Summary

C-FOS Protein Immunohistological Detection: ett användbart verktyg som en markör centralbanks involverade i specifika fysiologiska reaktioner<em> In Vivo</em> och<em> Ex vivo</em

Published: April 25, 2016
doi:

Summary

Here, we present a protocol based on c-FOS protein immunohistological detection, a classical technique used for the identification of neuronal populations involved in specific physiological responses in vivo and ex vivo.

Abstract

Många studier försöka identifiera och kartlägga områden i hjärnan som är involverade i specifika fysiologiska regler. Proto-onkogenen c-fos, en omedelbar tidig gen, uttrycks i neuroner som svar på olika stimuli. Proteinprodukten kan lätt detekteras med immunohistokemiska tekniker som leder till användning av c-FOS upptäckt att kartlägga grupper av nervceller som visar förändringar i sin verksamhet. I den här artikeln har vi fokuserat på att identifiera hjärnstammen neuronala populationer är inblandade i andnings anpassning till hypoxi eller hyperkapni. Två tillvägagångssätt har beskrivits för att identifiera inblandade neuronpopulationer in vivo i djur och ex vivo i deafferenterad hjärnstams preparat. In vivo djur exponerades för hyperkapni eller hypoxiska gasblandningar. Ex vivo, var deafferenterad preparat superfuseras med hypoxisk eller hyperkapni artificiell cerebrospinalvätska. I båda fallen, antingen kontroll in vivo djur eller ex vivo preparat hölls under normoxiska och normocapnic förhållanden. Jämförelsen mellan dessa två tillvägagångssätt möjliggör fastställandet av ursprung neuronala aktiverings dvs perifera och / eller centrala. In vivo och ex vivo har brainstems samlas in, fast, och skivade i sektioner. När sektionerna preparerades ades immunhistokemisk detektion av c-fos-protein som gjorts i syfte att identifiera de hjärnstammen grupper av celler som aktiveras av hypoxiska eller hyperkapni stimuleringar. Märkta celler räknades i hjärnstamsandnings strukturer. I jämförelse med kontroll tillstånd, hypoxi eller hyperkapni ökade antalet C-FOS märkta celler i flera specifika hjärnstams webbplatser som således konstitutiv av de nervbanor som är involverade i anpassningen av den centrala andningsdrift.

Introduction

C-fos-genen identifierades för första gången i början av 1980 1,2 och dess produkt präglades 1984 som ett nukleärt protein som har gen-aktivator egenskaper 3,4. Den deltar i långsiktiga mekanismer i samband med neuron stimulering. Faktiskt, förändringar i neuronal aktivitet leder till sekundära budbärarsystem signaleringskaskader som inducerar uttrycket av de omedelbara tidiga genen c-fos, vilket inducerar produktion av transkriptionsfaktorn c-fos. Den senare initierar uttryck av sena gener och därmed deltar i adaptiva svar i nervsystemet till många olika typer av stimuli 4. Således, sedan slutet av 1980 5,6, c-fos-proteindetektion har ofta använts för att studera effekterna av exogena faktorer på gentranskription i allmänhet 4 och på aktiviteten hos det centrala nervsystemet (CNS) för att kartlägga nervbanorna involverade i olika fysiologiskaal villkor.

Basal c-fos-uttryck har studerats i olika arter, inklusive möss, råtta, katt, apa och människa 4. Därigenom, kinetiken för dess uttryck är relativt väl känd. Transkriptionsaktivering är snabb (5-20 min) 7,8, och mRNA ackumuleringen når ett maximum mellan 30 och 45 min efter starten av stimuleringen 9 och avtar med en kort halveringstid på 12 minuter. C-fos-proteinsyntes följer mRNA-ackumulering och kunde detekteras genom immunhistokemi vid 20 till 90 min post-stimulering 6.

Analys av c-fos-uttryck är klassiskt används i in vivo-studier för att identifiera central andnings nätverk som deltar i ventilatoriska svar på hypoxi eller hyperkapni 10-14. På senare tid har det här verktyget används också i ex vivo hjärnstams förberedelser för att utforska centrala andningsnätverks anpassningar till hypoxi eller hypercapnia 15-18. Faktum är att dessa preparat genererar en rytmisk aktivitet klassiskt likställas med den centrala andningsdrift 19. Således, denna typ av preparat har fördelen av att vara helt deafferenterad och därför resultaten beträffande c-fos-uttryck endast återspegla konsekvenserna av en central stimulering utan något ingripande av perifera strukturer.

C-FOS detektion kan göras genom immunohistokemiska eller immunohistofluorescence metoder. Indirekt immundetektering nödvändiggör användningen av en primär antikropp mot c-fos och en sekundär antikropp riktad mot den art hos vilken den primära antikroppen producerades. För immunohistokemisk metod, är den sekundära antikroppen konjugerad med ett enzym (peroxidas, till exempel) som verkar på ett substrat (H2O 2 för peroxidas). Produkten av den enzymatiska reaktionen är utvecklad av en kromogen (3,3-diaminobensidin tetrahydrochloride), som färgar det och kan observeras under ljusmikroskop. Reaktionen kan förstärkas med hjälp av nickel ammoniumsulfat. Dessa metoder gör det möjligt för detektering av aktiva nervceller under olika fysiologiska utmaningar och därför identifiering och / eller kartläggning av perifera och centrala involverade i fysiologiska reaktioner i följd.

Protocol

Obs: c-FOS upptäckt är ett standardiserat förfarande som inbegriper flera steg (Figur 1). Alla experiment utfördes på råttor eller möss. Experimentella protokoll godkändes av den etiska kommittén i djurförsök Charles Darwin (CE5 / 2011/05), sker i enlighet med Europeiska gemenskapernas direktiv av den 22 september, 2010 (2010/63 / EU) för djurvård, och genomförs i enlighet med franska lagar för djurvård. 1. Beredning av lösningar Förbereda 0,2 M …

Representative Results

C-FOS upptäckt är ett användbart verktyg som gör det möjligt att identifiera grupper av aktiverade celler under specifika förhållanden såsom hypoxi och hyperkapni in vivo (figur 2A) eller i situationer som efterliknar dessa villkor ex vivo (Figur 2B). In vivo, nyfödda, unga eller vuxna gnagare placerades i en lufttät låda i vilken den gasformiga miljön ständigt förnyas genom en gasblandning med en komposition exak…

Discussion

C-fos är en omedelbar tidig gen, och detekteringen av dess produkt, c-fos-protein, är klassiskt används för att identifiera neuronala populationer som är involverade i specifika respiratoriskt svar in vivo 11,13,25,28 och ex vivo 16-18, 27,32,33.

Kritiska steg inom protokollet

Var försiktig under perfusion steget. Den 4% PFA lösning måste vara väl förberedda och fixering…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The University Paris 13 supported this work. ASPT was supported by a University Paris 13 fellowship and the “Association Française pour le Syndrome d’Ondine”. FJ was supported by a Laboratory of Excellence GR-Ex fellowship. The GR-Ex (ref ANR-11-LABX-0051) is funded by the program “Investissement d’avenir” of the French National Research agency (ref ANR-11-IDEX-0005-02).

Materials

Cell culture plate 12-Well Costa 35/3
15 mm Netwell inserts with mesh polyester membrane Corning 3477 The 15mm diameter well inserts have 74µm polyester mesh bottoms attached to polystyrene inserts
primary antibody (rabbit polyclonal antibody against the c-Fos protein) Santa Cruz Biotechnology sc-52
Vectastain Elite ABC KIT  Vector laboratories PK-6101
(Rabbit IgG-secondary antibody)
NaH2PO4*2H2O Sigma 71505
Na2HPO4 Sigma S7907
Paraformaldehyde Sigma P6148
NaOH 0.1N Sigma 43617
Polyvinyl-Pyrrolidone Sigma PVP-360
Sucrose Sigma S7903
NaCl Sigma S7653
Ethylene-glycol Sigma 33068
Triton X100 Sigma T8787
Trisma HCl Sigma T5941
Trisma Base Sigma T1503
3.3-diaminobenzidine tetrahydrochloride  Rockland DAB50
Nickel ammonium sulphate Alfa Aesar 12519
H2O2 Sigma H1009
Xylene Sigma 33817
Entellan Neo Merck Millipore 107961
Slide  Thermo-scientific 1014356190 Superfrost ultraplus
Cover glass Thermo-scientific Q10143263NR1 24 x 60mm
BSA Sigma A2153

References

  1. Curran, T., Teich, N. M. Identification of a 39,000-dalton protein in cells transformed by the FBJ murine osteosarcoma virus. Virology. 116, 221-235 (1982).
  2. Curran, T., MacConnell, W. P., van Straaten, F., Verma, I. M. Structure of the FBJ murine osteosarcoma virus genome: molecular cloning of its associated helper virus and the cellular homolog of the v-fos gene from mouse and human cells. Mol Cell Biol. 3, 914-921 (1983).
  3. Curran, T., Miller, A. D., Zokas, L., Verma, I. M. Viral and cellular fos proteins: a comparative analysis. Cell. 36, 259-268 (1984).
  4. Herdegen, T., Leah, J. D. Inducible and constitutive transcription factors in the mammalian nervous system: control of gene expression by Jun, Fos and Krox, and CREB/ATF proteins. Brain Res Brain Res Rev. 28, 370-490 (1998).
  5. Dragunow, M., Faull, R. The use of c-fos as a metabolic marker in neuronal pathway tracing. J Neurosci Methods. 29, 261-265 (1989).
  6. Bullitt, E. Expression of c-fos-like protein as a marker for neuronal activity following noxious stimulation in the rat. J Comp Neurol. 296, 517-530 (1990).
  7. Greenberg, M. E., Ziff, E. B. Stimulation of 3T3 cells induces transcription of the c-fos proto-oncogene. Nature. 311, 433-438 (1984).
  8. Greenberg, M. E., Greene, L. A., Ziff, E. B. Nerve growth factor and epidermal growth factor induce rapid transient changes in proto-oncogene transcription in PC12 cells. J Biol Chem. 260, 14101-14110 (1985).
  9. Muller, R., Bravo, R., Burckhardt, J., Curran, T. Induction of c-fos gene and protein by growth factors precedes activation of c-myc. Nature. 312, 716-720 (1984).
  10. Teppema, L. J., Berkenbosch, A., Veening, J. G., Olievier, C. N. Hypercapnia induces c-fos expression in neurons of retrotrapezoid nucleus in cats. Brain Res. 635, 353-356 (1994).
  11. Teppema, L. J., et al. Expression of c-fos in the rat brainstem after exposure to hypoxia and to normoxic and hyperoxic hypercapnia. J Comp Neurol. 388, 169-190 (1997).
  12. Larnicol, N., Wallois, F., Berquin, P., Gros, F., Rose, D. c-fos-like immunoreactivity in the cat’s neuraxis following moderate hypoxia or hypercapnia. J Physiol Paris. 88, 81-88 (1994).
  13. Bodineau, L., Larnicol, N. Brainstem and hypothalamic areas activated by tissue hypoxia: Fos-like immunoreactivity induced by carbon monoxide inhalation in the rat. Neurosciences. 108, 643-653 (2001).
  14. Erickson, J. T., Millhorn, D. E. Hypoxia and electrical stimulation of the carotid sinus nerve induce Fos-like immunoreactivity within catecholaminergic and serotoninergic neurons of the rat brainstem. J Comp Neurol. 348, 161-182 (1994).
  15. Bodineau, L., et al. Consequences of in utero caffeine exposure on respiratory output in normoxic and hypoxic conditions and related changes of Fos expression: a study on brainstem-spinal cord preparations isolated from newborn rats. Pediatr Res. 53, 266-273 (2003).
  16. Voituron, N., Frugiere, A., Gros, F., Macron, J. M., Bodineau, L. Diencephalic and mesencephalic influences on ponto-medullary respiratory control in normoxic and hypoxic conditions: an in vitro study on central nervous system preparations from newborn rat. Neurosciences. 132, 843-854 (2005).
  17. Voituron, N., Frugiere, A., Champagnat, J., Bodineau, L. Hypoxia-sensing properties of the newborn rat ventral medullary surface in vitro. J Physiol. 577, 55-68 (2006).
  18. Voituron, N., et al. The kreisler mutation leads to the loss of intrinsically hypoxia-activated spots in the region of the retrotrapezoid nucleus/parafacial respiratory group. Neurosciences. 194, 95-111 (2011).
  19. Suzue, T. Respiratory rhythm generation in the in vitro brain stem-spinal cord preparation of the neonatal rat. J Physiol. 354, 173-183 (1984).
  20. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. , e3564 (2012).
  21. Rousseau, J. P., Caravagna, C. Electrophysiology on isolated brainstem-spinal cord preparations from newborn rodents allows neural respiratory network output recording. J Vis Exp. , e53071 (2015).
  22. Start, R. D., Layton, C. M., Cross, S. S., Smith, J. H. Reassessment of the rate of fixative diffusion. J Clin Pathol. 45, 1120-1121 (1992).
  23. Paxinos, G., Watson, C. . The rat brain in stereotaxic coordinates. , (1998).
  24. Paxinos, G., Franklin, K. B. . The mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2001).
  25. Berquin, P., Bodineau, L., Gros, F., Larnicol, N. Brainstem and hypothalamic areas involved in respiratory chemoreflexes: a Fos study in adult rats. Brain Res. 857, 30-40 (2000).
  26. Berquin, P., Cayetanot, F., Gros, F., Larnicol, N. Postnatal changes in Fos-like immunoreactivity evoked by hypoxia in the rat brainstem and hypothalamus. Brain Res. 877, 149-159 (2000).
  27. Bodineau, L., Cayetanot, F., Frugiere, A. Fos study of ponto-medullary areas involved in the in vitro hypoxic respiratory depression. Neuroreport. 12, 3913-3916 (2001).
  28. Takakura, A. C., et al. Peripheral chemoreceptor inputs to retrotrapezoid nucleus (RTN) CO2-sensitive neurons in rats. J Physiol. 572, 503-523 (2006).
  29. Mulkey, D. K., et al. Respiratory control by ventral surface chemoreceptor neurons in rats. Nat Neurosci. 7, 1360-1369 (2004).
  30. Finley, J. C., Katz, D. M. The central organization of carotid body afferent projections to the brainstem of the rat. Brain Res. 572, 108-116 (1992).
  31. Bodineau, L., et al. Data supporting a new physiological role for brain apelin in the regulation of hypothalamic oxytocin neurons in lactating rats. Endocrinology. 152, 3492-3503 (2011).
  32. Okada, Y., Chen, Z., Jiang, W., Kuwana, S., Eldridge, F. L. Anatomical arrangement of hypercapnia-activated cells in the superficial ventral medulla of rats. J Appl Physiol (1985). 93, 427-439 (2002).
  33. Saadani-Makki, F., Frugiere, A., Gros, F., Gaytan, S., Bodineau, L. Involvement of adenosinergic A1 systems in the occurrence of respiratory perturbations encountered in newborns following an in utero caffeine exposure. a study on brainstem-spinal cord preparations isolated from newborn rats. Neurosciences. 127, 505-518 (2004).
  34. Morgan, J. I., Cohen, D. R., Hempstead, J. L., Curran, T. Mapping patterns of c-fos expression in the central nervous system after seizure. Science. 237, 192-197 (1987).
  35. Sagar, S. M., Sharp, F. R., Curran, T. Expression of c-fos protein in brain: metabolic mapping at the cellular level. Science. 240, 1328-1331 (1988).
  36. Herdegen, T., Kovary, K., Leah, J., Bravo, R. Specific temporal and spatial distribution of JUN, FOS, and KROX-24 proteins in spinal neurons following noxious transsynaptic stimulation. J Comp Neurol. 313, 178-191 (1991).
  37. Marina, N., Morales, T., Diaz, N., Mena, F. Suckling-induced activation of neural c-fos expression at lower thoracic rat spinal cord segments. Brain Res. 954, 100-114 (2002).
check_url/fr/53613?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Perrin-Terrin, A., Jeton, F., Pichon, A., Frugière, A., Richalet, J., Bodineau, L., Voituron, N. The c-FOS Protein Immunohistological Detection: A Useful Tool As a Marker of Central Pathways Involved in Specific Physiological Responses In Vivo and Ex Vivo. J. Vis. Exp. (110), e53613, doi:10.3791/53613 (2016).

View Video