Summary

은 C-FOS 단백질 면역 조직 검색 : 특정 생리적 반응에 관여 중앙 진학의 마커로서 유용한 도구<em> 생체</em> 및<em> 전의 VIVO</em

Published: April 25, 2016
doi:

Summary

Here, we present a protocol based on c-FOS protein immunohistological detection, a classical technique used for the identification of neuronal populations involved in specific physiological responses in vivo and ex vivo.

Abstract

많은 연구는 특정 생리 규정과 관련된 뇌 영역을 식별 매핑 구한다. 프로토-종양 유전자 C-FOS, 즉시 초기 유전자는 다양한 자극에 반응하여 신경 세포로 표현된다. 단백질 생성물을 용이하게 그 활성의 변화를 표시 뉴런의 그룹을 매핑하는 C-FOS 검출의 사용에 이르는 면역 기술로 검출 할 수있다. 이 글에서, 우리는 저산소증 또는 탄산 혈증에 환기 적응에 관여하는 뇌간 신경 인구의 식별에 초점을 맞추었다. 두 가지 방법은 동물의 생체 내에서 관련 신경 세포 인구를 식별하기 위해 설명하고, 생체 deafferented 뇌간 준비한다. 생체 내, 동물. hypercapnic 또는 저산소 가스 혼합물에 노출 된 예 생체 내, deafferented 준비가 저산소 또는 hypercapnic 인공 뇌척수액으로 superfused했다. 두 경우 모두, 하나 제어 생체 내 동물 또는 전자에X 생체 준비가 정상 산소와 normocapnic 조건에서 유지 하였다. 이 두 가지 방법의 비교는 신경 세포의 활성화, 즉의 기원의 결정을 할 수 있습니다 주변 및 / 또는 중앙. 생체 내생체 외, brainstems가 수집, 고정 및 섹션으로 분리되었다. 섹션 제조 하였다되면, C-FOS 단백질의 면역 검출을 저산소 또는 hypercapnic 자극에 의​​해 활성화 된 세포의 뇌간 그룹을 식별하기 위해 만들어졌다. 레이블이 세포는 뇌간 호흡 구조에서 계산되었다. 상기 제어 조건, 저산소증 또는 고탄 산혈증에 비해 따라서 중앙 호흡 드라이브의 적응에 관여하는 신경 전달 경로의 여러 가지 구조적 뇌간 특정 부위에서 C-FOS 표지화 된 세포의 수가 증가 하였다.

Introduction

C- FOS 유전자 1980 1,2 초에 처음 동정 및 유전자 생성물 활성제 특성을 갖는 3,4- 핵 단백질로서 1984 년에 나타내었다. 그것은 신경 자극과 관련된 장기 메커니즘에 참여하고 있습니다. 사실, 신경 활동의 변화는 전사 인자 C-FOS의 생산을 유도 즉시 초기 유전자 C-FOS의 발현을 유도 두 번째 메신저 신호 폭포로 이어집니다. 후자는 늦은 유전자의 발현을 개시함으로써 자극 (4)의 여러 유형의 신경 시스템의 적응 반응에 참여한다. 따라서, 1980 5,6- 말부터, C-FOS 단백질 검출 자주 신경 경로를 매핑하기위한 일반 4 및 중추 신경계 (CNS)의 활성을 유전자 전사에 외생 적 요인의 영향을 연구하기 위해 사용되어왔다 다른 생리에 관여알 조건.

기초 C-FOS 표현은 쥐, 쥐, 고양이, 원숭이, 인간 4 등 다양한 종에서 연구되어왔다. 이로써, 그 표현의 역학은 비교적 잘 알려져있다. 전사 활성화 (5~20 분) 7,8 급이며 mRNA의 축적은 자극 (9)의 발병 후 30 및 45 분 사이에서 최대 값에 도달하고 12 분의 짧은 반감기로 감소한다. 은 C-FOS의 단백질 합성은 mRNA의 축적을 다음 20 ~ 90 분 후 자극 6에서 면역 조직 화학 염색에 의해 검출 될 수있다.

C-FOS 발현 분석 고전 저산소 혈증 또는 10-14에 환기 반응과 관련된 중추 호흡 네트워크를 식별하기 위해 생체 내 연구에 사용된다. 최근에,이 도구는 저산소증 또는 시간에 중앙 호흡 네트워크 적응을 탐구하는 생체 뇌간 준비에 사용 된ypercapnia 15-18. 사실, 이러한 준비는 고전적인 중앙 호흡기 드라이브 (19)에 동화 리듬 활동을 생성합니다. 따라서, 제제의 유형이 완전히 deafferented되는 장점을 가지며, 따라서, C-FOS 발현에 관한 결과는 주변 구조물의 개입없이 중앙의 자극의 결과를 반영한다.

은 C-FOS 검출은 면역 조직 화학 또는 immunohistofluorescence 방법에 의해 제조 될 수있다. 간접 면역은 C-FOS에 대한 일차 항체와 차 항체를 생성시킨 종 향한 이차 항체의 사용을 필요로한다. 면역 조직 화학적 방법의 경우, 이차 항체는 기판 (퍼 옥시다아제를위한 H 2 O 2)에 작용하는 효소 (예 : 퍼 옥시 다제)와 결합된다. 효소 반응의 생성물은 크로 모겐 (3,3- 디아 미노 벤지딘의 tetrahydrochlorid 의해 개발전자), 어떤을 얼룩과 광학 현미경으로 관찰 할 수있다. 반응은 니켈, 황산 암모늄을 사용하여 강화 될 수있다. 이러한 방법은 다른 생리 학적 문제 중 활성 뉴런의 검출에 따라서, 식별 및 / 또는 연속 된 생리적 반응과 관련된 주변과 중앙 통로의 맵핑을 허용한다.

Protocol

참고 : C-FOS 검출 여러 단계 (그림 1)을 포함하는 표준화 된 절차입니다. 모든 실험은 쥐 또는 쥐에서 수행되었다. 실험 프로토콜은 동물 보호에 대한 2010년 9월 22일 (63분의 2,010 / EU)의 유럽 공동체위원회 지침에 따라 수행, 동물 실험 찰스 다윈 (Charles Darwin) (/ 05 / 2011 CE5)의 윤리위원회의 승인에 따라 실시 하였다 동물 보호를위한 프랑스 법. 솔루션 1. 준비 …

Representative Results

은 C-FOS 검출은 생체 내 (그림 2A)에서 저산소증과 탄산 혈증이나 이러한 조건 생체 외 (그림 2B)를 모방 상황에서 특정 조건에서 활성화 된 세포의 식별 그룹을 할 수있는 유용한 도구입니다. 생체 내, 신생아, 젊은 또는 성인 설치류는 기상 환경이 지속적 정확하게 30 내지 180 분 13,25,26 (도 2A)에 대해 ?…

Discussion

C-FOS 즉각적인 초기 유전자와 그 산물의 검출은 상기 C-FOS 단백질, 고전 생체 11,13,25,28 특정 호흡기 반응에 관여하는 신경 세포 집단을 식별하는 데 사용되며, 생체 16-18 27,32,33.

프로토콜 내에서 중요한 단계

재관류 단계에서주의해야합니다. 4 % PFA 솔루션은 잘 준비되어야하며 고정 및 …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The University Paris 13 supported this work. ASPT was supported by a University Paris 13 fellowship and the “Association Française pour le Syndrome d’Ondine”. FJ was supported by a Laboratory of Excellence GR-Ex fellowship. The GR-Ex (ref ANR-11-LABX-0051) is funded by the program “Investissement d’avenir” of the French National Research agency (ref ANR-11-IDEX-0005-02).

Materials

Cell culture plate 12-Well Costa 35/3
15 mm Netwell inserts with mesh polyester membrane Corning 3477 The 15mm diameter well inserts have 74µm polyester mesh bottoms attached to polystyrene inserts
primary antibody (rabbit polyclonal antibody against the c-Fos protein) Santa Cruz Biotechnology sc-52
Vectastain Elite ABC KIT  Vector laboratories PK-6101
(Rabbit IgG-secondary antibody)
NaH2PO4*2H2O Sigma 71505
Na2HPO4 Sigma S7907
Paraformaldehyde Sigma P6148
NaOH 0.1N Sigma 43617
Polyvinyl-Pyrrolidone Sigma PVP-360
Sucrose Sigma S7903
NaCl Sigma S7653
Ethylene-glycol Sigma 33068
Triton X100 Sigma T8787
Trisma HCl Sigma T5941
Trisma Base Sigma T1503
3.3-diaminobenzidine tetrahydrochloride  Rockland DAB50
Nickel ammonium sulphate Alfa Aesar 12519
H2O2 Sigma H1009
Xylene Sigma 33817
Entellan Neo Merck Millipore 107961
Slide  Thermo-scientific 1014356190 Superfrost ultraplus
Cover glass Thermo-scientific Q10143263NR1 24 x 60mm
BSA Sigma A2153

References

  1. Curran, T., Teich, N. M. Identification of a 39,000-dalton protein in cells transformed by the FBJ murine osteosarcoma virus. Virology. 116, 221-235 (1982).
  2. Curran, T., MacConnell, W. P., van Straaten, F., Verma, I. M. Structure of the FBJ murine osteosarcoma virus genome: molecular cloning of its associated helper virus and the cellular homolog of the v-fos gene from mouse and human cells. Mol Cell Biol. 3, 914-921 (1983).
  3. Curran, T., Miller, A. D., Zokas, L., Verma, I. M. Viral and cellular fos proteins: a comparative analysis. Cell. 36, 259-268 (1984).
  4. Herdegen, T., Leah, J. D. Inducible and constitutive transcription factors in the mammalian nervous system: control of gene expression by Jun, Fos and Krox, and CREB/ATF proteins. Brain Res Brain Res Rev. 28, 370-490 (1998).
  5. Dragunow, M., Faull, R. The use of c-fos as a metabolic marker in neuronal pathway tracing. J Neurosci Methods. 29, 261-265 (1989).
  6. Bullitt, E. Expression of c-fos-like protein as a marker for neuronal activity following noxious stimulation in the rat. J Comp Neurol. 296, 517-530 (1990).
  7. Greenberg, M. E., Ziff, E. B. Stimulation of 3T3 cells induces transcription of the c-fos proto-oncogene. Nature. 311, 433-438 (1984).
  8. Greenberg, M. E., Greene, L. A., Ziff, E. B. Nerve growth factor and epidermal growth factor induce rapid transient changes in proto-oncogene transcription in PC12 cells. J Biol Chem. 260, 14101-14110 (1985).
  9. Muller, R., Bravo, R., Burckhardt, J., Curran, T. Induction of c-fos gene and protein by growth factors precedes activation of c-myc. Nature. 312, 716-720 (1984).
  10. Teppema, L. J., Berkenbosch, A., Veening, J. G., Olievier, C. N. Hypercapnia induces c-fos expression in neurons of retrotrapezoid nucleus in cats. Brain Res. 635, 353-356 (1994).
  11. Teppema, L. J., et al. Expression of c-fos in the rat brainstem after exposure to hypoxia and to normoxic and hyperoxic hypercapnia. J Comp Neurol. 388, 169-190 (1997).
  12. Larnicol, N., Wallois, F., Berquin, P., Gros, F., Rose, D. c-fos-like immunoreactivity in the cat’s neuraxis following moderate hypoxia or hypercapnia. J Physiol Paris. 88, 81-88 (1994).
  13. Bodineau, L., Larnicol, N. Brainstem and hypothalamic areas activated by tissue hypoxia: Fos-like immunoreactivity induced by carbon monoxide inhalation in the rat. Neurosciences. 108, 643-653 (2001).
  14. Erickson, J. T., Millhorn, D. E. Hypoxia and electrical stimulation of the carotid sinus nerve induce Fos-like immunoreactivity within catecholaminergic and serotoninergic neurons of the rat brainstem. J Comp Neurol. 348, 161-182 (1994).
  15. Bodineau, L., et al. Consequences of in utero caffeine exposure on respiratory output in normoxic and hypoxic conditions and related changes of Fos expression: a study on brainstem-spinal cord preparations isolated from newborn rats. Pediatr Res. 53, 266-273 (2003).
  16. Voituron, N., Frugiere, A., Gros, F., Macron, J. M., Bodineau, L. Diencephalic and mesencephalic influences on ponto-medullary respiratory control in normoxic and hypoxic conditions: an in vitro study on central nervous system preparations from newborn rat. Neurosciences. 132, 843-854 (2005).
  17. Voituron, N., Frugiere, A., Champagnat, J., Bodineau, L. Hypoxia-sensing properties of the newborn rat ventral medullary surface in vitro. J Physiol. 577, 55-68 (2006).
  18. Voituron, N., et al. The kreisler mutation leads to the loss of intrinsically hypoxia-activated spots in the region of the retrotrapezoid nucleus/parafacial respiratory group. Neurosciences. 194, 95-111 (2011).
  19. Suzue, T. Respiratory rhythm generation in the in vitro brain stem-spinal cord preparation of the neonatal rat. J Physiol. 354, 173-183 (1984).
  20. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. , e3564 (2012).
  21. Rousseau, J. P., Caravagna, C. Electrophysiology on isolated brainstem-spinal cord preparations from newborn rodents allows neural respiratory network output recording. J Vis Exp. , e53071 (2015).
  22. Start, R. D., Layton, C. M., Cross, S. S., Smith, J. H. Reassessment of the rate of fixative diffusion. J Clin Pathol. 45, 1120-1121 (1992).
  23. Paxinos, G., Watson, C. . The rat brain in stereotaxic coordinates. , (1998).
  24. Paxinos, G., Franklin, K. B. . The mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2001).
  25. Berquin, P., Bodineau, L., Gros, F., Larnicol, N. Brainstem and hypothalamic areas involved in respiratory chemoreflexes: a Fos study in adult rats. Brain Res. 857, 30-40 (2000).
  26. Berquin, P., Cayetanot, F., Gros, F., Larnicol, N. Postnatal changes in Fos-like immunoreactivity evoked by hypoxia in the rat brainstem and hypothalamus. Brain Res. 877, 149-159 (2000).
  27. Bodineau, L., Cayetanot, F., Frugiere, A. Fos study of ponto-medullary areas involved in the in vitro hypoxic respiratory depression. Neuroreport. 12, 3913-3916 (2001).
  28. Takakura, A. C., et al. Peripheral chemoreceptor inputs to retrotrapezoid nucleus (RTN) CO2-sensitive neurons in rats. J Physiol. 572, 503-523 (2006).
  29. Mulkey, D. K., et al. Respiratory control by ventral surface chemoreceptor neurons in rats. Nat Neurosci. 7, 1360-1369 (2004).
  30. Finley, J. C., Katz, D. M. The central organization of carotid body afferent projections to the brainstem of the rat. Brain Res. 572, 108-116 (1992).
  31. Bodineau, L., et al. Data supporting a new physiological role for brain apelin in the regulation of hypothalamic oxytocin neurons in lactating rats. Endocrinology. 152, 3492-3503 (2011).
  32. Okada, Y., Chen, Z., Jiang, W., Kuwana, S., Eldridge, F. L. Anatomical arrangement of hypercapnia-activated cells in the superficial ventral medulla of rats. J Appl Physiol (1985). 93, 427-439 (2002).
  33. Saadani-Makki, F., Frugiere, A., Gros, F., Gaytan, S., Bodineau, L. Involvement of adenosinergic A1 systems in the occurrence of respiratory perturbations encountered in newborns following an in utero caffeine exposure. a study on brainstem-spinal cord preparations isolated from newborn rats. Neurosciences. 127, 505-518 (2004).
  34. Morgan, J. I., Cohen, D. R., Hempstead, J. L., Curran, T. Mapping patterns of c-fos expression in the central nervous system after seizure. Science. 237, 192-197 (1987).
  35. Sagar, S. M., Sharp, F. R., Curran, T. Expression of c-fos protein in brain: metabolic mapping at the cellular level. Science. 240, 1328-1331 (1988).
  36. Herdegen, T., Kovary, K., Leah, J., Bravo, R. Specific temporal and spatial distribution of JUN, FOS, and KROX-24 proteins in spinal neurons following noxious transsynaptic stimulation. J Comp Neurol. 313, 178-191 (1991).
  37. Marina, N., Morales, T., Diaz, N., Mena, F. Suckling-induced activation of neural c-fos expression at lower thoracic rat spinal cord segments. Brain Res. 954, 100-114 (2002).
check_url/fr/53613?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Perrin-Terrin, A., Jeton, F., Pichon, A., Frugière, A., Richalet, J., Bodineau, L., Voituron, N. The c-FOS Protein Immunohistological Detection: A Useful Tool As a Marker of Central Pathways Involved in Specific Physiological Responses In Vivo and Ex Vivo. J. Vis. Exp. (110), e53613, doi:10.3791/53613 (2016).

View Video