Эта статья знакомит простой подход к обеспечению непостоянного градиента статические штаммов на концентрические клеток Ладена гидрогеля регулировать выравнивание ячеек для тканевой инженерии.
Искусственные руководство для сотовых выравнивание является горячей темой в области тканевой инженерии. Большинство предыдущих исследований провела расследование одного штамма индуцированной сотовой выравнивание на клетки Ладена гидрогеля с помощью сложных процессов экспериментальных и массового управления системами, которые обычно связаны с вопросами загрязнения. Таким образом в этой статье, мы предлагаем простой подход к построению градиента статической деформации, с использованием оптимизированных чип с пластиковой крышкой PDMS и УФ прозрачной стеклянной подложке для стимуляции клеточного поведения в 3D гидрогеля. Перегрузка форполимера фото patternable клеток в зале аэрогидродинамических может генерировать выпуклой кривой PDMS мембраны на обложке. После УФ сшивки через концентрические круговые микроузор под изогнутой PDMS мембраны и буфера мытья, микроокружение для расследования ячейки поведения при различных штаммов градиента самостоятельно созданной в оптимизированных микросхема, без внешних инструментов. NIH3T3 клетки были продемонстрированы после наблюдения изменений в клеточных выравнивание тенденции под руководством геометрии, в сотрудничестве с штамм стимуляции, которая колебалась от 15-65% на гидрогели. После 3 дней инкубации гидрогеля геометрии доминировали выравнивание ячеек в низкой сжимающие напряжения, где клетки выстраиваются вдоль оси удлинения гидрогеля под высоким Сжимающее напряжение. Между этими клетки показали случайных выравнивания из-за рассеивания радикальной руководство гидрогеля удлинение и геометрии руководством узорной гидрогеля.
Качестве блок материала, который имитирует родной микроокружения, гидрогеля, содержащий внеклеточного матрикса (ECM) можно заново строить biomimetic ткани подмости для поддержки роста клеток. Обладать функции ткани, выравнивание организованные ячейки является важным требованием. Различные 2D (т.е. клетки культивировали на поверхности) и 3D (т.е. клетки, инкапсулированные в Гидрогель) рядов клеток были достигнуты путем культивирования или инкапсуляции клетки в или на гибких подложках с микро- или нано структуры1. Выравнивание ячейки 3D в микроархитектуре более привлекательной, как микроокружения ближе к родной ткани построить2,3,4. Один общий подход для выравнивания 3D клеток — геометрические подсказка гидрогеля форма2,3. Из-за ограниченного пространства для пролиферации клеток в короткой оси клетки цель для выравнивания вдоль Лонг-оси в микро узорные гидрогеля. Другой подход заключается в том, чтобы применить растяжение растяжение к гидрогели для достижения выравнивание ячейки параллельно стрейч направление4,5.
Биофизические стимуляции на ECM гидрогели, такие сжимающие напряжения или электрического поля, можно регулировать функции клеток для надлежащего ткани интеграции, распространение и дифференциации1,2,3. Много исследований было сделано для расследования сотовой поведение, применив один из деформированного состояния на время, используя несколько механического управления подразделения4,6,,78,9. Например использование механического шаговые двигатели сжал или растягивается на 3D инкапсулированных клеток коллагена гидрогеля был общий подход7,10. Однако такого контрольного оборудования требуется дополнительное пространство и сталкивается с проблемой загрязнения в инкубатор7,9,,1112. Кроме того большой инструмент не может дать точного управления окружающей среды обеспечить высокую воспроизводимость13.
Учитывая, что клетки Ладена гидрогели, как правило, работают на микро масштабе для биомедицинских приложений, это выгодно совместить MEMS технологии для создания целого ряда штамм/стрейч стимуляции одновременно расследовать поведение ячейки в 3D biomimetic конструкции в пробирке2,14,,1516,17,18. Например используя давление газа деформировать PDMS мембраны microfluidic фишек может привести к различных штаммов, вождение дифференцировки клеток различных линий9,16. Однако есть много технических проблем, таких, как процессы изготовления сложных чип в чистой комнате и интеграции программного обеспечения управления двигателей, насосов, клапанов и сжатых газов.
В этой работе мы демонстрируем простой подход для получения самоподдерживающегося градиента статическое напряжение microfluidic чип, используя шаблон концентрические круговые гидрогеля и гибкие PDMS мембраны. В отличие от большинства существующих подходов Наша платформа является портативным и одноразовые миниатюрное устройство, которое могут быть изготовлены за пределами желтой комнате и который обладает собственной генерации градиента штаммов на концентрические инкапсулированные клетки гидрогели, без внешнего механического оборудования во время инкубации. Поведение клеток фиброцита 3T3 под влиянием сочетания формы гидрогеля и различные растяжение стрейч указания подсказки были продемонстрированы в ходе наблюдения за выравнивание ячеек внутри 3D ECM-подражательный сред в чипе градиента напряжения для 3 дней.
В этой статье мы сообщаем о простой подход для сравнения характеристик выравнивания ячеек после гидрогеля форма руководства и растяжение растяжение. Гибкие PDMS мембраны создает куполообразная кривизны для генерации различных высот концентрические круговые гидрогелей. После выпуска ?…
The authors have nothing to disclose.
Этот проект был поддержан, выпускник Студенческие исследования за рубежом программа (NSC-101-2917-I-007-010); Биомедицинская инженерия программа (NSC-101-2221-E-007-032-MY3); и нанотехнологии национальной программы (NSC-101-2120-M-007-001-), национального научного Совета РПЦ, Тайвань. Авторы хотели бы поблагодарить профессора Али Khademhosseini, Gulden Джамчи-Унал, Arghya пол и Ronglih Liao Гарвардской медицинской школы для совместного использования технологии инкапсуляции гидрогеля и клеток.
1.5-mL black microcentrifuge tube | Argos Technologies | 03-391-161 | This one can be replaced with a neutral color of 1.5-mL tube covered with aluminun foil |
10X DPBS | Sigma-Aldrich | 56064C | |
Alexa Fluor 488 phalloidin | Invitrogen | A12379 | |
BSA | Sigma | A1595 | |
Calcein | Molecular Probe | C1430 | For labeling viable cells |
CCD | PCO. Imaging | Pixelfly qe | |
Cell membrane permeating solution | Sigma-Aldrich | X100 | 0.5% Triton X-100 for permeating cell membrane |
DAPI | Sigma-Aldrich | D8417 | Cell nucleus staining |
Dialysis membrane | Sigma-Aldrich | D9527 | Molecular weight cut-off = 14,000 |
DMEM | Gibco | 11995-065 | |
Double-side tape | 3M | 8003 | |
FBS | Hyclone | SH30071.03 | |
Gelatin | Sigma-Aldrich | G2500 | gel strength 300, type A, from porcine skin |
High frequency electronic corona generator | Electro-technic products | MODEL BD-20 | |
Methacrylic Anhydride | Sigma-Aldrich | 276685 | |
Micro syringe | Hamilton | 80501 | 50 μL |
Microscope | Olympus | IX71 | Include two filter sets: LF405/LP-B-000 and LF488/LP-C-000 from Semrock |
Oxygen plasma machine | Harrick plasma | PDC-001 | |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | P6148 | For fixing cell |
PDMS | DOW CORNING | Sylgard 184 | Mixture for PDMS chip cast-molding fabrication |
Pen-Strep | Gibco | 10378-016 | penicillin/streptomycin |
Photoinitiator | CIBA | Irgacure 2959 | |
Propidium iodide | Sigma-Aldrich | P4170 | For labeling dead cells |
Sterile Filtration cup | Millipore | SCGPT05RE | |
TMSPMA | Sigma-Aldrich | 440159 | For hydrogel immobilization |
Ultrasonicator | Delta | D150H | 150W, 43kHz |
UV light | DAIHAN | WUV-L10 | |
Freeze Dryer | FIRSTEK | 150311025 | |
NIH3T3(fibroblast) | Food Industry Research and Development Institute(FIRDI) | 08C0011 | |
MOXI Z Mini Automated Cell Counter | ORFLO | MXZ001 |