Summary

Kombinere Double Fluorescence<em> In Situ</em> Hybridisering med immunomerking for Påvisning av Expression of Three Gener i musehjerne §§

Published: March 26, 2016
doi:

Summary

Localizing gene expression to specific cell types can be challenging due to the lack of specific antibodies. Here we describe a protocol for simultaneous triple detection of gene expression by combining double fluorescence RNA in situ hybridization with immunostaining.

Abstract

Påvisning av genuttrykk i forskjellige typer hjerneceller for eksempel, nevroner, astrocytter oligodendrocytes, oligodendrocyte forløpere og microglia, kan bli hemmet av mangel på spesifikke primære eller sekundære antistoffer for immunfarging. Her beskriver vi en protokoll for å påvise ekspresjon av tre forskjellige gener i den samme hjernen delen ved å bruke dobbel fluorescens in situ hybridisering med to genspesifikke prober, etterfulgt av farging med et antistoff med høy spesifisitet rettet mot proteinet kodet for av en tredje genet. Den Aspartoacyclase (ASPA) genet, mutasjoner av noe som kan føre til en sjelden human hvit substans sykdom – Canavan sykdom – antas å bli uttrykt i oligodendrocytter og mikroglia, men ikke i astrocytter og nevroner. Har imidlertid ennå ikke etablert nøyaktig uttrykk mønster av ASPA i hjernen. Denne protokollen har tillatt oss å fastslå at Aspa er uttrykt i en undergruppe av moden oligodendrocytes ennd det kan generelt anvendes på et bredt spekter av genuttrykksmønstrene studier.

Introduction

Gliaceller, som er de mest tallrike cellene i sentralnervesystemet (CNS), omfatter oligodendrocytter (de myelinerende celler av CNS), oligodendrocytter forløpere (OPS, også kjent som "NG2 celler"), astrocytter og microglia. Det er økende interesse for funksjonene til gliacellene og deres potensielle roller i nevrologiske sykdommer 1. For eksempel Canavan sykdom (CD) er en arvelig nevrodegenerativ lidelse starter tidlig barndom med spongiform leukodystrophy og et progressivt tap av nerveceller, som fører til døden vanligvis før 10 års alder 2,3. Mutasjoner i Aspartoacyclase (ASPA) genet som fører til drastisk redusert aktivitet ASPA 4 i CD har blitt identifisert. ASPA er et enzymet som katalyserer deacetyleringen av N-acetylaspartate (NAA), et molekyl som sterkt konsentrert i hjernen, genererer acetat og aspartat 5-7. Mange CD-pasienter viser høyere nivåer av NAA grunn av mangel på Aspa activitet. Noen studier spekulerer i at NAA-avledet acetat kan være en viktig kilde av fettsyrer / lipider i hjernen under utvikling og CD kan være resultatet av redusert myelin syntese under utvikling som skyldes svikt i NAA å bli brutt ned 3,5,6.

ASPA hovedsakelig funnet i nyre, lever og hvit substans i hjernen, og gitt den viktige rollen ASPA i CD, har den cellulære ekspresjon av dette enzym i hjernen blitt studert av flere laboratorier. Ved å se på Aspa enzymatisk aktivitet i hjernen, tidligere studier har funnet at økningen i Aspa aktivitet under hjernens utvikling paralleller tidsforløpet av myelination 8-10. På cellenivå, analyser analyser for enzymatisk aktivitet, så vel som in situ hybridisering (ISH) og immunhistokjemi (IHC) antyder at ASPA er hovedsakelig uttrykt i oligodendrocytter i hjernen, men ikke i neuroner eller astrocytter 11-16. Noen studier har funnet at Aspa kanskje ogsåuttrykkes i mikroglia i sentralnervesystemet 12,14. Så langt data på Aspa uttrykk i OPS er begrenset. Ifølge en fersk studie der transcriptomes av ulike celletyper i musen hjernebarken inkludert nevroner, astrocytter, ops, nydannede oligodendrocytes, myelinerende oligodendrocytter, microglia, endotelceller, og pericytes ble analysert ved RNA sekvense 17, Aspa utelukkende uttrykt i oligodendrocytes , spesielt i myelinerende oligodendrocytter (http://web.stanford.edu/group/barres_lab/brain_rnaseq.html). Til tross for disse studiene på Aspa uttrykk mønster i hjernen, en rekke usikkerheter forbli.

Forskjellige teknikker kan brukes til å studere genuttrykksmønster. IHC er en vanlig brukt metode for å påvise den funksjonelle produkt (dvs. protein) av en genekspresjon i vevssnitt. Til tross for sin flotte verktøyet, har denne teknikken begrensninger som sin søknad og spesifisitet er under to tilgjengeligheten og spesifisiteten av antistoffet er nødvendig. Til sammenligning har ISH fordelen av å være i stand til å avsløre ekspresjon av hvilket som helst gen på mRNA-nivå. Men det kan være teknisk vanskelig å benytte flere prober samtidig for å lokalisere en genekspresjon til spesifikke celletyper. I denne artikkelen beskriver vi en protokoll som kombinerer dobbel fluorescens RNA in situ hybridisering med fluorescens immunomerking av et protein. Vi har brukt dette sett av teknikker for å undersøke ekspresjon mønster av Aspa i musehjerne. Denne metoden gir den nøyaktige studier av genekspresjon ved hjelp av konfokal mikroskopi.

Protocol

Etikk Uttalelse: Mus drifta og håndtering er i samsvar med britisk hjemmekontoret forskrifter og UCL etiske komité retningslinjer, i samsvar med de Dyr (vitenskapelige prosedyrer) Act 1986 av Storbritannia og dets endringsforskriften 2012. MERK: Alle løsninger bør gjøres med dietylpyrokarbonat (DEPC) – behandlet vann for å ødelegge eventuelle gjenværende RNase. For DEPC behandling, legg DEPC (1 ml per liter), rist kraftig til alle DEPC kulene har forsvunnet da autoklaver å de…

Representative Results

Denne artikkelen beskriver en fremgangsmåte for en dobbel fluorescens ISH etterfulgt av immunomerking i musehjerneseksjoner. En kort beskrivelse av denne protokollen er vist i figur 1. Det første trinn var å syntetisere prober som er spesifikke for Aspa og MBP (myelin basisk protein). For å kontrollere at probene var blitt syntetisert, ble en liten alikvot fra hver reaksjon kjørt på en agarosegel. Svak lineære templat og en stor mengde RNA-probe …

Discussion

Denne protokollen gir en trinn-for-trinn fremgangsmåte for en dobbel RNA in situ-hybridisering, etterfulgt av immunfarging. Vi har brukt denne protokollen til å bekrefte at Aspa er uttrykt i modne oligodendrocytter i flere hjerneområder.

Denne multi-trinns prosedyre har mange potensielle fallgruver som kan påvirke følsomhet og bør unngås. Først må alle løsninger og lagringsbuffere for transkripsjonsreaksjon må være RNase-fri. For det andre er valget av cDNA temp…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Work in the authors’ laboratories was supported by the UK Biotechnology and Biological Sciences Research Council (BB/J006602/1 and BB/L003236/1), the Wellcome Trust (WT100269MA) and the European Research Council (ERC, “Ideas” Programme 293544). SJ was supported by an EMBO long-term fellowship. The authors thank Stephen Grant for his technical assistance.

Materials

QIAprep® Miniprep Qiagen 27104
Deionized formamide Sigma F9037 for ISH blocking buffer
Sodium chloride Sigma S3014
Trizma Base Sigma T1503
Hydrochloric acid VWR International 20252.290
Sodium phosphate monobasic anhydrous Sigma S8282
Sodium phosphate dibasic dihydrate Sigma 30435
Yeast tRNA Roche 10109495001
50x Denhardt's solution Life Technologies 750018
Dextran sulfate Sigma D8906
Aspa cDNA clone Source Bioscience IRAVp968C0654D
SalI New England Biolabs R0138
Sodium acetate Sigma S2889
Equilibrated phenol Sigma P4557
Chloroform Sigma-Aldrich C2432
Isoamyl alcohol Aldrich 496200
Ethanol VWR International 20821.321
T7 RNA polymerase Promega P4074
Transcription buffer Promega P118B
100mM DTT Promega P117B
UTP-DIG NTP mix Roche 11277073910
Rnasin Promega N251B
Paraformaldehyde Sigma P6148
Filter paper Fisher scientific 005479470
Sucrose Sigma 59378
Diethyl pyrocarbonate Sigma D5758
Pentobarbitone Animalcare Ltd BN43054
Dissecting scissors World Precision Instruments 15922
25 gauge needle Terumo 300600
Peristaltic pump Cole-Parmer Instrument Co. Ltd WZ-07522-30
Iris scissors Weiss 103227
No.2 tweezers World Precision Instruments 500230
Coronal Brain Matrix World Precision Instruments RBMS-200C
Razor blade Personna Medical PERS60-0138
OCT medium Tissue tek 4583
Cryostat/microtome Bright
Superfrost plus slides Thermo Scientific J1800AMNZ
Sodium citrate Sigma S4641 for 65°C wash buffer
Formamide Sigma-Aldrich F7503
Tween-20 Sigma-Aldrich P1379
Coverslips VWR International 631-0146
Coplin Jar Smith Scientific Ltd 2959
Blocking reagent Roche 11096176001
Heat-inactivated sheep serum Sigma S2263
Hydrophobic pen Cosmo Bio DAI-PAP-S 1:500
α-FITC POD-conjugated antibody Roche 11426346910
TSA™ Plus Fluorescein System Perkin Elmer NEL741001KT 1:1500
α-DIG AP-conjugated Roche 11093274910
Fast red tablets Roche 11496549001
.22µM filter Millex SLGP033RS
α-Olig2 Rabbit antbody Millipore AB9610
Alexa Fluor® 647-conjugated α-rabbit antibody Life technologies A-31573 1:1000
bisBenzimide H 33258 sigma B2883
Mounting medium Dako S3023
Leica SP2 confocal microscope Leica

References

  1. Lobsiger, C. S., Cleveland, D. W. Glial cells as intrinsic components of non-cell-autonomous neurodegenerative disease. Nat Neurosci. 10 (11), 1355-1360 (2007).
  2. Baslow, M. H. N-acetylaspartate in the vertebrate brain: metabolism and function. Neurochem Res. 28 (6), 941-953 (2003).
  3. Hoshino, H., Kubota, M. Canavan disease: clinical features and recent advances in research. Pediatr Int. 56 (4), 477-483 (2014).
  4. Kaul, R., Gao, G. P., Balamurugan, K., Matalon, R. Cloning of the human aspartoacylase cDNA and a common missense mutation in Canavan disease. Nat Genet. 5 (2), 118-123 (1993).
  5. Divry, P., Mathieu, M. Aspartoacylase deficiency and N-acetylaspartic aciduria in patients with Canavan disease. Am J Med Genet. 32 (4), 550-551 (1989).
  6. Bartalini, G., et al. Biochemical diagnosis of Canavan disease. Childs Nerv Syst. 8 (8), 468-470 (1992).
  7. Moffett, J. R., Ross, B., Arun, P., Madhavarao, C. N., Namboodiri, A. M. N-Acetylaspartate in the CNS: from neurodiagnostics to neurobiology. Prog Neurobiol. 81 (2), 89-131 (2007).
  8. D’Adamo, A. F., Smith, J. C., Woiler, C. The occurrence of N-acetylaspartate amidohydrolase (aminoacylase II) in the developing rat. J Neurochem. 20 (4), 1275-1278 (1973).
  9. Bhakoo, K. K., Craig, T. J., Styles, P. Developmental and regional distribution of aspartoacylase in rat brain tissue. J Neurochem. 79 (1), 211-220 (2001).
  10. Sommer, A., Sass, J. O. Expression of aspartoacylase (ASPA) and Canavan. Gene. 505 (2), 206-210 (2012).
  11. Klugmann, M., et al. Identification and distribution of aspartoacylase in the postnatal rat brain. Neuroreport. 14 (14), 1837-1840 (2003).
  12. Madhavarao, C. N., et al. Immunohistochemical localization of aspartoacylase in the rat central nervous system. J Comp Neurol. 472 (3), 318-329 (2004).
  13. Hershfield, J. R., et al. Aspartoacylase is a regulated nuclear-cytoplasmic enzyme. Faseb J. 20 (12), 2139-2141 (2006).
  14. Moffett, J. R., et al. Extensive aspartoacylase expression in the rat central nervous system. Glia. 59 (10), 1414-1434 (2011).
  15. Kirmani, B. F., Jacobowitz, D. M., Kallarakal, A. T., Namboodiri, M. A. Aspartoacylase is restricted primarily to myelin synthesizing cells in the CNS: therapeutic implications for Canavan disease. Brain Res Mol Brain Res. 107 (2), 176-182 (2002).
  16. Kirmani, B. F., Jacobowitz, D. M., Namboodiri, M. A. Developmental increase of aspartoacylase in oligodendrocytes parallels CNS myelination. Brain Res Dev Brain Res. 140 (1), 105-115 (2003).
  17. Zhang, Y., et al. An RNA-sequencing transcriptome and splicing database of glia, neurons, and vascular cells of the cerebral cortex. J Neurosci. 34 (36), 11929-11947 (2014).
check_url/fr/53976?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Jolly, S., Fudge, A., Pringle, N., Richardson, W. D., Li, H. Combining Double Fluorescence In Situ Hybridization with Immunolabelling for Detection of the Expression of Three Genes in Mouse Brain Sections. J. Vis. Exp. (109), e53976, doi:10.3791/53976 (2016).

View Video