Summary

Observation och kvantifiering av Telomer och repetitiva sekvenser användning av fluorescens<em> In Situ</em> Hybridisering (FISH) med PNA prober<em> Caenorhabditis elegans</em

Published: August 04, 2016
doi:

Summary

We report a concise procedure of fluorescence in situ hybridization (FISH) in the gonad and embryos of Caenorhabditis elegans for observing and quantifying repetitive sequences. We successfully observed and quantified two different repetitive sequences, telomere repeats and template of alternative lengthening of telomeres (TALT).

Abstract

Telomere is a ribonucleoprotein structure that protects chromosomal ends from aberrant fusion and degradation. Telomere length is maintained by telomerase or an alternative pathway, known as alternative lengthening of telomeres (ALT)1. Recently, C. elegans has emerged as a multicellular model organism for the study of telomere and ALT2. Visualization of repetitive sequences in the genome is critical in understanding the biology of telomeres. While telomere length can be measured by telomere restriction fragment assay or quantitative PCR, these methods only provide the averaged telomere length. On the contrary, fluorescence in situ hybridization (FISH) can provide the information of the individual telomeres in cells. Here, we provide protocols and representative results of the method to determine telomere length of C. elegans by fluorescent in situ hybridization. This method provides a simple, but powerful, in situ procedure that does not cause noticeable damage to morphology. By using fluorescently labeled peptide nucleic acid (PNA) and digoxigenin-dUTP-labeled probe, we were able to visualize two different repetitive sequences: telomere repeats and template of ALT (TALT) in C. elegans embryos and gonads.

Introduction

Telomer skyddar kromosomändarna från avvikande fusion och nedbrytning. Däggdjur telomer består av G-rika hexamera upprepningar, TTAGGG och shelterin komplex. Telomeren upprepningssekvens av nematoden är liknande dem i däggdjur (TTAGGC). De flesta eukaryoter använder telomeras för att lägga till telomeren upprepar sina kromosomändarna. Men 10-15% av cancerceller utnyttjar telomeras oberoende mekanism, känd som alternativ Förlängning av Telomerer (ALT) 3. Tidigare rapporterade vi att telomeren upprepar och dess tillhörande sekvenser, namnges som tält, amplifierades i telomererna av telomeras muterade linjer som överlevde kritisk sterilitet 2.

Telomerlängd mättes genom kvantitativ PCR eller Southern blöt, vilket ger genomsnittliga längden av den totala telomerer 4,5,6,7. Läs räkning av telomer upprepa i hela genomet sekvenseringsdata är också en indikator på den totala telomeren innehåll 8. Även om SinGLE telomerlängd Analysis (STELA) skulle kunna ge längden på en enda telomer, kan det inte ge rumslig information om telomerer 9. Medan POT-1 :: mCherry reporterprotein ger den rumsliga information av telomerer in vivo, kan den inte representera längder av dubbelsträngade telomerer, som POT-1 är ett enkelsträngat telomer-bindande protein 10.

Medan ovannämnda metoder ger i genomsnitt information repetitiva sekvenser, fluorescens in situ hybridisering (FISH) gör det möjligt att observera mängden och rumsliga mönster av enskilda sekvenser av intresse på en kromosom skala. Istället för rening av DNA, är vävnader eller celler fast att bevara den naturliga geografisk information i fisk. Således är FISH en både kvantitativ och kvalitativ verktyg för observation av enskilda upprepade sekvenser, såsom telomeren upprepas.

Detta protokoll ger en effektiv metod för samtidig detektion av både telobara och andra upprepningar baserad på förbättringar från tidigare beskrivna metoder 11,12. C. elegans larver eller vuxna är flercellig organism med högt differentierade celler. Heterogenitet celler hindrar på kvantitativ analys av ett stort antal telomeren fläckar. För att maximera antalet celler som analyserats, embryon isoleras och sprids på polylysin-belagda objektglas för fisk. Dessutom kan detta protokoll också kombineras med immunofluorescens.

Som ett bevis på att protokollet fungerar, visar vi att det är möjligt att observera och kvantifiera två olika repetitiva sekvenser. DNA-sond mot TALT1 genererades med enkel PCR införliva digoxigenin-dUTP. Då denna TALT1 sond och fluorescensmärkt telomer PNA prob hybridiserades samtidigt. Därefter digoxigenin detekteras genom kanoniska immunofluorescens metoder. Vi presenterar här de representativa bilder där TALT1 samlokaliserades med telomeren i TRT-1 </em> överlevande.

Protocol

1. Märkning Prober med digoxigenin-dUTP genom PCR Utför PCR märkning med 10x dNTP-blandning innehållande digoxigenin-dUTP som tidigare beskrivits 13. Rena PCR-produkten med spinnkolonnrening enligt tillverkarens anvisningar. Om sonden är kortare än 200 bp, avlägsna fritt digoxigenin-dUTP med spin-kolonnkromatografi från reaktionsblandningen snarare än spin-reningskolonn. 2. förbereda Polylysin Belagda Slides Notera: Hel…

Representative Results

Det har tidigare rapporterats att ALT överlevande kan ta sig ur telomeras-mutant, TRT-1 (ok410), i låg frekvens genom att replikera internt lokaliserad "mall av ALT" (tält) sekvenser för telomer underhåll 2. Med hjälp av PNA-sond, kunde vi visualisera telomerer i dissekerade könskörtlarna (figur 2A). Den svaga telomeren signal detekterades både i TRT-1 (ok410) och ALT överlevande. Den statistiska signalen lappade endast me…

Discussion

Den största fördelen med våra protokoll är enkelheten i förfarandet utan märkbar skada på morfologin hos cellstrukturen. Flera steg optimerades för C. elegans FISH i detta protokoll. De kritiska steg för framgångsrik FISH inkluderar märkning av prober, fixering av embryon och penetration. Digoxigenin-dUTP märkningsmetod ger en enkel att använda märkningsmetod genom PCR eller nick-translation. Att märka lång målsekvens är nick-translation föredra. I detta fall bör sondema spjälkas med lämpl…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Mutant worm strains were kindly provided by the Caenorhabditis Genetics Center. This research was supported by a grant of the Korea Health Technology R&D Project through the Korea Health Industry Development Institute (KHIDI), funded by the Ministry of Health & Welfare, Republic of Korea (grant number: HI14C1277).

Materials

PNA probe PANAGENE custom order
Anti-Digoxigenin-Fluorescein, Fab fragments Roche 11207741910 use 1:200 diluted in PBST
Digoxigenin-dUTP Roche 11573152910
Bovine serum albumin SIGMA-ALDRICH A-7906
Paraformaldehyde SIGMA-ALDRICH P-6148 prepare 4% paraformaldehyde by heating in DW with few drops of NaOH. add 0.1 volume of 10x PBS.
Vectashield Vector Laboratories H-1200
Hybridizaiton solution 3X SSC, 50% formamide, 10% (w/v) dextran sulfate, 50 ug/ml heparin, 100 ug/ml yeast tRNA , 100ug/ml sonicated salmon sperm DNA
Hybridizaiton wash solution 2X SSC, 50% formamide
Formamide BIONEER C-9012 toxic
Methanol Carlo Erba
Acetone Carlo Erba
Heparin SIGMA-ALDRICH H3393 make 10 mg/ml for stock solution
Dextran sulfate SIGMA-ALDRICH 67578
10X PBS For 1 Liter DW : 80 g NaCl, 2.0 g KCl, 27 g Na2HPO4:7H2O, 2.4 g KH2PO
PBST 1X PBS, 0.1% tween-20
Polysorbate 20 SIGMA-ALDRICH P-2287 Commercial name is Tween-20
Poly-L-Lysine solution (0.1 % w/v) SIGMA-ALDRICH P-8920 prepare fresh 0.01 % w/v solution before use
M9 3 g KH2PO4, 6 g Na2HPO4, 5 g NaCl, 1 ml 1 M MgSO4, H2O to 1 L
Bleaching solution 20% sodium hypochlorite, 0.5 M KOH
Antibody buffer 1X PBST, 1mM EDTA, 0.1% BSA, 0.05% Sodium azide (toxic)
Blocking solution Antibody buffer with 5% bovine serum albumin (BSA)
illustra Microspin G-50 GE healthcare 27-53310-01
20X SSC To make 1L, 175.3 g of NaCl, 88.2 g of sodium citrate, H2O to 1 L, adjust pH to 7.0
2X SSCT 2X SSC, 0.1 % tween-20
10x digoxigenin-dUTP mix 1 mM dATP, 1 mM dGTP, 1 mM dCTP, 0.65mM dTTP, 0.35mM DIG-11-dUTP
PCR purification columns Cosmo genetech CMR0112
Glass cleaner / ULTRA CLEAN Dukssan pure chemicals 8AV721
Multi-well glass slide MP biomedicals 96041205
Nematode growth media to make 1 L, 3 g of NaCl, 17 g of agar, 2.5 g of peptone, H2O to 974 mL. Autoclave and cool the flask. Add 1 mL of 1M CaCl2, 1 ml of 4 mg/mL cholesterol in ethanol, 1 ml of 1 M MgSO4, 25 mL of 1 M KPO4.
Levamisole SIGMA-ALDRICH 196142
Razor Feather blade No. 11
Rnase A Enzynomics
BSA SIGMA-ALDRICH A7906
Equipments
Confocal microsope Zeiss LSM 510 EC Plan-Neofluar 100x was used as objective lens.
Dry block / aluminum block Labtech LBH-T03 Set temperature to 80℃
Humid chamber Plastic box filled with paper towel soaked in DW
Image Analysis Software  Dr. Peter Landsdorp TFL-telo http://www.flintbox.com/public/project/502

References

  1. Reddel, R. R., Bryan, T. M., Murnane, J. P. Immortalized cells with no detectable telomerase activity. A review. Biochemistry-Moscow. 62, 1254-1262 (1997).
  2. Seo, B., et al. Telomere maintenance through recruitment of internal genomic regions. Nat Commun. 6, 8189 (2015).
  3. Cesare, A. J., Reddel, R. R. Alternative lengthening of telomeres: models, mechanisms and implications. Nat Rev Genet. 11, 319-330 (2010).
  4. Meier, B., et al. trt-1 is the Caenorhabditis elegans catalytic subunit of telomerase. Plos Genetics. 2, 187-197 (2006).
  5. Cawthon, R. M. Telomere measurement by quantitative PCR. Nucleic Acids Res. 30, 47 (2002).
  6. Raices, M., Maruyama, H., Dillin, A., Karlseder, J. Uncoupling of longevity and telomere length in C. elegans. PLoS Genet. 1, 30 (2005).
  7. Southern, E. M. Detection of Specific Sequences among DNA Fragments Separated by Gel-Electrophoresis. Journal of Molecular Biology. 98, 503 (1975).
  8. Lee, M., et al. Telomere extension by telomerase and ALT generates variant repeats by mechanistically distinct processes. Nucleic Acids Res. 42, 1733-1746 (2014).
  9. Cheung, I., et al. Strain-specific telomere length revealed by single telomere length analysis in Caenorhabditis elegans. Nucleic Acids Res. 32, 3383-3391 (2004).
  10. Shtessel, L., et al. Caenorhabditis elegans POT-1 and POT-2 repress telomere maintenance pathways. G3. 3, 305-313 (2013).
  11. Duerr, J. Immunohistochemistry. WormBook (The C. elegans Research Community). , (2006).
  12. Phillips, C. M., McDonald, K. L., Dernburg, A. F. Cytological analysis of meiosis in Caenorhabditis elegans. Meiosis: Volume 2, Cytological Methods. , 171-195 (2009).
  13. Emanuel, J. R. Simple and efficient system for synthesis of non-radioactive nucleic acid hybridization probes using PCR. Nucleic acids research. 19, 2790 (1991).
  14. Stiernagle, T. Maintenance of C. elegans. WormBook. , 1-11 (2006).
  15. Porta-de-la-Riva, M., Fontrodona, L., Villanueva, A., Ceron, J. Basic Caenorhabditis elegans methods: synchronization and observation. J Vis Exp. , e4019 (2012).
  16. Poon, S. S. S., Martens, U. M., Ward, R. K., Lansdorp, P. M. Telomere length measurements using digital fluorescence microscopy. Cytometry. 36, 267-278 (1999).
  17. Ferreira, H. C., Towbin, B. D., Jegou, T., Gasser, S. M. The shelterin protein POT-1 anchors Caenorhabditis elegans telomeres through SUN-1 at the nuclear periphery. J Cell Biol. 203, 727-735 (2013).
  18. Lee, M. H., Schedl, T. RNA in situ hybridization of dissected gonads. WormBook. , 1-7 (2006).
  19. Tabara, H., Motohashi, T., Kohara, Y. A multi-well version of in situ hybridization on whole mount embryos of Caenorhabditis elegans. Nucleic Acids Res. 24, 2119-2124 (1996).
  20. Poon, S. S., Lansdorp, P. M. Quantitative fluorescence in situ hybridization (Q-FISH). Curr Protoc Cell Biol. 18, 14 (2001).
check_url/fr/54224?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Seo, B., Lee, J. Observation and Quantification of Telomere and Repetitive Sequences Using Fluorescence In Situ Hybridization (FISH) with PNA Probes in Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (114), e54224, doi:10.3791/54224 (2016).

View Video