Summary

Differensiering av atrieflimmer cardiomyocytes fra Pluripotent stamceller ved hjelp av BMP Antagonist Grem2

Published: March 10, 2016
doi:

Summary

Generating cardiomyocytes from pluripotent stem cells in vitro allows access to large amounts of cardiac tissue in vitro for basic science and clinical applications. This protocol uses the atrializing factor Grem2 to both increase the numbers of cardiomyocytes obtained and to generate cardiomyocytes with an atrial phenotype.

Abstract

Protokoller for å generere populasjoner av cardiomyocytes fra pluripotente stamceller har blitt utviklet, men disse gir generelt celler av blandede fenotyper. Forskere er interessert i å forfølge studier med spesifikke myocyte subtyper krever en mer rettet differensiering tilnærming. Ved å behandle mus embryonale stamceller (ES-celler) med Grem2, en utskilt BMP-antagonist som er nødvendig for atrial kammeret dannelse in vivo, kan et stort antall hjerteceller med en atrial fenotype bli generert. Bruk av konstruert Myh6-DsRed-Nuc pluripotent stamcellelinje muliggjør identifisering, utvelgelse, og rensing av cardiomyocytes. I denne protokollen embryoid kropper er generert fra Myh6-DsRed-NUC celler ved hjelp av den hengende slipp-metoden og holdt i suspensjon inntil differensiering dag 4 (d4). Ved D4 cellene behandles med Grem2 og sådd ut på gelatin-belagte plater. Mellom d8-D10 store entreprenør områdene er observert i kulturer og fortsette å utvide og mperaturen gjennom D14. Molekylær, histologiske og electrophysiogical analyser indikerer celler i Grem2-behandlede celler skaffe atrial-lignende egenskaper som gir en in vitro modell for å studere biologi av atriale kardiomyocytter og deres respons på forskjellige farmakologiske midler.

Introduction

Pluripotente stamceller er et kraftig verktøy for å generere og studere celler fra en rekke vanskelig å få tilgang til vev for grunnleggende forskning og pre-kliniske studier, spesielt hos mennesker 1-5. Riktig modulering av utviklingssignalveier kan direkte differensiering av pluripotente stamceller til ønsket fenotypiske skjebne. Mange protokoller har blitt utviklet for å generere cardiomyocytes (CMS) fra pluripotente stamceller 6-14. Disse protokollene som regel innebære modulering av TFGβ super (activin, BMP, og TGFp) og Wnt trasé gjennom tidsbestemt tillegg av eksogene vekstfaktorer og / eller små molekyler 10,12-15. Disse protokollene er generelt effektive til å øke prosentandelen av celler som blir CMs, men mangler spesifisitet, generering av en blandet populasjon av celler som representerer atrial, ventrikulær og nodal / ledningssystem linjene. For å studere spesifikk hjerte subtyper en mer rettet differensiering approach kreves.

Gremlin2 (Grem2, også kalt Protein Relatert til Dan og Cerberus eller Prdc for kort) er en utskilt BMP antagonist som er nødvendig for riktig hjerte differensiering og atrial kammer formasjon under hjerte utvikling i sebrafisk 16. Behandling differensierende embryonale stamceller med Grem2 på differensiering dag 4, like etter peak uttrykk for mesodermal markører T-Brachyury og Cerberus som en, øker utbyttet av CMS og genererer en pool av celler hovedsakelig av atrial avstamning 14.

Rekombinant Grem2 brukes til å behandle de unike celler og kan gjøres ved hjelp av standard proteinproduksjonsteknikker 17 eller kan kjøpes kommersielt. Det er meget oppløselig i vandige oppløsninger og kan bli tilsatt eksogent til kulturene på det ønskede tidspunkt.

Differensiering kan spores ved hjelp RT-qPCR å kvantifisere uttrykk for markører representantav hjerte-stamfedre, hjertestamfedre, og engasjerte CMS. Immunfluorescens kan også brukes til å identifisere og visualisere romlig fordeling av hjertecelletyper.

Applikasjoner som krever rene populasjoner er lettere utført ved bruk av en reporter system for å identifisere og isolere CMS. For dette formålet, har vi innført αMHC-DsRedNuc konstruere i musen CGR8 ES cellelinje 14. CGR8 celler vokse og forbli pluripotent uten mateceller, tilrettelegging for utvidelse og differensierings analyser 18. ES cellelinje inneholder en DsRed fluorescerende proteinkodende sekvens med et kjernefysiske lokalisering signal under hjertespesifikke alpha Myosin Heavy Chain (a Mhc eller Myh6) genet promoter. Ved hjelp av disse cellene, kan CMs lett identifiseres og isoleres for kvantifisering, celle sortering, elektrofysiologi, narkotika-skjermer, og studere mekanismer for atrial differensiering.

Protocol

1. Utarbeidelse av Cell Culture Media, løsninger og reagenser. Forbered 500 ml Mouse embryonale stamceller (Mesc) medie ved å blande og steril filtrering (0,2 mikrometer porestørrelse) 445 ml Glasgow Minimum Essential Medium (GMEM), 50 ml varmeinaktivert føtalt bovint serum (FBS), 5 ml 100X konsentrert L- glutamin erstatning, 5 pl rekombinant mus leukemiinhiberende faktor (LIF) ved 1 x 10 7 enheter per ml og 1,43 ul ß-merkaptoetanol (endelig konsentrasjon er 50 uM). Oppbevar ved 4 ˚C til den …

Representative Results

Før differensiering, bør pluripotente stamceller være kompakt og fri for spontan differensiering. Cellene er vist i figur 1A er klar til å bli singularized og brukes til å henge dråper som beskrevet i 5.1 i protokollen delen. Cellene er vist på figur 1B er spontant differensiere og bør ikke brukes for fremstilling av hengende dråper. Panelene er inklu…

Discussion

Denne protokollen gir rutinemessig kulturer med en høy andel av CMS som er karakteristisk for atrial avstamning. Som med alle differensiering protokollen, må kvaliteten på mESCs før differensiering bli gitt spesiell oppmerksomhet. mESCs bør rutinemessig kontrolleres for riktig morfologi (figur 1A). Enhver spontan differensiering som inntreffer før dannelsen av EBS vil sterkt begrense effektiviteten av cardiogenesis og bør fjernes før aging (figur 1B). EB størrelse påvirker ogs…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH tilskudd HL083958 og HL100398 (AKH) og 2T32HL007411-33 "Program i Hjerte- Mekanismer: Trening i Investigation" (JB).

Materials

GMEM Life Technologies 11710
FBS Life Technologies 10082
Glutamax Life Technologies 35050
LIF EMD Millipore ESG1107
ß-Mercaptoethanol Sigma M3148
IMDM Sigma I3390
Non-Essential Amino Acids Sigma M7145
10 cm Tissue Culture Plates Sarstedt 83.3902
10 cm Bacterial Petri Dishes VWR 25384-342
6 cm Bacterial Petri Dishes VWR 25384-092
6-well tissue culture plates Sarstedt 83.3920
Gremlin 2 recombinant protein R&D Systems 2069-PR-050
Sterile filter units Thermo Fisher 09-741-02
Gelatin (from porcine skin) Sigma G1890
10X PBS, Sterile Sigma P5493
BSA  Sigma 5470
0.05% Trypsin-EDTA solution Life Technologies 25300054
DPBS, no Calcium, no Magnesium Life Technologies 14200

References

  1. Loya, K., Eggenschwiler, R., et al. Hepatic differentiation of pluripotent stem cells. Biological Chemistry. 390 (10), 1047-1055 (2009).
  2. Narazaki, G., Uosaki, H., et al. Directed and systematic differentiation of cardiovascular cells from mouse induced pluripotent stem cells. Circulation. 118 (5), 498-506 (2008).
  3. Zhang, Y., Pak, C., et al. Rapid single-step induction of functional neurons from human pluripotent stem cells. Neuron. 78 (5), 785-798 (2013).
  4. Park, I. H., Arora, N., et al. Disease-specific induced pluripotent stem cells. Cell. 134 (5), 877-886 (2008).
  5. Golos, T. G., Giakoumopoulos, M., Garthwaite, M. A. Embryonic stem cells as models of trophoblast differentiation: progress, opportunities, and limitations. Reproduction. 140 (1), 3-9 (2010).
  6. Boheler, K. R., Czyz, J., Tweedie, D., Yang, H. T., Anisimov, S. V., Wobus, A. M. Differentiation of pluripotent embryonic stem cells Into cardiomyocytes. Circulation Research. 91 (3), 189-201 (2002).
  7. Burridge, P. W., Anderson, D., et al. Improved human embryonic stem cell embryoid body homogeneity and cardiomyocyte differentiation from a novel V-96 plate aggregation system highlights interline variability. Stem Cells. 25 (4), 929-938 (2007).
  8. Cai, C. L., Liang, X., et al. Isl1 Identifies a cardiac progenitor population that proliferates prior to differentiation and contributes a majority of cells to the heart. Developmental Cell. 5 (6), 877-889 (2003).
  9. Fujiwara, M., Yan, P., et al. Induction and enhancement of cardiac cell differentiation from mouse and human induced pluripotent stem cells with Cyclosporin-A. PLoS ONE. 6 (2), e16734 (2011).
  10. Rai, M., Walthall, J. M., Hu, J., Hatzopoulos, A. K. Continuous antagonism by Dkk1 counter activates canonical wnt signaling and promotes cardiomyocyte differentiation of embryonic stem cells. Stem Cells and Development. (1), 54-66 (2012).
  11. Burridge, P. W., Matsa, E., et al. Chemically defined generation of human cardiomyocytes. Nature Methods. 11 (8), 855-860 (2014).
  12. Lian, X., Zhang, J., et al. Directed cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells by modulating Wnt/β-catenin signaling under fully defined conditions. Nature Protocols. 8 (1), 162-175 (2013).
  13. Zhang, J., Klos, M., et al. Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: the matrix sandwich method. Circulation Research. 111 (9), 1125-1136 (2012).
  14. Tanwar, V., Bylund, J. B., et al. Gremlin 2 promotes differentiation of embryonic stem cells to atrial fate by activation of the JNK signaling pathway. Stem Cells. 32 (7), 1774-1788 (2014).
  15. Kattman, S. J., Witty, A. D., et al. Stage-specific optimization of activin/nodal and BMP signaling promotes cardiac differentiation of mouse and human pluripotent stem cell lines. Cell Stem Cell. 8 (2), 228-240 (2011).
  16. Müller, I. I., Melville, D. B., et al. Functional modeling in zebrafish demonstrates that the atrial-fibrillation-associated gene GREM2 regulates cardiac laterality, cardiomyocyte differentiation and atrial rhythm. Disease Models & Mechanisms. 6 (2), 332-341 (2013).
  17. Kattamuri, C., Luedeke, D. M., Thompson, T. B. Expression and purification of recombinant protein related to DAN and cerberus (PRDC). Protein Expression and Purification. 82 (2), 389-395 (2012).
  18. Schulz, H., Kolde, R., et al. The FunGenES Database: A genomics resource for mouse embryonic stem cell differentiation. PLoS ONE. 4 (9), e6804 (2009).
  19. . Phosphate-buffered saline (PBS). Cold Spring Harbor Protocols. , (2006).
  20. Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of relative gene expression data using Real-Time quantitative PCR and the 2−ΔΔCT method. Methods. 25 (4), 402-408 (2001).
  21. Beck, H., Semisch, M., Culmsee, C., Plesnila, N., Hatzopoulos, A. K. Egr-1 regulates expression of the glial scar component phosphacan in astrocytes after experimental stroke. American Journal of Pathology. 173 (1), 77-92 (2008).
  22. Graham, E. L., Balla, C., Franchino, H., Melman, Y., del Monte, F., Das, S. Isolation, culture, and functional characterization of adult mouse cardiomyoctyes. Journal of Visualized Experiments. (79), (2013).
  23. Brown, A. L., Johnson, B. E., Goodman, M. B. Patch clamp recording of ion channels expressed in Xenopus oocytes. Journal of Visualized Experiments. (20), (2008).
  24. Brown, A. L., Johnson, B. E., Goodman, M. B. Making patch-pipettes and sharp electrodes with a programmable puller. Journal of Visualized Experiments. (20), (2008).
  25. Sachinidis, A., Fleischmann, B. K., Kolossov, E., Wartenberg, M., Sauer, H., Hescheler, J. Cardiac specific differentiation of mouse embryonic stem cells. Cardiovascular Research. 58 (2), 278-291 (2003).
  26. Keller, G. M. In vitro differentiation of embryonic stem cells. Current Opinion in Cell Biology. 7 (6), 862-869 (1995).
  27. Höpfl, G., Gassmann, M., Desbaillets, I. Differentiating embryonic stem cells into embryoid bodies. Volume 2: molecular embryo analysis, live imaging, transgenesis, and cloning. Methods in Molecular Biology. , 254-279 (2004).
  28. Ao, A., Williams, C. H., Hao, J., Hong, C. C. Modified mouse embryonic stem cell based assay for quantifying cardiogenic Induction Efficiency. Journal of Visualized Experiments. (50), (2011).
  29. Antonchuk, J., Gassmann, M., Desbaillets, I. Formation of embryoid bodies from human pluripotent stem cells using AggreWell™ plates. Basic Cell Culture Protocols. 946, 523-533 (2013).
  30. Horii, T., Nagao, Y., Tokunaga, T., Imai, H. Serum-free culture of murine primordial germ cells and embryonic germ cells. Theriogenology. 59 (5-6), 1257-1264 (2003).
check_url/fr/53919?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Bylund, J. B., Hatzopoulos, A. K. Differentiation of Atrial Cardiomyocytes from Pluripotent Stem Cells Using the BMP Antagonist Grem2. J. Vis. Exp. (109), e53919, doi:10.3791/53919 (2016).

View Video