Summary

Полностью автоматизированный центробежный Микрожидкостных Устройство для сверхчувствительного обнаружения белка из цельной крови

Published: April 16, 2016
doi:

Summary

This protocol demonstrates how to achieve femto molar detection sensitivity of proteins in 10 µL of whole blood within 30 min. This can be achieved by using electrospun nanofibrous mats integrated in a lab-on-a-disc, which offers high surface area as well as effective mixing and washing for enhanced signal-to-noise ratio.

Abstract

Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) is a promising method to detect small amount of proteins in biological samples. The devices providing a platform for reduced sample volume and assay time as well as full automation are required for potential use in point-of-care-diagnostics. Recently, we have demonstrated ultrasensitive detection of serum proteins, C-reactive protein (CRP) and cardiac troponin I (cTnI), utilizing a lab-on-a-disc composed of TiO2 nanofibrous (NF) mats. It showed a large dynamic range with femto molar (fM) detection sensitivity, from a small volume of whole blood in 30 min. The device consists of several components for blood separation, metering, mixing, and washing that are automated for improved sensitivity from low sample volumes. Here, in the video demonstration, we show the experimental protocols and know-how for the fabrication of NFs as well as the disc, their integration and the operation in the following order: processes for preparing TiO2 NF mat; transfer-printing of TiO2 NF mat onto the disc; surface modification for immune-reactions, disc assembly and operation; on-disc detection and representative results for immunoassay. Use of this device enables multiplexed analysis with minimal consumption of samples and reagents. Given the advantages, the device should find use in a wide variety of applications, and prove beneficial in facilitating the analysis of low abundant proteins.

Introduction

Несколько платформ для диагностики заболеваний, были разработаны на основе наноразмерных материалов , таких как 1,2 нанопроводов, 3 наночастицы, 4, 5 нанотрубок и нановолокон (NFS) 6-8. Эти наноматериалы предлагают отличные перспективы в разработке новых технологий для высокочувствительных биопробы благодаря своим уникальным физико-химическим свойствам. Например, мезопористый оксид цинка нановолокна были использованы для фемтосоты-молярного чувствительного обнаружения рака молочной железы биомаркеров. 9 В последнее время наноматериалы на основе диоксида титана (TiO 2), были исследованы в течение биоаналитических приложений 10 принимая во внимание их химическую стабильность, 11 пренебрежимо мало денатурации белка , 12 и биосовместимость. 13 Кроме того, гидроксильные группы на поверхности TiO 2 облегчить химическую модификацию и ковалентное присоединение биомолекулы. 14,15 узорчатого TiO 2 THIп пленки 16 или TiO 2 нанотрубки 17 были использованы для повышения чувствительности обнаружения белка – мишени за счет увеличения площади поверхности; Тем не менее, процесс изготовления является достаточно сложным и требует дорогостоящего оборудования. С другой стороны, electrospun НФ , получают внимание из – за их высокой площади поверхности, а также простой и изготовление недорогих процесса; 18,19 все же, хрупкое или ослаблены характеристикой electrospun TiO 2 NF мата делает его трудно обрабатывать и интегрироваться с микрофлюидальных устройствами. 6,20 Таким образом, TiO 2 NF маты редко используются в биоаналитических приложениях, особенно те ​​, которые требуют жестких условий промывки.

В этом исследовании, чтобы преодолеть эти ограничения, мы разработали новую технологию для передачи electrospun NF матов на поверхности любой целевой подложки за счет использования клеевого слоя тонкой полидиметилсилоксана (PDMS). Furthermore, мы успешно продемонстрировали интеграцию electrospun TiO 2 NF Маты на центробежный микрожидком устройства изготовлен из поликарбоната (PC). С помощью этого устройства, высокий чувствительный, полностью автоматизированы и интегрированы обнаружение С-реактивного белка (CRP), а также сердечный тропонин I (cTnI) был достигнут в течение 30 мин только с 10 мкл цельной крови. 21 Из – за комбинированный преимущества свойств NFs и центробежной платформы, анализ представил широкий динамический диапазон на шесть порядков от 1 пг / мл (~ 8 Fm) до 100 нг / мл (~ 0,8 пм) с нижним пределом обнаружения 0,8 пг / мл (~ 6 Fm) для СРБ и динамическом диапазоне от 10 пг / мл (~ 0,4 пМ) до 100 нг / мл (~ 4 нм) с пределом обнаружения 37 пг / мл (~ 1,5 мкм) для cTnI. Эти пределы обнаружения составляют ~ 300 и ~ 20 раз ниже по сравнению с их соответствующими традиционными результатами ELISA. Этот метод может быть применен для обнаружения любых белков-мишеней, с соответствующими антителами. В целом, это устройство совместнопакетирования в значительной степени способствовать лабораторной диагностики и биохимических анализов , так как он может обнаружить редкие количества белков – мишеней с большой чувствительностью даже от очень малых количеств биологических образцов, например, по 10 мкл цельной крови. Хотя мы только показали обнаружение сывороточного белка с использованием ELISA в данном исследовании, передача и интеграция технологии electrospun NFs с микрофлюидальных устройств можно было бы также более широкое применение в других биохимических реакций, которые требуют большую площадь поверхности для достижения высокой чувствительности обнаружения.

Protocol

Примечание: Кровь отбирали у здоровых пациентов, и собирали в пробирку для сбора крови. Письменное информированное согласие было получено от всех добровольцев. 1. Изготовление TiO 2 NF Мат Приготовление раствора 22 предшественника <o…

Representative Results

Используя этот протокол, полностью автоматизированный центробежный микрожидкостных устройство для обнаружения белка из цельной крови с высокой чувствительностью был подготовлен. В TiO 2 NF маты были подготовлены процессы электроформования и кальцинации. Для то?…

Discussion

Анализ на TiO 2 NF интегрированный диск представляет собой быстрый, недорогой и удобной техникой для сверхчувствительного обнаружения низких обильных белков , присутствующих в очень небольшом объеме крови. Этот метод имеет то преимущество, что с помощью небольших объемов образцов …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Национальным исследовательским фондом Кореи (NRF) грантов (2013R1A2A2A05004314, 2012R1A1A2043747), грант от Корейского медицинских технологий R & D проекта, Министерство здравоохранения и социального обеспечения (A121994) и IBS-R020-D1, финансируемой правительством Кореи.

Materials

Si wafer LG SILTRON Polished Wafer, test grade Dia. (mm) = 150, orientation = <100>, dopant = boron, RES(Ohm-cm) = 1 – 30, thickness (μm) = 650 – 700
Polycarbonate (PC)  Daedong Plastic PCS#6900 Thickness (mm) = 1 and 5 
Titanium tetraisopropoxide, 98%, Sigma-Aldrich 205273
Polyvinylpyrrolidone, Mw = 1,300,000 Sigma-Aldrich 437190
Acetic acid Sigma-Aldrich 320099
Anhydrous ethanol Sigma-Aldrich 459836
Tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahydrooctyl)-1-trichlorosilane Sigma-Aldrich 448931
PDMS and curing agent Dow Corning SYLGARD 184
GPDES Gelest Inc SIG5832.0 
Ethanol J T Baker
FE-SEM FEI Nova NanoSEM
X-ray photoelectron spectroscopy ThermoFisher K-alpha
3D modeling machine M&I CNC Lab, Korea CNC milling machine
Wax-dispensing machine Hanra Precision Eng. Co. Ltd., Korea Customized
Double-sided adhesive tape FLEXcon, USA DFM 200 clear 150 POLY H-9 V-95
Cutting plotter Graphtec Corporation, Japan Graphtec CE3000-60 MK2
Spin coater MIDAS SPIN-3000D
Furnace (calcination) R. D. WEBB COMPANY WEBB 99
Rheometer (Tack test) Thermo Scientific Haake MARS III – ORM Package
Oxygen plasma system FEMTO CUTE
Monoclonal mouse antihuman hsCRP Hytest Ltd., Finland 4C28 (clone # C5)
Monoclonal mouse anti-cTnI Hytest Ltd., Finland 4T21 (clone # 19C7)
HRP conjugated goat polyclonal anti-hsCRP Abcam plc., MA ab19175
HRP conjugated mouse monoclonal anti-cTnI Abcam plc., MA ab24460 (clone # 16A11)
hsCRP Abcam plc., MA ab111647
cTnI Fitzgerald, MA 30-AT43
Bovine Albumin Sigma-Aldrich A7906
PBS Amresco Inc E404
Blood collection tubes BD vacutainer 367844 K2 EDTA 7.2 mg plus blood
collection tubes
SuperSignal ELISA femto Invitrogen 37074
Modular multilabel plate reader Perkin Elmer Envision 2104
Disc operating machine Hanra Precision Eng. Co. Ltd., Korea Customized
Photomultiplier tube (PMT) Hamamatsu Photonics H1189-210
AutoCAD AutoDesk Version 2012 Design software
SolidWorks 3D CAD software  SOLIDWORKS Corp. Version 2013 3D Design software,
Edgecam Vero software version 2009.01.06928 Code generating software
DeskCNC Carken Co. version 2.0.2.18 CNC milling machine software

References

  1. Zhang, Y., et al. Nanomaterials for Ultrasensitive Protein Detection. Adv. Mater. 25 (28), 3802-3819 (2013).
  2. Hu, W., Li, C. M. Nanomaterial-based advanced immunoassays. Wiley Interdiscip. Rev. Nanomed. Nanobiotechnol. 3 (2), 119-133 (2011).
  3. Yang-Kyu, C., Chang-Hoon, K. Silicon Nanowire Biosensor for Cancer Markers. Biosensors and Cancer. , 164-183 (2012).
  4. Baltazar, R., Vistas, C. R., Ferreira, G. M. Biosensing Applications Using Nanoparticles. Nanocomposite Particles for Bio-Applications. , 265-282 (2011).
  5. Roy, P., Berger, S., Schmuki, P. TiO2 Nanotubes: Synthesis and Applications. Angew. Chem. Int. Ed. 50 (13), 2904-2939 (2011).
  6. Yang, D., et al. Electrospun Nanofibrous Membranes: A Novel Solid Substrate for Microfluidic Immunoassays for HIV. Adv. Mater. 20 (24), 4770-4775 (2008).
  7. Chantasirichot, S., Ishihara, K. Electrospun phospholipid polymer substrate for enhanced performance in immunoassay system. Biosens. Bioelectron. 38 (1), 209-214 (2012).
  8. Zhang, N., et al. Electrospun TiO2 Nanofiber-Based Cell Capture Assay for Detecting Circulating Tumor Cells from Colorectal and Gastric Cancer Patients. Adv. Mater. 24 (20), 2756-2760 (2012).
  9. Ali, M. A., Mondal, K., Singh, C., Dhar Malhotra, B., Sharma, A. Anti-epidermal growth factor receptor conjugated mesoporous zinc oxide nanofibers for breast cancer diagnostics. Nanoscale. 7 (16), 7234-7245 (2015).
  10. Mondal, K., Ali, M. A., Agrawal, V. V., Malhotra, B. D., Sharma, A. Highly Sensitive Biofunctionalized Mesoporous Electrospun TiO2 Nanofiber Based Interface for Biosensing. ACS Appl. Mater. Interfaces. 6 (4), 2516-2527 (2014).
  11. Tu, W., Dong, Y., Lei, J., Ju, H. Low-Potential Photoelectrochemical Biosensing Using Porphyrin-Functionalized TiO2 Nanoparticles. Anal. Chem. 82 (20), 8711-8716 (2010).
  12. Liu, S., Chen, A. Coadsorption of Horseradish Peroxidase with Thionine on TiO2 Nanotubes for Biosensing. Langmuir. 21 (18), 8409-8413 (2005).
  13. Portan, D. V., Kroustalli, A. A., Deligianni, D. D., Papanicolaou, G. C. On the biocompatibility between TiO2 nanotubes layer and human osteoblasts. J.Biomed.Mater.Res. Part A. 100 (10), 2546-2553 (2012).
  14. Dettin, M., et al. Covalent surface modification of titanium oxide with different adhesive peptides: Surface characterization and osteoblast-like cell adhesion. J. Biomed. Mater. Res. Part A. 90 (1), 35-45 (2009).
  15. Kim, W. -. J., et al. Enhanced Protein Immobilization Efficiency on a TiO2 Surface Modified with a Hydroxyl Functional Group. Langmuir. 25 (19), 11692-11697 (2009).
  16. Son, K. J., Ahn, S. H., Kim, J. H., Koh, W. -. G. Graft Copolymer-Templated Mesoporous TiO2 Films Micropatterned with Poly(ethylene glycol) Hydrogel: Novel Platform for Highly Sensitive Protein Microarrays. ACS Appl. Mater. Interfaces. 3 (2), 573-581 (2011).
  17. Kar, P., Pandey, A., Greer, J. J., Shankar, K. Ultrahigh sensitivity assays for human cardiac troponin I using TiO2 nanotube arrays. Lab Chip. 12 (4), 821-828 (2012).
  18. Agarwal, S., Wendorff, J. H., Greiner, A. Use of electrospinning technique for biomedical applications. Polymer. 49 (26), 5603-5621 (2008).
  19. Ding, B., Wang, M., Wang, X., Yu, J., Sun, G. Electrospun nanomaterials for ultrasensitive sensors. Mater. Today. 13 (11), 16-27 (2010).
  20. Liu, Y., Yang, D., Yu, T., Jiang, X. Incorporation of electrospun nanofibrous PVDF membranes into a microfluidic chip assembled by PDMS and scotch tape for immunoassays. ELECTROPHORESIS. 30 (18), 3269-3275 (2009).
  21. Lee, W. S., Sunkara, V., Han, J. -. R., Park, Y. -. S., Cho, Y. -. K. Electrospun TiO2 nanofiber integrated lab-on-a-disc for ultrasensitive protein detection from whole blood. Lab Chip. 15 (2), 478-485 (2015).
  22. Li, D., Xia, Y. Fabrication of Titania Nanofibers by Electrospinning. Nano Lett. 3 (4), 555-560 (2003).
  23. Lombard, M. . SolidWorks 2013 BIBLE. , (2013).
  24. Tickoo, S. . EdgeCAM 11.0 for Manufacturers. , (2007).
  25. Zhu, R., et al. Improved adhesion of interconnected TiO2 nanofiber network on conductive substrate and its application in polymer photovoltaic devices. Appl. Phys. Lett. 93 (1), 013102 (2008).
  26. Song, M. Y., Ahn, Y. R., Jo, S. M., Kim, D. Y., Ahn, J. -. P. TiO2 single-crystalline nanorod electrode for quasi-solid-state dye-sensitized solar cells. Appl. Phys. Lett. 87 (11), 113113 (2005).
  27. Katsuhiro, O., et al. Electrospinning processed nanofibrous TiO2 membranes for photovoltaic applications. Nanotechnology. 17 (4), 1026-1031 (2006).

Play Video

Citer Cet Article
Park, Y., Sunkara, V., Kim, Y., Lee, W. S., Han, J., Cho, Y. Fully Automated Centrifugal Microfluidic Device for Ultrasensitive Protein Detection from Whole Blood. J. Vis. Exp. (110), e54143, doi:10.3791/54143 (2016).

View Video