Summary

Gelijktijdige detectie van c-Fos Activering van mesolimbic en mesocorticale Dopamine Beloning Sites Na Naive suiker en vet inname bij ratten

Published: August 24, 2016
doi:

Summary

Het doel van deze studie is om op beloning van gedistribueerde hersenprocessen netwerken te identificeren door het afbakenen van een betrouwbare immunohistologische techniek met behulp van mobiele c-fos activering gelijktijdige veranderingen in de dopamine wegen en terminal plaatsen na roman inname van vet en suiker in ratten te meten.

Abstract

Deze studie maakt gebruik van cellulaire c-fos activering effecten van nieuwe inname van vet en suiker op hersenen dopamine (DA) wegen bij ratten te evalueren. Inname van suikers en vetten worden gemedieerd door hun aangeboren attracties, evenals geleerd voorkeuren. Brain dopamine, vooral meso-limbische en meso-corticale projecties van het ventrale tegmentale gebied (VTA), is betrokken bij beide ongeleerde en geleerd reacties. Distributed hersennetwerken, waarbij meerdere sites en zender / peptide elkaar kunnen beïnvloeden, is voorgesteld te bemiddelen smakelijk voedselopname, maar er is weinig bewijs empirisch aantonen van deze acties. Aldus suiker inname uitlokt DA afgifte en verhoogt c-fos-achtige immunoreactiviteit (FLI) individueel VTA DA projectie zones zoals de nucleus accumbens (NAC), amygdala (AMY) en mediale prefrontale cortex (mPFC) en de dorsale striatum. Verder, de centrale administratie van de selectieve DA receptor antagonisten in deze plaatss differentieel verminderen acquisitie en expressie van geconditioneerde smaak voorkeuren opgewekt door suikers of vetten. Eén benadering waarmee te bepalen of deze gebieden interactie als een gedistribueerd hersenen netwerk in antwoord op suiker of vet zou zijn om gelijktijdige beoordelen of de VTA en de belangrijkste mesotelencephalic DA projectie zones (prelimbic en infralimbic mPFC, kern en schil van de NAC, basolaterale en centrale-cortico-mediale AMY) en de dorsale striatum Display 'gecoördineerde en gelijktijdige FLI activatie na orale, onvoorwaardelijk inname maïsolie (3,5%), glucose (8%), fructose (8%) en saccharine (0,2 %) oplossingen. Deze aanpak is een succesvolle eerste stap in het identificeren van de haalbaarheid van het gebruik van mobiele c-fos activering gelijktijdig over relevante hersenen sites om beloning gerelateerd leren in inname van smakelijk voedsel bij knaagdieren te bestuderen.

Introduction

Brain dopamine (DA) is betrokken bij het ​​centrum reacties op inname van smakelijke suikers door middel voorgesteld hedonische 1,2-inspanning gerelateerde 3 en gewoonte gebaseerde 4,5 werkingsmechanismen. De primaire DA pathway betrokken bij deze effecten zijn oorsprong in het ventrale tegmental gebied (VTA), en projecten om de nucleus accumbens (NAC) kern en schil, de basolaterale en centrale-cortico-mediale amygdala (AMY), en de prelimbic en infralimbic mediale prefrontale cortex (mPFC) (zie reviews 6,7). De VTA is betrokken bij sucrose inname van 8,9 en DA release waargenomen na inname van suiker in het NAC 10-15, AMY 16,17 en mPFC 18-20. Vetinname stimuleert ook DA NAC vrijgeven 21, en ​​een andere DA-rijke projectie zone naar het dorsale striatum (caudatus-putamen) is ook geassocieerd met DA-gemedieerde voeden 22,23. Kelley 24-27 voorgesteld dat deze meerdere projection zones van deze DA-gemedieerde systeem vormde een geïntegreerd en interactief gedistribueerd hersenen netwerk door middel van uitgebreide en intieme interconnecties 28-34.

Naast het vermogen van DA D1 en D2 receptorantagonisten inname van suikers en vetten 35-37 38-40 beperken heeft DA signalering ook betrokken bij het ​​veroorzaken van het vermogen van suikers en vetten geconditioneerde smaak voorkeuren produceren (GVB) 41- 46. Micro-injecties van een DA D1 receptor antagonist in de NAC, AMY of mPFC 47-49 elimineren overname van GVB uitgelokt door de maag glucose. Overwegende dat micro-injecties van ofwel DA D1 en D2 receptor antagonisten in de mPFC elimineert overname van fructose-GVB-50, zijn de verwerving en expressie van fructose-GVB differentieel geblokkeerd door DA antagonisten in het NAC en AMY 51,52.

De c-fos 53,54 techniek is toegepast om neurale activatio onderzoekenn veroorzaakt door smakelijk inname en neurale activering. De term "c-fos activering" wordt overal het manuscript worden gebruikt, en is operationeel gedefinieerd door verhoogde transcriptie van c-Fos in neuronale depolarisatie. Sucrose verhoogde fos-achtige immunoreactiviteit (FLI) in de centrale kern AMY, de VTA en de schaal, maar niet de kern van de NAC 55-57. Overwegende dat sucrose inname in sham-voeden van ratten aanzienlijk toegenomen FLI in de AMY en NAC, maar niet de VTA 58, maag sucrose of glucose infusies aanzienlijk toegenomen FLI in de NAC en de centrale en basolaterale kernen van de AMY 59,60. Herhaalde toevoeging van sucrose aan geplande chow toegang toegenomen FLI in de mPFC evenals de NAC shell en core 61. Een sucrose concentratie terugschakelen paradigma bleek dat de grootste FLI toename opgetreden in de basolaterale AMY en NAC, maar niet het VTA 62. Na conditionering, uitsterven van suiker-gerelateerde natuurlijke reward gedrag toegenomen FLI in de basolaterale AMY en de NAC-63. Bovendien koppelen beschikbaarheid suiker om een toon resulteerde in de toon vervolgens toenemende FLI niveaus in de basolaterale AMY 64. High-vetinname ook toegenomen FLI in NAC en mPFC plaatsen 65-67.

Het grootste deel van de eerder genoemde studies onderzocht suiker en vet effecten op de c-fos activering in enkele sites die geen informatie over identificatie van beloning gerelateerde gedistribueerde hersenen netwerken 24-27 geven wel. Verder zijn veel van de studies ook niet af te bakenen van de relatieve bijdrage van de deelgebieden van de NAC (kern en schil), Amy (basolaterale en centrale-cortico-mediale) en mPFC (prelimbic en infralimbic), die mogelijk door het zou kunnen worden onderzocht voordeel van uitstekende ruimtelijke, eencellige resolutie c-Fos 68 mapping. Ons laboratorium 69 laatstgebruikte c-fos activering gelijktijdig gemeten veranderingen in de VTA DA route en prodrugsprojectie zones (NAC, AMY en mPFC) na nieuwe inname van vetten en suikers in ratten. De huidige studie beschrijft de procedurele en methodologische stappen om gelijktijdig analyseren of acute blootstelling aan zes verschillende oplossingen (maïsolie, glucose, fructose, sacharine, water en een vetemulsie controle) zou differentieel activeren FLI in deelgebieden van het NAC, AMY, mPFC en de dorsale striatum. Deze gelijktijdige detectie van verschillen toegestaan ​​bevestiging van significante effecten op de FLI in elke site en vastberadenheid over de vraag of wijzigingen in een bepaalde site gecorreleerd met veranderingen in de gerelateerde sites, waardoor de steun voor een gedistribueerde hersenen netwerk 24-27 verstrekken. Deze geteste procedures of de VTA, de prelimbic en infralimbic mPFC, de kern en de schil van de NAC en de basolaterale en centrale-cortico-mediale AMY) evenals de dorsale striatum zou vertoning gecoördineerd en gelijktijdig FLI activering na orale, ongeconditioneerd inname glucose (8%), fructose (8%), maïsolie (3,5%) en saccharine (0,2%) oplossing.

Protocol

Deze experimentele protocollen zijn goedgekeurd door de Institutional Animal Care en gebruik Comite waaruit blijkt dat de onderwerpen en procedures zijn in overeenstemming met de National Institutes of Health Guide voor Zorg en gebruik van proefdieren. 1. onderwerpen Aankoop en / of het ras mannelijke Sprague-Dawley ratten (260-300 g). Huis ratten individueel in gaas kooien. Hen op een 12:12 uur licht / donker cyclus met rat chow en water ad libitum beschikbaar. Wijs de ju…

Representative Results

Alle hierna beschreven representatieve resultaten zijn eerder gepubliceerd 69, en worden hier opnieuw aangeboden aan "proof of concept" ondersteunen waarin de effectiviteit van de techniek. oplossing Intakes Significante verschillen in de baseline sacharine inname werden waargenomen gedurende de eerste vier dagen voor alle dieren (F (3,108) = 57,27, p <0,001) met intakes (Dag 1: …

Discussion

Het doel van het onderzoek was te bepalen of de bron (VTA) en voorhersenen uitsteeksel targets (NAC, AMY, mPFC) DA-beloning gerelateerde neuronen tegelijkertijd werden geactiveerd na nieuwe inname van vet en suiker in ratten via het mobiele c-fos techniek . De huidige studie is een gedetailleerde beschrijving van de protocollen van een onderzoek dat eerder 69 gepubliceerd. De hypothese was dat de VTA, de belangrijkste uitsteeksel zones de prelimbische en infralimbic mPFC, de kern en schil van de NAC en basola…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Met dank aan Diana Icaza-Culaki, Cristal Sampson en Theologia Karagiorgis voor hun harde werk aan dit project.

Materials

Equipment
Sprague-Dawley rats Charles River Laboratories CD-1
Wire Mesh Cages Lab Products, Seaford, DE 30-Cage rack
Rat Chow PMI Nutrition International 5001
Taut Metal Spring Lab Products, Seaford, DE n/a
Rat Weighing Scale Fisher Scientific Company n/a
Nalgene Centrifuge Tubes Lab Products, Seaford, DE 10-0501
Rubber Stopper Lab Products, Seaford, DE n/a
Metal Sippers Lab Products, Seaford, DE n/a
Saccharin Sigma Chemical Co 82385-42-0
Kool-Aid, Cherry Kool-Aid Commerical
Kool-Aid, Grape Kool-Aid Commercial
Fructose Sigma Chemical Co F0127
Glucose Sigma Chemical Co G8270
Corn Oil Mazzola Commerical
Xanthan Gum Sigma Chemical Co 11138-66-2
Sliding Microtome Microm International n/a
Neurolucida Camera MBF Bioscience Software application
Gelatin-coated Slides Fisher Scientific Company 12-550-343
Cover glass Fisher Scientific Company 12-545-M
Golden Nylon Brushes Loew-Cornell  2037
Natural Hair Sable  Loew-Cornell  2022
24 Well Plates Fisher Scientific 3527
6 Well Plates Fisher Scientific 3506
1L Pyrex bottles Fisher Scientific 1395-1L
Tissue insert (tissue strainer) Fisher Scientific 7200214
Eagle pipettes  World Precision Instruments E10 for 1-10ul 
Eagle pipettes  World Precision Instruments E100 for 20-100ul
Eagle pipettes  World Precision Instruments E200 for 50-200ul
Eagle pipettes  World Precision Instruments E1000 for 100-1000ul
Eagle pipettes  World Precision Instruments E5000 for 1000-5000ul 
Universal Tips .1-10ul World Precision Instruments 500192
Universal Tips 5-200ul World Precision Instruments 500194
Universal Tips 500-5000ul World Precision Instruments 500198
Blade Vibroslice 100 World Precision Instruments BLADE
DPX Mounting Medium  Electron Microscopy  13510
15mL centrifuge tubes Biologix Research Co. 10-0501
Slide Boxes Biologix Research Co. 41-6100
Orbital Shaker  Madell Corporation   ZD-9556
weigh boats  Fisher Scientific 02-202-100
5mL disposable pipettes Fisher Scientific 13-711-5AM
Stereo Investigator Software Micro Bright Field Software application
Name Company Catalog number Comments
Reagents
Paraformaldehyde Granular Fisher Scientific 19210
NaCl Fisher Scientific S271-1
Sodium Phophate Monobasic Fisher Scientific S468-500
Sodium Phosphate Diphasic Fisher Scientific BP332-500
Hydrogen Peroxide  Fisher Scientific H324-500
SafeClear II  Fisher Scientific 23-044-192
Methanol  Fisher Scientific A412-1
Normal Goat Serum Vector S-1000
Biotinylated Anti-Rabbit IgG (H+L) Vector BA-1000
ABC Kit Peroxidase Standard Vector PK-4000
Anti-cFos (Ab-5) Rabbit EMD chem/Cal Biochem PC38
Triton X 100 SigmaAldrich X-100
3,3' diaminobenzidine tetra hydrochloride  SigmaAldrich D5905
Sodium Hydroxide SigmaAldrich 5881
Primary TH anti body EMD Millipore AB152
Euthosol Virbac AH

References

  1. Koob, G. F. Neural mechanisms of drug reinforcement. Ann. N.Y. Acad. Sci. 654, 171-191 (1992).
  2. Wise, R. A. Role of brain dopamine in food reward. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 361, 1149-1158 (2006).
  3. Salamone, J. D., Correa, M. The mysterious motivational functions of mesolimbic dopamine. Neuron. 76, 470-485 (2012).
  4. Horvitz, J. C., Choi, W. Y., Morvan, C., Eyny, Y., Balsam, P. D. A "good parent" function of dopamine: transient modulation of learning and performance during early stages of training. Ann. N.Y. Acad. Sci. 1104, 270-288 (2007).
  5. Wickens, J. R., Horvitz, J. C., Costa, R. M., Killcross, S. Dopaminergic mechanisms in actions and habits. J. Neurosci. 27, 8181-8183 (2007).
  6. Bjorklund, A., Dunnett, S. B. Dopamine neuron systems in the brain: an update. Trends Neurosci. 30, 194-202 (2007).
  7. Swanson, L. W. The projections of the ventral tegmental area and adjacent regions: a combined fluorescent retrograde tracer and immunofluorescence study in the rat. Brain Res. Bull. 9, 321-353 (1982).
  8. Cacciapaglia, F., Wrightman, R. M., Careli, R. M. Rapid dopamine signaling differentially modulates distinct microcircuits within the nucleus accumbens during sucrose-directed behavior. J. Neurosci. 31, 13860-13869 (2011).
  9. Martinez-Hernandez, J., Lanuza, E., Martinez-Garcia, F. Selective dopaminergic lesions of the ventral tegmental area impair preference for sucrose but not for male sex pheromones in female mice. Eur. J. Neurosci. 24, 885-893 (2006).
  10. Bassareo, V., Di Chiara, G. Differential influence of associative and nonassociative learning mechanisms on the responsiveness of prefrontal and accumbal dopamine transmission to food stimuli in rats fed ad libitum. J. Neurosci. 17, 851-861 (1997).
  11. Bassareo, V., Di Chiara, G. Differential responsiveness of dopamine transmission to food-stimuli in nucleus accumbens shell/core compartments. Neurosci. 89, 637-641 (1999).
  12. Cheng, J., Feenstra, M. G. Individual differences in dopamine efflux in nucleus accumbens shell and core during instrumental conditioning. Learn. Mem. 13, 168-177 (2006).
  13. Genn, R. F., Ahn, S., Phillips, A. G. Attenuated dopamine efflux in the rat nucleus accumbens during successive negative contrast. Behav. Neurosci. 118, 869-873 (2004).
  14. Hajnal, A., Norgren, R. Accumbens dopamine mechanisms in sucrose intake. Brain Res. 904, 76-84 (2001).
  15. Hajnal, A., Smith, G. P., Norgren, R. Oral sucrose stimulation increases accumbens dopamine in the rat. Am. J. Physiol. 286, R31-R37 (2003).
  16. Bassareo, V., Di Chiara, G. Modulation of feeding-induced activation of mesolimbic dopamine transmission by appetitive stimuli and its relation to motivational state. Eur. J. Neurosci. 11, 4389-4397 (1999).
  17. Hajnal, A., Lenard, L. Feeding-related dopamine in the amygdala of freely moving rats. Neuroreport. 8, 2817-2820 (1997).
  18. Bassareo, V., De Luca, M. A., Di Chiara, G. Differential expression of motivational stimulus properties by dopamine in nucleus accumbens shell versus core and prefrontal cortex. J. Neurosci. 22, 4709-4719 (2002).
  19. Feenstra, M., Botterblom, M. Rapid sampling of extracellular dopamine in the rat prefrontal cortex during food consumption, handling, and exposure to novelty. Brain Res. 742, 17-24 (1996).
  20. Hernandez, L., Hoebel, B. G. Feeding can enhance dopamine turnover in the prefrontal cortex. Brain Res. Bull. 25, 975-979 (1990).
  21. Liang, N. C., Hajnal, A., Norgren, R. Sham feeding corn oil increases accumbens dopamine in the rat. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 291, R1236-R1239 (2006).
  22. Dunnett, S. B., Iversen, S. D. Regulatory impairments following selective kainic acid lesions of the neostriatum. Behav. Brain Res. 1, 497-506 (1980).
  23. Salamone, J. D., Zigmond, M. J., Stricker, E. M. Characterization of the impaired feeding behavior in rats given haloperidol or dopamine-depleting brain lesions. Neurosci. 39, 17-24 (1990).
  24. Kelley, A. E. Ventral striatal control of appetitive motivation: role in ingestive behavior and reward-related learning. Neurosci. Biobehav. Rev. 27, 765-776 (2004).
  25. Kelley, A. E. Memory and addiction: shared neural circuitry and molecular mechanisms. Neuron. 44, 161-179 (2004).
  26. Kelley, A. E., Baldo, B. A., Pratt, W. E. A proposed hypothalamic-thalamic-striatal axis for the integration of energy balance, arousal and food reward. J. Comp. Neurol. 493, 72-85 (2005).
  27. Kelley, A. E., Baldo, B. A., Pratt, W. E., Will, M. J. Corticostriatal-hypothalamic circuitry and food motivation: integration of energy, action and reward. Physiol. Behav. 86, 773-795 (2005).
  28. Berendse, H. W., Galis-de-Graaf, Y., Groenewegen, H. J. Topographical organization and relationship with ventral striatal compartments of prefrontal corticostriatal projections in the rat. J. Comp. Neurol. 316, 314-347 (1992).
  29. Brog, J. S., Salyapongse, A., Deutch, A. Y., Zahm, D. S. The patterns of afferent innervation of the core and shell in the "accumbens" part of rat ventral striatum: immunohistochemical detection of retrogradely transported fluoro-gold. J. Comp. Neurol. 338, 255-278 (1993).
  30. McDonald, A. J. Organization of amygdaloid projections to the prefrontal cortex and associated stritum in the rat. Neurosci. 44, 1-14 (1991).
  31. McGeorge, A. J., Faull, R. L. The organization of the projection from the cerebral cortex to the striatum in the rat. Neurosci. 29, 503-537 (1989).
  32. Sesack, S. R., Deutch, A. Y., Roth, R. H., Bunney, B. S. Topographical organization of the efferent projections of the medial prefrontal cortex in the rat: an anterograde tract-tracing study with Phaseolus vulgaris leucoagglutinin. J. Comp. Neurol. 290, 213-242 (1989).
  33. Wright, C. I., Beijer, A. V., Groenewegen, H. J. Basal amygdaloid complex afferents to the rat nucleus accumbens are compartmentally organized. J. Neurosci. 16, 1877-1893 (1996).
  34. Wright, C. I., Groenewegen, H. J. Patterns of convergence and segregation in the medial nucleus accumbens of the rat: relationships of prefrontal cortical, midline thalamic and basal amygdaloid afferents. J. Comp. Neurol. 361, 383-403 (1995).
  35. Geary, N., Smith, G. P. Pimozide decreases the positive reinforcing effect of sham fed sucrose in the rat. Pharmacol. Biochem. Behav. 22, 787-790 (1985).
  36. Muscat, R., Willner, P. Effects of selective dopamine receptor antagonists on sucrose consumption and preference. Psychopharmacol. 99, 98-102 (1989).
  37. Schneider, L. H., Gibbs, J., Smith, G. P. D-2 selective receptor antagonists suppress sucrose sham feeding in the rat. Brain Res. Bull. 17, 605-611 (1986).
  38. Baker, R. W., Osman, J., Bodnar, R. J. Differential actions of dopamine receptor antagonism in rats upon food intake elicited by mercaptoacetate or exposure to a palatable high-fat diet. Pharmacol. Biochem. Behav. 69, 201-208 (2001).
  39. Rao, R. E., Wojnicki, F. H., Coupland, J., Ghosh, S., Corwin, R. L. Baclofen, raclopride and naltrexone differentially reduce solid fat emulsion intake under limited access conditions. Pharmacol. Biochem. Behav. 89, 581-590 (2008).
  40. Weatherford, S. C., Smith, G. P., Melville, L. D. D-1 and D-2 receptor antagonists decrease corn oil sham feeding in rats. Physiol. Behav. 44, 569-572 (1988).
  41. Azzara, A. V., Bodnar, R. J., Delamater, A. R., Sclafani, A. D1 but not D2 dopamine receptor antagonism blocks the acquisition of a flavor preference conditioned by intragastric carbohydrate infusions. Pharmacol. Biochem. Behav. 68, 709-720 (2001).
  42. Baker, R. M., Shah, M. J., Sclafani, A., Bodnar, R. J. Dopamine D1 and D2 antagonists reduce the acquisition and expression of flavor-preferences conditioned by fructose in rats. Pharmacol. Biochem. Behav. 75, 55-65 (2003).
  43. Dela Cruz, J. A., Coke, T., Icaza-Cukali, D., Khalifa, N., Bodnar, R. J. Roles of NMDA and dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of flavor preferences conditioned by oral glucose in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 114, 223-230 (2014).
  44. Dela Cruz, J. A., et al. Roles of dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of fat-conditioned flavor preferences in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 97, 332-337 (2012).
  45. Yu, W. Z., Silva, R. M., Sclafani, A., Delamater, A. R., Bodnar, R. J. Pharmacology of flavor preference conditioning in sham-feeding rats: effects of dopamine receptor antagonists. Pharmacol. Biochem. Behav. 65, 635-647 (2000).
  46. Yu, W. Z., Silva, R. M., Sclafani, A., Delamater, A. R., Bodnar, R. J. Role of D(1) and D(2) dopamine receptors in the acquisition and expression of flavor-preference conditioning in sham-feeding rats. Pharmacol. Biochem. Behav. 67 (1), 537-544 (2000).
  47. Touzani, K., Bodnar, R. J., Sclafani, A. Activation of dopamine D1-like receptors in nucleus accumbens is critical for the acquisition, but not the expression, of nutrient-conditioned flavor preferences in rats. Eur. J. Neurosci. 27, 1525-1533 (2008).
  48. Touzani, K., Bodnar, R. J., Sclafani, A. Dopamine D1-like receptor antagonism in amygdala impairs the acquisition of glucose-conditioned flavor preference in rats. Eur. J. Neurosci. 30, 289-298 (2009).
  49. Touzani, K., Bodnar, R. J., Sclafani, A. Acquisition of glucose-conditioned flavor preference requires the activation of dopamine D1-like receptors within the medial prefrontal cortex in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 94, 214-219 (2010).
  50. Malkusz, D. C., et al. Dopamine signaling in the medial prefrontal cortex and amygdala is required for the acquisition of fructose-conditioned flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 233, 500-507 (2012).
  51. Bernal, S. Y., et al. Role of dopamine D1 and D2 receptors in the nucleus accumbens shell on the acquisition and expression of fructose-conditioned flavor-flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 190, 59-66 (2008).
  52. Bernal, S. Y., et al. Role of amygdala dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of fructose-conditioned flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 205, 183-190 (2009).
  53. Dragunow, M., Faull, R. The use of c-fos as a metabolic marker in neuronal pathway tracing. J. Neurosci. Methods. 29, 261-265 (1989).
  54. VanElzakker, M., Fevurly, R. D., Breindel, T., Spencer, R. L. Environmental novelty is associated with a selective increase in Fos expression in the output elements of the hippocampal formation and the perirhinal cortex. Learn. Mem. 15, 899-908 (2008).
  55. Norgren, R., Hajnal, A., Mungarndee, S. S. Gustatory reward and the nucleus accumbens. Physiol. Behav. 89, 531-535 (2006).
  56. Park, T. H., Carr, K. D. Neuroanatomical patterns of fos-like immunoreactivity induced by a palatable meal and meal-paired environment in saline- and naltrexone-treated rats. Brain Res. 805, 169-180 (1998).
  57. Zhao, X. L., Yan, J. Q., Chen, K., Yang, X. J., Li, J. R., Zhang, Y. Glutaminergic neurons expressing c-Fos in the brainstem and amygdala participate in signal transmission and integration of sweet taste. Nan.Fang Yi.Ke.Da.Xue.Xue.Bao. 31, 1138-1142 (2011).
  58. Mungarndee, S. S., Lundy, R. F., Norgren, R. Expression of Fos during sham sucrose intake in rats with central gustatory lesions. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 295, R751-R763 (2008).
  59. Otsubo, H., Kondoh, T., Shibata, M., Torii, K., Ueta, Y. Induction of Fos expression in the rat forebrain after intragastric administration of monosodium L-glutamate, glucose and NaCl. Neurosci. 196, 97-103 (2011).
  60. Yamamoto, T., Sako, N., Sakai, N., Iwafune, A. Gustatory and visceral inputs to the amygdala of the rat: conditioned taste aversion and induction of c-fos-like immunoreactivity. Neurosci. Lett. 226, 127-130 (1997).
  61. Mitra, A., Lenglos, C., Martin, J., Mbende, N., Gagne, A., Timofeeva, E. Sucrose modifies c-fos mRNA expression in the brain of rats maintained on feeding schedules. Neurosci. 192, 459-474 (2011).
  62. Pecoraro, N., Dallman, M. F. c-Fos after incentive shifts: expectancy, incredulity, and recovery. Behav. Neurosci. 119, 366-387 (2005).
  63. Hamlin, A. S., Blatchford, K. E., McNally, G. P. Renewal of an extinguished instrumental response: Neural correlates and the role of D1 dopamine receptors. Neurosci. 143, 25-38 (2006).
  64. Kerfoot, E. C., Agarwal, I., Lee, H. J., Holland, P. C. Control of appetitive and aversive taste-reactivity responses by an auditory conditioned stimulus in a devaluation task: A FOS and behavioral analysis. Learn. Mem. 14, 581-589 (2007).
  65. Zhang, M., Kelley, A. E. Enhanced intake of high-fat food following striatal mu-opioid stimulation: microinjection mapping and fos expression. Neurosci. 99, 267-277 (2000).
  66. Teegarden, S. L., Scott, A. N., Bale, T. L. Early life exposure to a high fat diet promotes long-term changes in dietary preferences and central reward signaling. Neurosci. 162, 924-932 (2009).
  67. Del Rio, D., et al. Involvement of the dorsomedial prefrontal cortex in high-fat food conditioning in adolescent mice. Behav. Brain Res. 283, 227-232 (2015).
  68. Knapska, E., Radwanska, K., Werka, T., Kaczmarek, L. Functional internal complexity of amygdala: focus on gene activity mapping after behavioral training and drugs of abuse. Physiol. Rev. 87, 1113-1173 (2007).
  69. Dela Cruz, J. A. D., et al. c-Fos induction in mesotelencephalic dopamine pathway projection targets and dorsal striatum following oral intake of sugars and fats in rats. Brain Res. Bull. 111, 9-19 (2015).
  70. Paxinos, G., Watson, C. . The rat brain in stereotaxic coordinates. , (2006).
  71. Ranaldi, R., et al. The effects of VTA NMDA receptor antagonism on reward-related learning and associated c-fos expression in forebrain. Behav. Brain Res. 216, 424-432 (2011).

Play Video

Citer Cet Article
Dela Cruz, J. A. D., Coke, T., Bodnar, R. J. Simultaneous Detection of c-Fos Activation from Mesolimbic and Mesocortical Dopamine Reward Sites Following Naive Sugar and Fat Ingestion in Rats. J. Vis. Exp. (114), e53897, doi:10.3791/53897 (2016).

View Video