as a biologic scaffold material. Biomaterials. 28, 3587-3593 (2007).
  19. Freytes, D. O., Tullius, R. S., Valentin, J. E., Stewart-Akers, A. M., Badylak, S. F. Hydrated versus lyophilized forms of porcine extracellular matrix derived from the urinary bladder. J Biomed Mater Res A. 87, 862-872 (2008).
  20. Skardal, A., et al. Tissue specific synthetic ECM hydrogels for 3-D in vitro maintenance of hepatocyte function. Biomaterials. 33, 4565-4575 (2012).
  21. Johnson, T. D., Braden, R. L., Christman, K. L. Injectable ECM scaffolds for cardiac repair. Methods Mol Biol. 1181, 109-120 (2014).
  22. Pati, F., et al. Printing three-dimensional tissue analogues with decellularized extracellular matrix bioink. Nat comm. 5, 3935 (2014).
  23. Vanderhooft, J. L., Alcoutlabi, M., Magda, J. J., Prestwich, G. D. Rheological properties of cross-linked hyaluronan-gelatin hydrogels for tissue engineering. Macromol Biosci. 9, 20-28 (2009).
  24. Engler, A. J., et al. Embryonic cardiomyocytes beat best on a matrix with heart-like elasticity: scar-like rigidity inhibits beating. J Cell Sci. 121, 3794-3802 (2008).
  25. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126, 677-689 (2006).
  26. Chaudhuri, T., Rehfeldt, F., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Preparation of collagen-coated gels that maximize in vitro myogenesis of stem cells by matching the lateral elasticity of in vivo muscle. Methods Mol Biol. 621, 185-202 (2010).
  27. Lozoya, O. A., et al. Regulation of hepatic stem/progenitor phenotype by microenvironment stiffness in hydrogel models of the human liver stem cell niche. Biomaterials. 32, 7389-7402 (2011).
  28. Holst, J., et al. Substrate elasticity provides mechanical signals for the expansion of hemopoietic stem and progenitor cells. Nat Biotechnol. 28, 1123-1128 (2010).
  29. Skardal, A., Mack, D., Atala, A., Soker, S. Substrate elasticity controls cell proliferation, surface marker expression and motile phenotype in amniotic fluid-derived stem cells. J Mech Behav Biomed Mater. 17, 307-316 (2013).
  30. Rutz, A. L., Hyland, K. E., Jakus, A. E., Burghardt, W. R., Shah, R. N. A multimaterial bioink method for 3D printing tunable, cell-compatible hydrogels. Adv Mater. 27, 1607-1614 (2015).
  31. Malda, J., et al. 25th anniversary article: Engineering hydrogels for biofabrication. Adv Mater. 25, 5011-5028 (2013).
  32. Kang, H. W., Lee, S. J., Atala, A., Yoo, J. J. Integrated organ and tissue printing methods, system and apparatus. US Patent. , (2011).
  33. Drewitz, M., et al. Towards automated production and drug sensitivity testing using scaffold-free spherical tumor microtissues. Biotechnol J. 6, 1488-1496 (2011).
  34. Skardal, A., et al. A hydrogel bioink toolkit for mimicking native tissue biochemical and mechanical properties in bioprinted tissue constructs. Acta Biomater. 25, 24-34 (2015).
  35. Peattie, R. A., et al. Stimulation of in vivo angiogenesis by cytokine-loaded hyaluronic acid hydrogel implants. Biomaterials. 25, 2789-2798 (2004).
  36. Flynn, L., Prestwich, G. D., Semple, J. L., Woodhouse, K. A. Adipose tissue engineering with naturally derived scaffolds and adipose-derived stem cells. Biomaterials. 28, 3834-3842 (2007).
  37. Flynn, L., Prestwich, G. D., Semple, J. L., Woodhouse, K. A. Adipose tissue engineering in vivo with adipose-derived stem cells on naturally derived scaffolds. J Biomed Mater Res A. 89, 929-941 (2009).
  38. Duflo, S., Thibeault, S. L., Li, W., Shu, X. Z., Prestwich, G. Effect of a synthetic extracellular matrix on vocal fold lamina propria gene expression in early wound healing. Tissue Eng. 12, 3201-3207 (2006).
  39. Duflo, S., Thibeault, S. L., Li, W., Shu, X. Z., Prestwich, G. D. Vocal fold tissue repair in vivo using a synthetic extracellular matrix. Tissue Eng. 12, 2171-2180 (2006).
  40. Liu, Y., Shu, X. Z., Prestwich, G. D. Osteochondral defect repair with autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells in an injectable, in situ, cross-linked synthetic extracellular matrix. Tissue Eng. 12, 3405-3416 (2006).
  41. Liu, Y., et al. Accelerated repair of cortical bone defects using a synthetic extracellular matrix to deliver human demineralized bone matrix. J Orthop Res. 24, 1454-1462 (2006).
  42. Zhang, J., Skardal, A., Prestwich, G. D. Engineered extracellular matrices with cleavable crosslinkers for cell expansion and easy cell recovery. Biomaterials. 29, 4521-4531 (2008).
  43. Serban, M. A., Scott, A., Prestwich, G. D. Unit 10.14, Use of hyaluronan-derived hydrogels for three-dimensional cell culture and tumor xenografts. Curr Protoc Cell Biol. Chapter 10, (2008).
  44. Xu, X., Prestwich, G. D. Inhibition of tumor growth and angiogenesis by a lysophosphatidic acid antagonist in an engineered three-dimensional lung cancer xenograft model. Cancer. 116, 1739-1750 (2010).
  45. Liu, Y., Shu, X. Z., Prestwich, G. D. Tumor engineering: orthotopic cancer models in mice using cell-loaded, injectable, cross-linked hyaluronan-derived hydrogels. Tissue Eng. 13, 1091-1101 (2007).
  46. Skardal, A., Devarasetty, M., Rodman, C., Atala, A., Soker, S. Liver-Tumor Hybrid Organoids for Modeling Tumor Growth and Drug Response In Vitro. Ann Biomed Eng. , (2015).
check_url/fr/53606?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Skardal, A., Devarasetty, M., Kang, H., Seol, Y., Forsythe, S. D., Bishop, C., Shupe, T., Soker, S., Atala, A. Bioprinting Cellularized Constructs Using a Tissue-specific Hydrogel Bioink. J. Vis. Exp. (110), e53606, doi:10.3791/53606 (2016).

View Video