We describe a method to knock down gene expression in a growing population of E. coli cells using sequence-targeted sRNA expression cassettes delivered by an M13 phagemid vector.
РНК-опосредованный нокдаун широко используются для контроля экспрессии генов. Этот универсальный семейство методов использует короткие РНК (рРНК), которые могут быть синтезированы с любой последовательностью и предназначенной для дополнения любого гена, предназначенные для глушителей. Поскольку рРНК конструкции могут быть введены для многих типов клеток непосредственно или с использованием различных векторов, экспрессия генов может быть подавлено в живых клетках без трудоемкого генетической модификации. Наиболее распространенной РНК нокдаун технологии, РНК-интерференции (RNAi), использует распознавания эндогенных РНК-индуцированного глушителей комплекса (RISC), чтобы опосредовать последовательности и расщепление мРНК-мишени. Применение данной методики поэтому ограничены к РИСКовским экспрессирующих организмов, в первую очередь эукариот. В последнее время новое поколение РНК биотехнологов разработали альтернативные механизмы для контроля экспрессии генов с помощью РНК, и таким образом стало возможным РНК-опосредованного нокдауна генов у бактерий. Здесь мы опишем метод для глушителей генов ExpresSion в Е. палочка , которая функционально напоминает RNAi. В этой системе синтетический Фагмидную предназначен для выражения Срна, который может нацеленная на любой последовательности. Выражение конструкция доставляется к популяции E. Клетки палочки с не литического фага М13, после чего он способен стабильно репликации в качестве плазмиды. Распознавание Антисенс и глушение мРНК – мишени опосредуется белком Hfq, эндогенной по отношению к E. палочки. Этот протокол включает в себя методы проектирования антисмысловую Срна, построения фагмидных вектора, упаковки фагмиду в M13 бактериофага, готовя население живых клеток для инфекции, а также выполнение самой инфекции. Флуоресцентный белок mKate2 и хлорамфениколацетилтрансферазу ген устойчивости к антибиотику (CAT) предназначены для создания репрезентативных данных и количественной оценки эффективности нокдаун.
РНК-опосредованных генов нокдаунов проходить в два этапа. Во-первых, молекула РНК вводят в линию или организма исследования клеток. Во-вторых, эндогенные РНК-связывающие белки облегчают распознавание РНК-мишени и производят эффект глушения. Все РНК нокдаун технологии выгоду от настраиваемой природы синтетических sRNAs, которые могут быть легко получены в соответствии конкретной цели интереса. Однако молекулярные детали поглощения РНК и глушителей широко варьироваться в зависимости от модели системы, сдерживая где и как РНК нокдаун могут быть применены.
У нематод, двухцепочечной РНК (дцРНК) молекулы могут быть введены непосредственно в средствах массовой информации или путем кормления червей с населением дцРНК-экспрессирующие E. палочка клеток в 1,2 раза . У Drosophila, РНК – интерференция может быть достигнуто за счет microinjecting эмбрионов с дцРНК 3, или реализованы в клеточных линиях, просто добавляя дсРНК к культуральной среде 4. В клеточных линий млекопитающих,синтетические малые интерферирующие РНК (киРНК) , могут быть доставлены в живые клетки с помощью электропорации 1,2,5, упаковывают в липосомах 3,6, или экспрессированы из плазмидных ДНК – векторов 4,7. После того, как вид РНК достигает цитозоле, путь RNAi, опирается на комплекс RISC для обработки дцРНК, облегчить антисмысловую распознавание цели, и катализировать поступательную репрессии, деградацию мРНК, или формировании гетерохроматина, в зависимости от хоста.
Из-за этих требований, классическая RNAi может быть выполнена только в организмах, которые занимают экзогенной РНК эффективно и выражающих RISC или RISC-подобную активность. Примечательно, что это исключает модель бактерии E. палочка, которая испытывает недостаток в пути RNAi. Тем не менее, последние достижения в области синтетической биологии предоставляют инструменты для решения как проблемы доставки и проблему глушения.
В этом протоколе Srna конструкции экспрессируется в E. палочка из вектора ДНК доставляется LiВинг клетки с помощью Фагмидную / помощника системы M13. Фагмидную является любая плазмида с фаговой происхождения f1 начала репликации. Помощник плазмида, в этом случае M13KO, несет все оборудование, необходимое для производства вирусных частиц, но сама по себе не компетентны для репликации и упаковки. Когда Фагмидную и помощник плазмиды котрансформированы, в одиночку Фагмидную реплицируется на f1 происхождения, упаковывают и секретируется. Векторизованных Фагмидную затем компетентны , чтобы заразить живой E. палочки через пилуса F.
В этой системе, эффект глушение производится на заказ Srna кассет, сочетающих последовательность подмостков с целевой-связывающей последовательностью. Мишень-связывающий последовательность 24 пар оснований антисмысловые к мРНК-мишени, как правило, на месте связывания рибосомы (RBS). Последовательность строительных лесов, разработанная Na и коллегами 8, содержит Hfq-связывающий мотив , извлеченный из MICC, небольшой регуляторной РНК эндогенного Е. палочки. Белок Hfq стимулирует РНК-РНК bindinг и деградации мРНК, выступающей роль в этой системе , подобной RISC в RNAi. На рисунке 1 представлена полная схема для фагов опосредованной Срна нокдаунов, в том числе структуры Срна кассеты, фагмидного векторизации и глушителей механизма.
В качестве способа для модулирования экспрессии гена в E. палочка, рРНК глушителей является простым, быстрым и универсальным. Целенаправленное E. палочка не обременены за распространяющейся фагмиды и выражая Срна. Это может иметь важное значение в контексте синтетической биологии или фундаментальных исследований , где экспрессия гетерологичных больших конструкций может напрягать клеточные ресурсы 9. Фагмиды с новыми целями могут быть получены с помощью одного ПЦР и собирали через один день после фагмидного трансформации. Наконец, практически любой мРНК могут быть направлены. Регулирование кассета Срна (на стандартной плазмиды) было показано , что работать на различных целей в обмене веществ с типичными уровнями репрессии> 90% 8.
<p claсс = "jove_content"> Этот протокол воспроизводит и расширяется по более ранней работе , используя Фагмидную происхождения рРНК кассеты 10. Во- первых, упакованный Фагмидную вводят в периодической культуре Е. клетки палочки и использовали для подавления экспрессии флуоресцентного белка mKate2. Последующие изменения флуоресценции контролируются в режиме реального времени. Во-вторых, сбивание ген CAT показано, чтобы уменьшить фенотипическую устойчивость к хлорамфениколу на чашках. В обоих случаях сама Фагмидную несет GFP маркер, позволяя зараженность быть измерена независимо от нокдауна эффективности.Данный способ достичь 80 снижение уровня флуоресценции mKate% по сравнению с нецелевым управления. Это согласуется с другими методами нокдаун РНК, где полное глушение не наблюдается и эффективность 50-90% является типичным 16,17. На фенотипической уровне, CAT-целевой нокдаунов были способны значительно ослабить устойчивость к хлорамфениколу, и устранить ее при определенных условиях.
Нокдаун фенотип был обнаружен на уровне населения после того, как всего за несколько часов после инфицирования (рис 3B). Это иллюстрирует важную особенность фага на основе доставки: высокая нокдаун частота может быть получена непосредственно в периодической культуре без предварительного генетической модификации. В отличие от обычных генетических модификаций с использованием трансформации плазмидами или геномную интеграцию, фаговой инфекции не требует, чтобы популяция быть повторно выращены из одной изолированной колонии. Это позволяет эффекты фаговой инфекции быть Explorе изд в популяциях со сложной пространственной динамики 11, с ранее существовавших пространственных структур , как биопленки 18, или в генетически смешанных природных популяций 19.
Важным шагом в этом методе является производство фасованного фагемид на высоком титре. Метаболический бремя, связанное с производством фага частиц может привести к высокому уровню мутации или потери плазмиды в фагмидного производства штамма. Рекомендуется, чтобы Фагмидную производство штамма культивировать непосредственно из одной колонии котрансформировали и не охлажденный, замороженный или субкультивироваться до урожая фага. Низкая эффективность совместного преобразования также может наблюдаться при введении фагмидных и вспомогательной плазмиды Е. палочки одновременно. В этом случае более высокую эффективность, могут быть получены путем трансформации вспомогательной плазмиды, а затем готовит компетентных клеток, несущих плазмиду хелпер для последующей трансформации с фагмиды.
Пхаgemid инфекция или выражение рРНК также налагает выявляемой метаболический нагрузку на клетки-мишени, и может привести к некоторому фенотипической возмущения. Например, наблюдалось снижение mKate2 флуоресценции даже тогда , когда клетки были инфицированы фагмидного нацеливание CAT (рисунок 3). Заражение M13 не думал , чтобы вызвать системные ответные реакции на стресс в E. палочка 20, но может изменить транскрипционные паттерны косвенно. С другой стороны , маркеры или GFP устойчивости к ампициллину , включенные в фагмиды могут конкурировать за клеточных ресурсов, снижение экспрессии mKate2 и роста 9. Наконец, сама рРНК кассета может глобально изменить профили экспрессии генов титрованием белок Hfq, либо через офф-мРНК-мишени глушителей. Off целевые эффекты являются общими в в естественных условиях RNAi ориентации 21-23, но они до сих пор систематически исследованы для этой системы.
Одним из ограничений этого метода является то, что инфекция энергосбетивность составляет менее 100%, что позволило в некоторых неинфицированные бактерии сохраняться в популяции. Результаты этой работы и более ранней работе 10 показывают , что неинфицированные клетки представляют собой 1-10% от конечного населения, и несут ответственность за большинство nonsilenced фенотипов наблюдается. Разнообразие маршрутов к М13-сопротивления , как известно, с наиболее распространенными из которых являются мутационный потере экспрессии 24 пилей. В свете этих ограничений, контроль должен быть использован для подтверждения высоких показателей заболеваемости и эффективности нокдаун.
Другим потенциальным ограничением для некоторых приложений является случайный перенос загрязняющего фаг-хелпер. Хотя М13К07 содержит мутированный сигнал упаковки, она может быть упакована в фаг капсида при низкой частоте и переносится к зараженным популяции, в результате чего в клетках компетентных для фага производства и непрерывное распространение фага за пределы первоначального случае инфицирования 25. Модификации хелперного фага доказали свою эффективностьна снижение неспецифической упаковки, хотя иногда на себестоимость продукции пониженной фага 26.
Engineered бактериофага стали незаменимым инструментом для E. палочка синтетической биологии, что позволяет быструю доставку новых генов для растущего населения. Последние работы производятся межклеточные цепи 11 связи или выражены факторы транскрипции для подавления резистентности к антибиотикам 27 дорожками. Протокол, представленные здесь, добавляет к растущей коллекции инструментов, которые позволяют контролировать бактериальной физиологии через запрограммированные РНК. CRISPR-Cas нуклеазы, когда мутируют для устранения нуклеазы активности, было показано , что репрессировать транскрипцию РНК в наведением мишеней генов 17,28. В противоположность этому, рРНК глушителей работает на уровне поступательным и не требует экзогенных экспрессии белка. биотехнологии следующего поколения могут объединяться транскрипции и трансляции контроль фагом-опосредованной доставки программного комплекса Phenoтипы в режиме реального времени.
The authors have nothing to disclose.
Финансирование этой работы была предоставлена Fondation Бетанкур Schueller в поддержку команды Paris Бетанкур IGEM. Мы благодарим INSERM U1001 исследовательское подразделение и Шанталь Lotton для технической помощи и консультаций. Фагмидных Litmus28i_J23115-B0032-GFP была предоставлена Моника Ortiz и Дрю Endy Стэнфорда.
Plasmid Miniprep Kit | Qiagen | 27104 | |
DpnI Enzyme | NEB | R0176S | |
Phusion High Fidelity Polymerase | NEB | M0530S | |
Taq 2x Master Mix | NEB | M0270L | |
M13KO7 Helper Phage | NEB | N0315S | |
DH5α Competent Cells | Life Technologies | 18265-017 | |
TOP10F' Cells | Life Technologies | C3030-03 | |
LB Broth | Sigma | L3022-250G | |
Ampicillin | Sigma | A9393-5G | |
Kanamycin | Sigma | 60615-5G | |
Chloramphenicol | Sigma | C0378-5G | |
Tetracycline | Sigma | 87128-25G |