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Article de méthode

Covalent liaison des anticorps à la cellulose de papier disques et leurs applications dans l'œil nu colorimétriques immunoessais

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DOI :

10.3791/54111

⸱

21 octobre 2016

 ,  ,  , 
1School of Applied Science, Temasek Polytechnic, 2University of Applied Sciences Utrecht

Dans cet article

Résumé

Dans ce manuscrit, les méthodes d’oxydation périodique et de réticulation du glutaraldéhyde pour l’immobilisation covalente des anticorps sur des disques de papier sont présentées. L’activité de liaison des anticorps immobilisés a été évaluée. Sur la base de ces résultats, une méthode de réticulation du glutaraldéhyde a été utilisée pour développer un nouveau test immunologique sur papier pour la détection de l’immunoglobuline G (IgG).

Résumé

Ce rapport présente deux méthodes pour l'immobilisation covalente des anticorps de capture sur le filtre de cellulose de qualité de papier n ° 1 (papier filtre à moyen débit) disques et de grade n ° 113 (papier filtre à écoulement rapide) disques. Ces disques de papier de cellulose ont été greffées avec des groupes fonctionnels amine par l'intermédiaire d'une technique de couplage du type silane avant que les anticorps sont immobilisés sur eux. les méthodes de reticulation glutaraldéhyde oxydation et de periodate ont été utilisés pour greffer les anticorps de capture sur les disques de papier de cellulose. Afin de garantir la capacité maximale de liaison des anticorps de capture à leurs cibles après l'immobilisation, les effets de diverses concentrations de périodate de sodium, le glutaraldéhyde, et des anticorps de capture sur la surface des disques de papier ont été étudiés. Les anticorps qui ont été revêtus sur des disques de papier cellulosique à fonction amine par un agent de réticulation glutaraldéhyde ont montré une activité accrue de liaison à la cible par rapport au procédé d'oxydation du periodate. IgG (dans le sérum de référence de la souris) a été utilisé comme une cible de référence dans cette étude pour tester l'application des anticorps immobilisés de manière covalente par le glutaraldéhyde. Un nouveau papier, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) a été développé et validé avec succès pour la détection des IgG. Cette méthode ne nécessite pas d'équipements, et il peut détecter 100 ng / ml d'IgG. Le papier filtre à écoulement rapide était plus sensible que le papier filtre à moyen débit. La période d'incubation de ce test était courte et nécessaire de petits volumes d'échantillons. Cet oeil nu, immuno-essai colorimétrique peut être étendu pour détecter d'autres cibles qui sont identifiés par la méthode ELISA classique.

Introduction

L'étude des tests de point de soins (POCT) de diagnostic est important pour le développement de nouvelles stratégies pour la thérapeutique, la médecine personnalisée, et soins à domicile 1. Papiers de cellulose sont largement utilisés comme plates - formes dans les immunoessais, car ils ne coûtent pas cher, accessible et familier aux utilisateurs 2. En outre, la structure poreuse du papier cellulosique possède la puissance pour entraîner l'écoulement du liquide sans impact énergétique supplémentaire. Actes de la bioanalyse sur papier peuvent être trouvés dès le 20 e siècle, quand la chromatographie sur papier a été inventé en 1952. L'exemple le plus répandu est des tests immunochromatographiques 3, tels que la grossesse et de test du diabète bandes. Ces tests fournissent des temps d'analyse relativement rapide et peu coûteuse analyse 4. En raison de leur simplicité, ces tests de bandes de papier classiques ont été largement utilisés dans le diagnostic ADBD 5.

Les méthodes de détection , y compris colorimétriques 6, électrochimiques 7 et 8 électrochimiluminescence méthodes ont été rapportées pour mesurer des cibles dans des échantillons biologiques. En plus de ces méthodes quantitatives, une méthode fiable pour immobiliser des anticorps sur du papier de cellulose est également importante pour le développement de dispositifs de diagnostic. Adsorption non spécifique est la principale stratégie pour la modification des anticorps sur la surface des dispositifs à base de papier 9, 10 pour garantir une capacité de liaison maximale à leurs cibles après l' immobilisation. Cependant, une étude précédente ont montré que les anticorps qui sont adsorbés sur du papier de cellulose peuvent désorber des fibres 11 de 40%. Ainsi, l' adsorption directe d'anticorps sur la cellulose ne peut pas fournir des résultats reproductibles 12. Covalent immobilisation des anticorps qui sont greffés sur les surfaces de papier est une méthode alternative de développement bioessais sur papier efficaces 13. Divers procédés ont été rapportés pour la modification de la cellulose 14, 15 . Idéalement, les anticorps doivent maintenir leur fonctionnalité initiale après immobilisation 12. Carbonyldiimidazole combiné avec du 1-cyano-4-diméthylaminopyridinium tétrafluoroborate 16; 1-fluoro-2-nitro-4-azidobenzene grâce à une stratégie d'activation à base d'UV 17, 18; une stratégie chimioenzymatique basé sur 19 modification xyloglucane; un 1,4-phenylenediisothiocyanate agent de liaison 20; hétéropolysaccharide oxydation 21 click chemistry 22; et 23 porphyrines cationiques ont été utilisés pour immobiliser de manière covalente de biomolécules sur du papier de cellulose. Chitosan papier modifié a été utilisé pour développer immunodevices à base de papier 24-26 car elle est abondante et biocompatible 27. Le chitosane est cationique et adhère fortement à la cellulose anionique 27. Les anticorps de capture sont immobilisés sur le papier par revêtement de chitosane et de reticulation par le glutaraldéhyde. oxydation periodate est un autre procédé de greffage de la captanticorps ure sur le papier de cellulose 28. Dans ce procédé, le periodate de sodium est repéré sur le papier pour convertir le 1,2-dihydroxylé (glycol), les groupes de cellulose directement à des groupes aldéhyde. Les groupes aldéhyde sont ensuite utilisés pour former des liaisons covalentes entre les polysaccharides et les anticorps 28. Bien que la fabrication est simple, il est difficile de se laver complètement periodate de sodium. Le periodate de sodium non lavé peut provoquer une oxydation supplémentaire des anticorps qui sont immobilisés sur le papier de cellulose, ce qui affecte l'activité et la stabilité des anticorps N -. (3-diméthylaminopropyl) - N chlorhydrate -ethylcarbodiimide et N linkers croisées hydroxysuccinimide sont également utilisés pour immobiliser de façon covalente à des anticorps électrofilage d' acide et d' acétate de cellulose , des nanofibres de poly-l-lactique pour le développement de dosages à base de nanofibres-29.

Dans cette étude, une technique de couplage de type silane a été utilisé pour greffer des groupes fonctionnels amine sur cellulose des disques de papier. Cette technique permet de conserver la taille d'origine des pores, mèche, et le taux des papiers filtres de cellulose de filtration, ce qui permet un maximum vertical immunoessais accréditives dans. La technique de couplage à base de silane a été largement utilisé dans des biocapteurs pour fonctionnaliser des surfaces de substrats avec des groupes amine secondaire, suivie d'une modification supplémentaire à l'aide de biomolécules. Le greffage de groupes amine sur la surface de la matrice comprend une réaction de condensation entre des groupes -OH des agents de silane organofonctionnel et d'une matrice 30 substrat. Les disques de papier de cellulose ont été fonctionnalisés par des groupes amine par couplage à base de silane par le 3-aminopropyltriméthoxysilane (APS) 31. Ceci a été suivi par l'anticorps de capture de manière covalente immobilisant à l'aide de deux méthodes différentes. Le premier procédé implique la liaison des anticorps de capture oxydé au periodate des disques de papier de cellulose à fonctionnalité amine. La deuxième méthode utilise le glutaraldéhyde comme agent de reticulation pour fixer la capture Antibodies aux disques de papier de cellulose fonctionnalisée groupe-amine. La présence d'anticorps de capture a été confirmée par une IgG de lapin isothiocyanate de fluorescéine anti-humain (FITC), en utilisant un système d'imagerie moléculaire par fluorescence. L'activité de liaison des anticorps de lapin anti-IgG humaine-FITC de chèvre à l'IgG anti-lapin a également été évaluée par le substrat de la peroxydase. Les effets de diverses concentrations de périodate de sodium, le glutaraldéhyde, et des anticorps de capture ont été étudiés. Le test de l'anticorps de capture immobilisé d'application a été réalisée avec succès grâce à la détection de sérum IgG.

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Protocole

1. Intensification groupes fonctionnels amine sur cellulose de papier Disques

  1. Préparer un morceau de papier carré avec une dimension de 1 cm x 1 cm, et 100 disques de papier fabriqués à partir de la catégorie no 1 papier de cellulose avec un diamètre de 6,0 mm (papier filtre à moyen débit) à l'aide d'un poinçon.
  2. Pour tirer -NH 2 groupes sur les disques de papier, mélanger 1 ml APS et 10 ml d' acétone dans un flacon en verre de 50 ml dans la hotte. Ajouter des disques de papier au mélange réactif APS fraîchement préparé, et on incube pendant 5 heures sous agitation orbitale (200 rpm) à température ambiante 32.
    Attention: Manipuler APS et de l'acétone dans la hotte.
  3. Décanter excès de solution de la bouteille de 50 ml en verre dans un récipient de déchets organiques.
  4. Ajouter 10 ml d'acétone à la bouteille en verre, bien mélanger et décanter complètement pour éliminer toutes les APS pas réagi et d'autres impuretés. Répétez cette étape deux fois.
  5. Répartir les disques de papier sur la serviette en papier et le placer dans un four à 110 ° pendant 3 heures. Laisser ledes disques de papier pour refroidir. Stocker les disques dans un tube de centrifugation de 50 ml à la température ambiante.
  6. Utilisez Fourier spectroscopie infrarouge à transformée (FTIR) pour vérifier le greffage de groupes amine sur le papier carré de cellulose, comme décrit ci - dessous (figure 3A).
    1. Allumez l'ordinateur et ouvrez l'instrument de spectroscopie FTIR.
    2. Ouvrez le logiciel pour la spectroscopie FTIR.
    3. Aller à 'Measurement → Initialize'. Les rectangles pour 'BS: KBr', 'Lampe: Infrarouge »et« Laser »devient vert lorsque l'initialisation est terminée.
    4. Choisissez «Données» ci-dessous les rectangles, et sélectionnez '% Transmittance', 'Happ-Genzel', '45', '4.0', et 'min: 400, Max: 4000' pour 'Mode de mesure', 'apodisation', ' Non. des Scans »,« Résolution »et« Range (cm-1).
    5. Cliquez sur "Mesure".
    6. Sélectionnez 'Fichier de données »pour les données de base. Écrirebas les commentaires.
    7. Cliquez sur 'BKG' pour obtenir la ligne de base pour le fond.
    8. Fixer le papier carré sur le porte-échantillon de film.
    9. Sélectionnez 'Fichier de données' pour les données de l'échantillon. Notez les commentaires.
    10. Cliquez sur 'échantillon' pour obtenir les spectres de l'échantillon.
    11. Fermez l'application de la spectroscopie FTIR et éteindre l'ordinateur.
  7. Répétez les étapes ci - dessus (étapes 1.1 à 1.6) pour préparer la catégorie no 113 cellulose du papier et des disques (papier de filtre à écoulement rapide) carré amine-fonctionnalisés, et d' obtenir les spectres FTIR pour le grade n ° 113 papier carré (figure 3B).

2. Covalent Immobilisation d'anticorps sur Amine-fonctionnalisés Cellulose Papier Disques

figure-protocol-1
Figure 1. immobilisation covalente d'anticorps par deux méthodes différentes.Un. Les anticorps immobilisés sur des disques de papier de cellulose amine fonctionnalisée par oxydation au periodate. Les résidus d'hydrates de carbone ont été oxydés par le periodate de sodium pour produire des groupes fonctionnels aldéhyde. Ensuite, les anticorps oxydés ont été chargés sur des disques de papier cellulose à fonction amine. B. Les anticorps ont ensuite été immobilisés sur des disques de papier cellulosique à fonction amine par l'intermédiaire du glutaraldéhyde. Les disques de papier de cellulose à fonctionnalité amine ont été immergées dans une solution de glutaraldéhyde à 0,05% pour introduire des groupes aldéhydes aux disques de papier. Après le lavage, les anticorps ont été chargés sur les disques de papier d'aldéhydes fonctionnalisés. S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

  1. Immobiliser des anticorps sur la cellulose des disques de papier à fonction amine par oxydation au periodate (figure 1A).
    1. Mélanger 1 pi de perioda de sodium à 2,5 mMte avec 2 ul de 0,1 mg / ml d'anticorps de lapin anti-IgG humaine-FITC et 7 ul de 100 mM, pH 5,5 tampon acétate dans un tube de 1,5 ml, et on incube le mélange dans l'obscurité pendant 30 min.
      REMARQUE: Suivez ce rapport en volume pour préparer des anticorps plus oxydés si nécessaire. Changer le rapport de volume afin d'optimiser la concentration de periodate de sodium et de l'IgG de lapin-FITC anti-humaine.
    2. Diluer la solution d'anticorps ci-dessus avec 30 pl de 50 mM de solution saline tamponnée au phosphate (PBS; pH 7,4) jusqu'à un volume final de 40 ul.
    3. Préparer trois disques de papier filtre à moyen débit amine-fonctionnalisés et trois disques de papier rapide flux à fonction amine (comme décrit à la section 1).
      1. Charge 5 ul du periodate de sodium oxydé lapin IgG anti-humain-FITC une sur l'disque de papier filtre à moyen débit et 8 ul de chaque disque ONTO papier filtre à écoulement rapide. Gardez ces disques de papier dans l'obscurité pendant une heure à température ambiante.
    4. Laver chacun des disques de papier avec 0,2 ml de lavage chamoiser (tampon Tris 50 mM avec 0,15 M de NaCl et 0,05% d'agent tensioactif, pH 7,4). Répétez le lavage trois fois.
    5. Photographier les images de fluorescence grâce à un système d' imagerie moléculaire par fluorescence pour identifier la présence d'anticorps sur la cellulose chaque disque de papier 32. Utiliser des disques de papier vierges (traités avec la même concentration d'anticorps en l'absence de periodate de sodium) en tant que témoin (figure S1 à la figure S3).
      NOTE: Pour l'optimisation expérimentale, modifier la concentration d'un paramètre qui doit être optimisé et fixer les concentrations de tous les autres paramètres. Une intensité de fluorescence élevée augmente la quantité d'anticorps de capture qui sont immobilisés sur des disques en papier de cellulose.
  2. Immobiliser anticorps sur des disques de papier de cellulose fonctionnalisés amine par glutaraldéhyde (figure 1B).
    1. Ajouter les trois APS moyen débit traité disques de papier filtre et les trois disques de papier filtre rapide débit (described dans la section 1) à 2 ml de PBS à 50 mM (pH 7,4) contenant 0,05% de glutaraldéhyde pendant 1 heure, sous agitation orbitale à température ambiante.
      Attention: Manipuler glutaraldéhyde dans la hotte.
    2. Placez trois disques chacun dans deux tubes de 1,5 ml de centrifugeuse. Ajouter 1 ml de désionisée (DI) à chaque tube et agiter les tubes pendant 10 secondes. Éliminer l'eau par aspiration avec une pipette. Répétez deux fois pour éliminer toute glutaraldéhyde qui n'a pas réagi.
    3. Charge 5 ul de 25 ug d'IgG-FITC (anticorps de capture) anti-humain / lapin ml sur chaque support d'écoulement disque de papier filtre aldéhyde fonctionnalisé, et ajouter 8 pi sur chaque flux rapide disque de papier filtre aldéhyde fonctionnalisé. Laisser incuber dans l'obscurité pendant environ 20 min à température ambiante. Ensuite, ajouter 10 pi de PBS à 50 mM (pH 7,4) à chaque disque de papier sans enlever les anticorps et on incube pendant 40 minutes pour la réaction de l'aminé aldéhyde.
    4. Laver les disques de papier avec 0,2 ml de tampon de lavage sur le dessus d'une serviette en papier. Répétez lalaver deux fois.
    5. Photographier les images de fluorescence grâce à un imageur moléculaire de fluorescence pour vérifier la présence d'anticorps sur chaque disque de papier cellulose 33. Utilisez des disques de papier blanc comme témoin.
      REMARQUE: Dans la figure 4, «0» représente le disque de papier vierge qui a été traité avec la même concentration de FITC-anticorps en l'absence de glutaraldéhyde; sur la figure 5A, les disques de papier vierges ont été traités avec du glutaraldéhyde, mais sans FITC-anticorps ont été chargés sur des disques de papier.
  3. Sécher les disques de papier (de sections 2.1 et 2.2) à 37 ° C pendant 10 min.
  4. Bloquer les disques en papier avec 15 pi de tampon de blocage (10% de lait écrémé en poudre dans du tampon Tris 50 mM, pH 7,4, avec 0,15 M de NaCl) pendant 10 min à température ambiante.
  5. Charge 5 pi et 8 pi de conjugué à la peroxydase de chèvre anti-IgG de lapin dans du PBS (1: 10000) sur un milieu d'écoulement et des disques de papier filtre à écoulement rapide, respectivement. Incuber30 min dans l'obscurité à la température ambiante.
  6. Laver les disques de papier avec 0,2 ml de tampon de lavage sur le dessus d'une serviette en papier. Répétez le lavage trois fois.
    NOTE: Il est nécessaire de retirer le tampon de lavage que les résultats ne sont pas affectés par le tampon.
  7. Charger un mélange de 10 ul de 3,3 ', 5,5'-tétraméthylbenzidine (TMB) et d'une solution de peroxyde d'hydrogène sur chaque disque.
  8. Prenez des images des disques de papier avec un appareil photo numérique ou un téléphone intelligent après 5 min d'incubation.
    REMARQUE: Dans la figure 5B, «0» représente les disques de papier qui ont été traités avec du glutaraldéhyde, puis en chargeant un anticorps HRP (peroxydase de raifort) conjugué en l'absence de FITC-anticorps.

3. Papier à base ELISA pour la détection des IgG

figure-protocol-2
Figure 2. Représentation schématique de l'ELISA à base de papier-foles anticorps de détection. capture r IgG ont été immobilisés de manière covalente sur les disques de papier de cellulose fonctionnalisée par le biais de l' aldéhyde du glutaraldéhyde. Les disques de papier de cellulose ont été bloquées avec un tampon de blocage. Cible d'IgG a ensuite été ajouté aux disques, suivi par le chargement d'anticorps de signal HRP-conjugué. Enfin, la solution TMB et le mélange de peroxyde d'hydrogène a été chargé sur chaque disque de papier pour la lecture de la couleur. S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

  1. Ajouter 5 ml de solution de glutaraldéhyde à 0,05% (préparé dans un tampon de 50 mM de PBS, pH 7,4) dans un flacon en verre de 20 ml. Immergez 15 moyen d'écoulement des disques de papier filtre à fonction amine dans cette solution et maintenir pendant 1 heure en agitant à la température ambiante.
    1. En même temps, répétez l'étape 3.1 pour préparer un autre 15 aldéhyde disques de papier filtre rapide flux fonctionnalisés.
      Attention: Manipuler glutaraldéhyde dans les fuméescapuche.
  2. Pour supprimer glutaraldéhyde n'a pas réagi à partir des disques de papier, placez les 15 moyen d'écoulement des disques de papier filtre dans un tube de 15 ml de centrifugation, et les disques de papier filtre 15 fast-flux dans un autre tube de 15 ml de centrifugeuse. Ajouter 5 ml d'eau DI à chaque tube et agiter les tubes pendant 10 secondes. Éliminer l'eau par aspiration avec une pipette. Répétez deux fois pour éliminer toute glutaraldéhyde qui n'a pas réagi.
  3. Sécher les disques de papier dans un four à 37 °.
  4. Ajouter 5 pi et 8 pi de ml d'anticorps de fragments de 0,025 mg / souris IgG-Fc à chacun des moyens d'écoulement et de papier filtre à écoulement rapide des disques, respectivement, et incuber pendant 20 min.
  5. Ajouter 10 pi de PBS à 50 mM (pH 7,4) à chaque disque de papier sans enlever les anticorps et on incube pendant 40 minutes pour la réaction de l'aminé aldéhyde.
  6. Laver les disques de papier avec 0,2 ml de tampon de lavage sur le dessus d'une serviette en papier. Répétez le lavage trois fois.
  7. Sécher les disques de papier dans un four à 37 ° C.
  8. Bloquer les disques de papier wvec 15 pi de tampon de blocage pendant 10 min à température ambiante.
  9. Laver chaque disque de papier avec 0,2 ml de tampon de lavage sur le dessus d'une serviette en papier. Répétez le lavage trois fois.
  10. Exécutez les normes IgG.
    1. Charge 10 ul de diverses concentrations d' IgG (par exemple, 0, 10, 125, 250 et 500 ng / ml dans le PBS) sur chaque disque en trois exemplaires. Incuber pendant 1 heure à température ambiante.
  11. Laver les disques de papier avec 0,2 ml de tampon de lavage sur le dessus d'une serviette en papier. Répétez le lavage trois fois.
  12. Charge 10 pi d'anticorps de souris conjugué à HRP d'IgG fragment Fc (1: 10 000, 10 mM de PBS, pH 7,4) et incuber pendant 1 heure à température ambiante.
  13. Laver les disques de papier avec 0,2 ml de tampon de lavage sur le dessus d'une serviette en papier. Répétez le lavage trois fois.
    NOTE: Il est nécessaire de retirer le tampon de lavage que les résultats ne sont pas affectés par la présence de tampon.
  14. Charger un mélange de 10 pi de TMB et du peroxyde d'hydrogène sur chaque disque.
  15. Timages ake de tous les disques de papier avec un appareil photo numérique ou un téléphone intelligent après 5 min d'incubation.
    REMARQUE: Dans la figure 6A, «0» représente des disques en papier traités avec des anticorps de capture immobilisation et la solution d' anticorps-HRP / TMB sans sérum IgG.
  16. Analyser l'intensité de chaque disque de papier dans l'image par J. Image
    1. Convertir les images prises à l'étape 3.15 au format «.tif».
    2. Ouvrez le logiciel «Image J».
    3. Aller à 'Fichier → Ouvrir', choisir l'image à analyser.
    4. Cliquez sur le bouton de forme 'Oval'.
    5. Aller à 'image → Type → 32 bits.
    6. Allez sur 'Modifier → Invert'.
    7. Allez sur 'Analyser → Mesure.
    8. Copier et analyser les données dans un tableur.

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Résultats

figure-results-1
Transformer Figure 3. Fourier infrarouge (FTIR) de papier filtre à moyen débit non traité et APS-traité carré (A) et le filtre à écoulement rapide papier carré (B). A. Les spectres pour le filtre à moyen écoulement brut papier carré était similaire à celle de l'APS filtre à moyen débit traité papier carré. L'...

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Discussion

le revêtement direct de chèvre purifié par affinité anti-Souris IgG-Fc de l'anticorps de capture sur des disques de papier de cellulose non modifié a été réalisée pour détecter les concentrations d'IgG. Les résultats indiquent que, outre la fixation des anticorps de capture est nécessaire pour la reproductibilité. La technique de silane a été utilisé avec succès pour introduire des groupes fonctionnels amine sur les disques de papier de cellulose 34. La concentration de l'APS affecte l'immobil...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu financièrement par le ministère de l’Éducation de Singapour par le biais de la subvention pour l’innovation translationnelle (MOE2012-TIF-2-G-009).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Papier filtre en cellulose, Grade 1 (papier filtre à débit moyen)GE Healthcare Pte Ltd Singapour  ;1001 110
Papier filtre cellulose, grade 113 (papier filtre à écoulement rapide)Sigma-Aldrich, Singapour1113-320
GlutaraldéhydeSigma-Aldrich, SingapourG6257Grade II, 25 % dans H2O
SurfactantTween-20, Sigma-Aldrich, SingapourP2287
Album de sérum bovin  ;Sigma-Aldrich, SingapourA2153
Lait écrémé en poudreLouis Franç ; ois  ;Emballé par Kitchen Capers, Singapour
Base TrisPromegaH5135
Periodate de sodiumMerck106597
Na2HPO4Merck106585
KH2PO4Merck104873
NaClCALBIOCHEM
NaOHMerck106462
HClMerck100317
tampon phosphate salin (PBS)N/AN/APBS, contenant 137  ; mmol/L NaCl, 2,7  ; mmol/L KCl, 8,0  ; mmol⁠ ;/⁠ ; L Na2HPO4 et 1,5 mmol/L KH2PO4, est préparé avec de l’eau et ajusté à pH 7,4 avec 0,1  ; mol/L NaOH ou 0,1  ; mol/L HCl
AcétoneTee Hai Chem Pte Ltd Singapour9005-68
Mélange de solution de TMB et de peroxyde d’hydrogène  ;Solution ultra TMB-ELISA en 1 étape, Thermo Scientific Pierce340291 L
Lapin anti-humain IgG-FITCTWC/Bio Pte Ltd Singapoursc-2278
Peroxydase conjuguée chèvre anti-lapinIgG TWC/Bio Pte Ltd Singapoursc-2030
Affinité chèvre purifiée anti-souris IgG-Fc revêtement anticorpsBethyl Laboratories, IncA90-131A
Référence souris sérumBethyl Laboratories, IncRS10-101-59,5 mg/ml
HRP chèvre conjuguée anti-souris détection IgG-FcBethyl Laboratories, IncA90-131P
Equipment
Spectrophotomètre infrarouge à transformée de FourierShimadzu IR Prestige-21  ;N/A
Imageur moléculaire à fluorescencePharos FXTM plus, Bio-Rad, SingapourN/A
FourNUVE FN500N/A
Turbo mixer VM-2000MYC LTDN/A
ImageJRGB, téléchargement gratuitN/A
567441 anticorps

Références

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