Article de méthode

Myéloïde cellule d'isolement de la peau de souris et Vidange ganglion Après intradermique immunisation avec Live Atténuée

17.4K vues

DOI :

10.3791/53796

18 mai 2016

Dans cet article

Résumé

Nous décrivons ici un protocole permettant d’isoler les cellules myéloïdes de la peau de souris et de drainer les ganglions lymphatiques après injection intradermique de sporozoïtes de Plasmodium. La cytométrie en flux des cellules collectées fournit un test fiable pour caractériser la réponse inflammatoire de la peau et des ganglions lymphatiques drainants au parasite.

Résumé

L' infection du paludisme commence lorsque le stade sporozoïte de Plasmodium est inoculé dans la peau d'un hôte mammifère par une piqûre de moustique. Le parasite très mobiles non seulement atteint le foie pour envahir les hépatocytes et de transformer en une forme globulaire-infectieux. Il migre aussi dans la peau et les ganglions lymphatiques drainant le site proximal par injection, où il peut être reconnu et dégradé par des résidents et / ou des cellules myéloïdes recrutés. Imagerie intravitale a rapporté le recrutement précoce de leucocytes positifs fluorescent brillamment Lys-GFP dans la peau et les interactions entre les sporozoïtes et CD11c + cellules du ganglion lymphatique de drainage. Nous présentons ici une procédure efficace pour récupérer, identifier et dénombrer les sous-ensembles de cellules myéloïdes qui sont recrutés sur la peau de souris et de drainage des ganglions lymphatiques après l'injection intradermique de immunisant doses de sporozoïtes dans un modèle murin. La caractérisation phénotypique utilisant flux multi-paramétrique fournit cytométrieun test fiable pour évaluer les changements cellulaires dynamiques précoces en réponse inflammatoire à l' infection par Plasmodium.

Introduction

Le paludisme est l'une des maladies infectieuses les plus meurtrières dans le monde, tuant plus d'un demi-million de personnes par an. L' infection par Plasmodium, l'agent causal de la maladie, débute par une phase de pré-érythrocytaire (PE). Au cours de cette phase, les sporozoïtes injectés dans la peau de l' hôte par un moustique anophèle femelle atteignent le foie via la circulation sanguine et de se différencier hépatocytes à l' intérieur dans les formes parasitaires qui infectent les globules rouges et causent les symptômes de la maladie.

Les étapes de PE de Plasmodium représentent u....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

Toutes les procédures ont été approuvées par le comité de l'Institut Pasteur et par le Comité local d'éthique sur l'expérimentation animale (comité éthique IDF-Paris 1, Paris, France; numéro de contrat: 2.012 à 0.015) et réalisées en conformité avec les directives et règlements applicables.

1. Matériaux et réactifs

  1. Utilisez femelle moustiques Anopheles stephensi (souche Sda500) qui se nourrissent de souris infectées 3-5 jours après la levée et à l' arrière , comme décrit précédemment 21.
  2. Utiliser des parasites Plasmodium berghei ANKA clone exprimant le gène de la protéine fluorescente ver....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

Nous avons récemment démontré que l' injection seringue-aiguille doses immunisantes de P. berghei sporozoïtes dans la peau de la souris induit un recrutement successif de polynucléaires neutrophiles suivie par les monocytes inflammatoires de la peau et dLn 19. La section protocole décrit ci - dessus détaille la procédure utilisée pour isoler avec succès des cellules myéloïdes en direct à partir des deux tissus après des injections multiples d' un grand nombre .......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Dans la perspective de la vaccination à grande échelle de l' homme à l' aide d' un vaccin sporozoïtes du paludisme ensemble, l' un des principaux défis à relever est de développer des voies et des méthodes d'administration des parasites optimisés pour assurer la vaccination et la protection 24,25 réussie. Chez les humains, l'évaluation de l' efficacité protectrice médiée par des parasites vivants atténués (LAP) a été réalisé en suivant les moustiques naturel morsures 2, .......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu'ils ont aucun intérêt financier concurrents.

Remerciements

Les auteurs remercient Patricia Baldacci, Vanessa Lagal et Sabine Thiberge pour la lecture critique, Irina Dobrescu et Sabine Thiberge pour les aider à prendre des photos et Pauline Formaglio pour l' enseignement dans l' imagerie in vivo de sporozoïtes motilité dans la peau de la souris. Nous tenons également à remercier Marek Szatanik et le Centre de production et infection des anophèles (CEPIA-Institut Pasteur) pour les moustiques élevage. Cette étude a été soutenue par le Fonds AXA pour la Recherche et les fonds du Laboratoire d'excellence "biologie intégrative des maladies infectieuses émergentes" (subvention no. ANR-10-LabX-62-IBEID....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Kétamine : Imalgene® ; 1 000Merial-50mg/kg : injection préalable de sporozoïte 125 mg/kg : sacrifice préalable
Xylazine : Rompun® ; 2 %Bayer-5mg/kg : injection préalable de sporozoïte 12,5 mg/kg :
seringue NanoFil de sacrifice préalable + aiguille de calibre 35World Precision Instruments.--
Omnican® ; 50 Seringue à insuline 0,5 ml/50 U.I.B. Braun Medical  ;
Plaque de culture tissulaire à 6 puits &ndash ; Fond platBD Falcon  ;353046-70
et micro ; crépine à cellules M  ;BD Falcon  ;352350-2
ml seringueTerumoSS-02S-BLUE
MAXTM 15 ml Tube conique en polypropylèneBD Falcon  ;352097-BLUE
MAXTM 50 ml Tube conique en polypropylèneBD Falcon  ;352098-5
ml Tube en polystyrène à fond rond avec 35 µ ; m Capuchon de crépineBD Falcon
1x CaCl2- et MgCl2--freeLife Technologies14190-094-DMEM
1x + GlutaMAXTMLife Technologies31966-021-Collagénase
de Clostridium histolyticum, type IV 0,5-5,0 unités FALGPA/mg solide  ;Sigma-Aldrich  ;C5138400 U/ml  ;
Désoxyribonucléase I du pancréas bovin, type IV  ;Sigma-Aldrich  ;D502550 et micro ; g/ml
de sel disodique EDTASigma-Aldrich  ;E-513410 mM ou 2,5 mM
FBSBiowestS1810-500-HEPES
solution tampon (1M)Gibco15630-05625 mM
Trypan blue Stain (0,4 %)Life Technologies15250-061Dilution 1:10  ;
Anti-souris CD16/CD32 (clone 2.4G2)BD Biosciences55314210 µ ; g/ml final (1:50)
DAPI FluoroPureTM gradeLife TechnologiesD214901 µ ; g/ml final
Anti-souris CD45 (clone 30-F11)BD Biosciences559864  ; Dilution 1:200
Anti-souris CD11b (clone M1/70)BD Biosciences557657  ; Dilution 1:400
Anti-souris CD8&alpha ; (clone 5H10)Technologies de la vieMCD0830 Dilution 1:100
Souris femelles C57BL/6JRj (âgées de 7 semaines)  ;Laboratoires Janvier--
9151125-MultiwellTM352235-DPBS

Références

  1. Nussenzweig, R. S., Vanderberg, J., Most, H., Orton, C. Protective immunity produced by the injection of x-irradiated sporozoites of plasmodium berghei. Nature. 216 (5111), 160-162 (1967).
  2. Hoffman, S. L., et al.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Demander l’autorisation de réutiliser le texte ou les figures de cet article JoVE

Demander une autorisation

Mots-clés

Ganglion lymphatique cutan de sourisanalyse par cytom trie en fluxprotocole d injection de sporozo tesm thode de digestion tissulairetechnique de dissociation cellulaireextraction des ganglions lymphatiquestraitement du tissu auriculaired nombrement des cellules immunitairesmod le de sporozo tes de Plasmodium

Articles connexes