Summary

Polyelectrolyte Complex voor Heparine Binding Domain osteogeen Growth Factor Delivery

Published: August 22, 2016
doi:

Summary

Self-assembled polyelectrolyte complexes (PEC) fabricated from heparin and protamine were deposited on alginate beads to entrap and regulate the release of osteogenic growth factors. This delivery strategy enables a 20-fold reduction of BMP-2 dose in spinal fusion applications. This article illustrates the benefits and fabrication of PECs.

Abstract

Tijdens reconstructieve bot chirurgie, zijn suprafysiologische hoeveelheden groeifactoren empirisch geladen op steigers voor een succesvolle fusie bot te promoten. Grote doses van zeer krachtige biologische agentia dienen door groeifactor instabiliteit als gevolg van de snelle enzymatische afbraak en carrier inefficiënte lokaliseren voldoende hoeveelheden groeifactor bij implantatie sites. Derhalve strategieën die de stabiliteit van groeifactoren verlengen zoals BMP-2 / NELL-1 en controle het vrijkomen kon eigenlijk hun lagere effectieve dosis en derhalve voor hogere doseringen minder nodig tijdens toekomstige botregeneratie operaties. Dit zal bijwerkingen en groeifactor verlagen. Zelf geassembleerde PEC's zijn vervaardigd om een betere controle van de BMP-2 / NELL-1 levering bieden via heparine bindend en verdere potentiëren groeifactor bioactiviteit door het versterken van in vivo stabiliteit. Hier illustreren we de eenvoud van PEC fabricage die helpt bij het delivery van diverse groeifactoren in bot reconstructieve chirurgie.

Introduction

De incidentie van pseudoartrose gerapporteerd wel 10 tot 45% degeneratieve spinale fusie en herziening spinale chirurgie 1 te zijn. De snelheid van pseudarthrose tijdens wervelkolomfusie en andere reconstructieve operaties bot, osteogene groeifactoren zoals BMP-2, Nell-1 1 en bloedplaatjes afgeleide groeifactor (PDGF) zijn ingevoerd om de novo osteogenese goede kan komen. Hiervan BMP-2 is een populaire keuze voor spinale fusie-2. Hoewel de potentie van BMP-2 bij het ​​induceren en nieuwe botvorming vergemakkelijken is goed ingeburgerd 3; klinisch significante complicaties zoals heterotope botvorming, seroom en hematoomvorming, ontstekingsreactie, radiculitis, wervellichaam osteolyse en retrograde ejaculatie blijven punten van zorg vanwege de suprafysiologische gebruikshoeveelheid 4,5.

Daarom verlagen van de dosis van BMP-2 blijft een relevante strategie in tenverleidt om bijwerkingen te minimaliseren. Daarnaast worden efficiënte carrier-systemen die nodig is om de eerste burst release van BMP-2 waargenomen in de hedendaagse collageenspons draagsystemen te onderdrukken en de verdere langdurige en gelokaliseerde aflevering van deze potente cytokine verbeteren. De laag voor laag zelfassemblage van afwisselend kationische en anionische polyelektrolyten kunnen worden gebruikt als een afstembare methode opbouwen polyelektrolyt complexen op het oppervlak van scaffold matrices of implanteerbare materialen 6. In dit verband heeft heparine (bekend om de hoogste negatieve ladingsdichtheid van biologische agentia) zijn erkend gretig binden met verschillende groeifactoren via elektrostatische en heparine bindende domeinen. Inderdaad, heparine aangetoond dat de halfwaardetijd te verlengen en aldus potentiëren de bioactiviteit van verschillende groeifactoren.

Op basis hiervan onze groep aangepast een laag voor laag zelfassemblage protocol bij een heparine gebaseerde polyelektrolytcomplex (PEC) die fabriceren ladingen en behoudt de biologische activiteiten van osteogene groeifactoren tijdens immobilisatie 7,8. Het alginaat microbead kern werd vervaardigd door het verknopen α-L-guluronate (G) residuen van alginaat met tweewaardig kation calcium of strontium ionen. Het alginaat kern is een biologisch afbreekbare matrix scaffold; die na de implantatie, is het geresorbeerd in de fusie bed ruimte bieden voor bony ingroei. Poly-L-lysine (PLL) of protamine wordt gebruikt als de kationische laag naar interlace met zowel de steiger matrix (in dit geval het alginaat microkorrel dragerdeeljes) en de negatief geladen heparine; terwijl de anionische heparine laagfuncties te stabiliseren en te lokaliseren geladen groeifactoren. De drielaags PEC is aangetoond groeifactor laadvermogen in een varkensmodel 9 verhogen. Recent zijn PEC dragers is aangetoond dat de effectieve dosis van BMP-2 succesvol met tenminste 20-voudig 10 ratten, varkens modellen van spinale fusie-8.

ntent "> Hier melden wij de methoden voor het vervaardigen van PEC voor een betere groeifactor levering in spinale fusie en de andere reconstructieve chirurgie bot met behulp van BMP-2 als een model osteogene groeifactor.

Protocol

1. Bereiding alginaatoplossing Oplossen 200 mg natriumalginaat (onbestraalde) of 400 mg van 8 MRad bestraald natriumalginaat in 10 ml dubbel gedestilleerd water en schud gedurende 1 uur voor niet-uitgestraald alginaat en 15 min voor bestraalde alginaat. Bewaar de alginaatoplossing bij 4 ° C overnacht. Filter de alginaat-oplossing met een steriele 0,2 um spuitfilter voordat alginaat microbead fabricage. 2. Alginaat Microbead Fabrication Ontsmet de elektrostatische…

Representative Results

In onze carrier, protamine werd gekozen als vervanger van poly-L-lysine omdat het vergelijkbare chemische eigenschappen en het FDA als tegengif van heparine. Optische microscoop resultaten toonden aan dat de niet-bestraalde microbolletjes waren bolvormig met een diameter van 267 ± 14 urn. (0,35 mm nozzle, stroomsnelheid van 5 ml / uur en 5,8 kV). De meerderheid van de bestraalde microkralen of druppelvorm. De diameter gemeten op de ronde deel van de bestraalde microbolletjes was 212 ± …

Discussion

Dit protocol geeft een werkwijze voor de bereiding van PEC door laag voor laag zelfassemblage. De laag-voor-laag structuur gevisualiseerd met behulp van fluorescente analogen van protamine, heparine, BMP-2 en NELL-1 en confocale microscopie. Opname en release tests tonen aan dat heparine op PEC medieert osteogene groeifactor opname en afgifte. De opname efficiëntie van de PEC methode is: NELL-1: 86,7 ± 2,7%, BMP-2: 70,5 ± 3,1%. De PEC drager een betere modulatie Nell-1 (20%) afgifte met een zuiver oppervlakteadsorpti…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

These studies were funded by National Medical Research Council Clinician Scientist – Individual Research Grant (CS-IRG) NMRC/CIRG/1372/2013 and NMRC EDG/0022/2008.

Materials

Life Science Acrodisc 25mm Syring Filter w/0.2 µm Supor  Membrane PALL  PN4612 Sterile protamine,
 heparin solution by ultrafiltration
24 well plate Cell Star  662160
96 well plate Nuclon Delta Surface Thermo Fisher Scientific 167008
(3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-Diphenyltetrazolium Bromide), MTT Sigma Aldrich M5655 Measure cytotoxicity of PEC-NELL-1
Acetone Fisher Scientific A/0600/17 Precipitate CF-405
Labelled protamine 
Alamar Blue Invitrogen, Life Technologies DAL 1025 Measure cytotoxicity of PEC-BMP-2
Alkaline Phosphatase Assay (ALP) assay kit Anaspec AS-72146
Ammonium Chloride Merck Art 1145 Stop reagent in FITC labelling
Anhydrous Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Invitrogen, Life Technologies D12345 Solvent for fluorescent isothiocyanate I
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Sigma Aldrich Dissolve  formazan 
Autoclave Hirayama HU-110 Sterilize alginate beads by steam
Beta-glycerophosphate Sigma Aldrich G9422
BMP-2 (Infuse Bone Graft Large II Kit)  Medtronic Sofarmor Danek, Memphis TN, USA 7510800 Osteogenic Growth  Factor,
 dialysis is needed to remove stabilizer component that interferes with FITC coupling
Carboxybenzoyl quinoline-2-Carboxaldehyde (CBQCA)  Thermo Fisher Scientific A-6222 To quantify NELL-1 protein
Cell Strainer (100µm) BD Science 352360 Hold PEC for ALP assay
Cell Scraper 290mm Bladewide 20mm SPL Life Science  90030 Detach the cell from 24 well plate 
CF 405S, Succinimidyl Ester Sigma Aldrich SCJ4600013 Blue fluorescent dye for protamine labelling
CF 594, Hydrazide Sigma Aldrich SCJ4600031 Deep red fluorescent dye for heparin labelling 
Centrifuge Beckman Coulter Microfuge 22R
Confocal Microscope Olympus  FV1000
Dexamethasone Sigma Aldrich D4902 Component of osteogenic growth medium
Dextran Desalting Columns Pierce (Thermo Scientific)  43230
DMEM Gibco  12320
BMP-2 Quantikine ELISA Kit R&D System DBP200 Determine BMP-2 release
Fetal Bovine Serum FBS Hyclone SV30160.03
Fluoescein Isothiocyananate, Isomer I Sigma Aldrich F7250 Green fluorescent dye for NELL-1 and BMP-2 labelling
ThinCert Cell Culture Inserts,
For 24 Well plates, Sterile
Greiner  662630 Prevents PEC wash out when
 changing osteogenic medium
Havard Appartus Syringe Pump (11 plus) Havard Apparatus 70-2208
n-Hexane (>99%) Sigma Aldrich 139386
Heparin Sigma Aldrich H3149 Binds with osteogenic
growth factor with heparin binding domain
Hydrochloric acid (37%) Merck 100317 Highly Corrosive
Incubator Binder C8150
MicroBCA Protein Assay kit Thermoscientific 23235
Microplate Reader Tecan Infinite M200 For ALP and microBCA assays
NELL-1 Aragen Bioscience Morgan Hill, CA, USA N/A Osteogenic growth factor, keep at -80˚C
Nisco cell encapsulator Nisco Engineering Inc Encapsulation unit VAR V1
Fluorescent Microscope Olympus IX71
mPCL-TCP Scaffold (Pore size is 1.3mm) Osteopore PCL-TCP 0/90 Hold PEC for in vivo study
Penicillin-Streptomycin 10,000 unit/ml, 100ml Hyclone Cell Culture SV30010 Antibiotic
10X Phosphate Buffered Saline (PBS)  Vivantis PB0344-1L 10x Solution, Ultra Pure Grade
Poly-L-Lysine MW 15,000-30,000 Sigma Aldrich P2568 Polycation
Protamine Sulfate salt, from Salmon Sigma Aldrich P4020 Polycation
Shaker Labnet S2025
Snakeskin Dialysis Tubing 3,500 MWCO 22mm x 35 feet Thermo Fisher Scientific 68035 Remove unreacted FITC by dialysis
Sodium Chloride Merck 1.06404.1000
Sodium Hydroxide Qrec S5158
Sodium Bicarbonate US Biological S4000 Buffer
Sodium carbonate Sigma Aldrich S7795-500G Buffer
Strontium Chloride Hexahydrate Sigma Aldrich 255521 Crosslinker for alginate
Spatula 3dia
5ml syringe Terumo 140425R Diameter of syringe
affects the flow rate 
75cm2 Cell Culture Flask Canted Neck Corning 730720
Toluidine Blue  Sigma Aldrich 52040 Heparin assay
Trypsin 1X Hyclone Cell Culture SH30042.01
Sodium alginate Novamatrix (FMC Biopolymer, Princeton, NJ) Pronova UPMVG Core material of microbeads

References

  1. Yuan, W., et al. NELL-1 based demineralized bone graft promotes rat spine fusion as compared to commercially available BMP-2 product. Orthop Sci. 18, 646-657 (2013).
  2. Anderson, C. L., Whitaker, M. C. Heterotopic ossification associated with recombinant human bone morphogenetic protein-2 (infuse) in posterolateral lumbar spine fusion: a case report. Spine. 37, 502-506 (2012).
  3. Glassman, S. D., et al. RhBMP-2 versus iliac crest bone graft for lumbar spine fusion: a randomized, controlled trial in patients over sixty years of age. Spine. 33, 2843-2849 (2008).
  4. Tannoury, C. A., An, H. S. Complications with the use of bone morphogenetic protein 2 (BMP-2) in spine surgery. Spine J. 14, 552-559 (2014).
  5. Carragee, E. J., Hurwitz, E. L., Weiner, B. K. A critical review of recombinant human bone morphogenetic protein-2 trials in spinal surgery: emerging safety concerns and lessons learned. Spine J. 11, 471-491 (2011).
  6. Abbah, S. A., Lam, C. X., Hutmacher, D. W., Goh, J. C., Wong, H. K. Biological performance of a polycaprolactone-based scaffold used as fusion cage device in a large animal model of spinal reconstructive surgery. Biomaterials. 30, 5086-5093 (2009).
  7. Abbah, S. A., Liu, J., Lam, R. W., Goh, J. C., Wong, H. K. In vivo bioactivity of rhBMP-2 delivered with novel polyelectrolyte complexation shells assembled on an alginate microbead core template. J. Control. Release. 162, 364-372 (2012).
  8. Wang, M., et al. Polyelectrolyte Complex Carrier Enhances Therapeutic Efficiency and Safety Profile of Bone Morphogenetic Protein-2 in Porcine Lumbar Interbody Fusion Model. Spine. 40, 964-973 (2015).
  9. Abbah, S. A., Lam, W. M., Hu, T., Goh, J., Wong, H. K. Sequestration of rhBMP-2 into self-assembled polyelectrolyte complexes promotes anatomic localization of new bone in a porcine model of spinal reconstructive surgery. Tissue Eng. Part A. 20, 1679-1688 (2014).
  10. Hu, T., et al. Novel Protamine-Based Polyelectrolyte Carrier Enhances Low-Dose rhBMP-2 in Posterolateral Spinal Fusion. Spine. 40, 613-621 (2015).
  11. Hu, J., Hou, Y., Park, H., Lee, M. Beta-tricalcium phosphate particles as a controlled release carrier of osteogenic proteins for bone tissue engineering. J Biomed Mater Res A. 100, 1680-1686 (2012).
  12. Darrabie, M. D., Kendall, W. F., Opara, E. C. Characteristics of Poly-L-Ornithine-coated alginate microcapsules. Biomaterials. 26, 6846-6852 (2005).
  13. Li, X., Min, S., Zhao, X., Lu, Z., Jin, A. Optimization of entrapping conditions to improve the release of BMP-2 from PELA carriers by response surface methodology. Biomed Mater. 10, 015002 (2015).
check_url/fr/54202?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Wing Moon Lam, R., Abbah, S. A., Ming, W., Naidu, M., Ng, F., Tao, H., Goh Cho Hong, J., Ting, K., Hee Kit, W. Polyelectrolyte Complex for Heparin Binding Domain Osteogenic Growth Factor Delivery. J. Vis. Exp. (114), e54202, doi:10.3791/54202 (2016).

View Video