Summary

Высокая-контент<em> In Vitro</em> Панкреатическими островками β-клеток репликации Discovery Platform

Published: July 16, 2016
doi:

Summary

Критические проблемы для области исследования диабета должны понять молекулярные механизмы, которые регулируют репликацию β-клеток островков и разработать методы стимуляции регенерации β-клеток. При этом метод высокого содержания скрининга для выявления и оценки репликации способствующего активности β-клеток малых молекул представлена.

Abstract

Loss of insulin-producing β-cells is a central feature of diabetes. While a variety of potential replacement therapies are being explored, expansion of endogenous insulin-producing pancreatic islet β-cells remains an attractive strategy. β-cells have limited spontaneous regenerative activity; consequently, a crucial research effort is to develop a precise understanding of the molecular pathways that restrain β-cell growth and to identify drugs capable of overcoming these restraints. Herein an automated high-content image-based primary-cell screening method to identify β-cell replication-promoting small molecules is presented. Several, limitations of prior methodologies are surmounted. First, use of primary islet cells rather than an immortalized cell-line maximizes retention of in vivo growth restraints. Second, use of mixed-composition islet-cell cultures rather than a β-cell-line allows identification of both lineage-restricted and general growth stimulators. Third, the technique makes practical the use of primary islets, a limiting resource, through use of a 384-well format. Fourth, detrimental experimental variability associated with erratic islet culture quality is overcome through optimization of isolation, dispersion, plating and culture parameters. Fifth, the difficulties of accurately and consistently measuring the low basal replication rate of islet endocrine-cells are surmounted with optimized immunostaining parameters, automated data acquisition and data analysis; automation simultaneously enhances throughput and limits experimenter bias. Notable limitations of this assay are the use of dispersed islet cultures which disrupts islet architecture, the use of rodent rather than human islets and the inherent limitations of throughput and cost associated with the use of primary cells. Importantly, the strategy is easily adapted for human islet replication studies. This assay is well suited for investigating the mitogenic effect of substances on β-cells and the molecular mechanisms that regulate β-cell growth.

Introduction

Диабет включает в себя совокупность расстройств, разделяющих общую конечную точку нарушенного гомеостаза глюкозы. Хотя патогенетические механизмы диабета подтипов различны, они имеют следствием пониженной β-клеточной массы, то есть, потери производства инсулина мощностью 1,2. В настоящее время стратегии лечения диабета полагаются на хроническое введение экзогенного инсулина, фармакологической стимуляции выработки инсулина или повышения чувствительности к инсулину, и редко, трансплантация островков поджелудочной железы или всей поджелудочной железы 3,4. К сожалению, успех этих стратегий является кратковременным и / или не в достаточной степени перепросматривать функцию эндогенного инсулина. Несмотря на полезность разработки метода для стимуляции регенерации β-клеток, ни один такой подход не существует. Следовательно, главная цель исследования диабета заключается в разработке методов для создания новых бета-клеток или расширить эндогенного β-клеточной массы 5 </sup>. Хотя регенерации β-клеток из возобновляемых источников , таких как эмбриональные стволовые клетки развивается, безопасность и эффективность проблемы делают преследование альтернативных стратегий, в том числе расширение зрелых бета-клеток, приоритет 6,7. Важно отметить, что основным источником новых бета-клеток в естественных условиях предварительно существующие бета-клеток , а не специализированные клетки – предшественники 8,9. Хотя бета-клетки, кажется, имеют ограниченные возможности репликации, небольшое увеличение массы β-клеток (~ 30%) может быть достаточно, чтобы восстановить гомеостаз глюкозы во многих диабетиков. Кроме того, на месте фармакологической стимуляции массы β-клеток в потенциально недорогой и масштабируемая стратегия лечения. При этом метод скрининга высокого содержания для идентификации и характеристике небольших молекул, которые стимулируют рост β-клеток представлена.

Разнообразие экспериментальных методов в пробирке , могут быть использованы для идентификации генных продуктов и / или молекулы ТНАт способствуют репликации первичного β-клеток. Ранние попытки для измерения индукции репликации β-клеток использовали плода культуры грызун поджелудочных желез или неповрежденные культуры изолированных островковых для измерения [3 H] тимидина, BrdU включение или митотических тела в пределах альдегид-тионина или инсулина , окрашенном населения в ответ на конкретные условия обработки 10, 11. Эти подходы в пробирке и близкие его варианты имеют ряд ограничений. Известные недостатки включают в себя (1) использование эмбриональных клеток , которые, в отличие от зрелых бета-клеток, демонстрируют высокую скорость репликации базальной β-клетки и рост регулируется в различимыми 12; (2) субъективный характер экспериментатора-зависимого судебного решения событий репликации β-клеток; (3) труд и время интенсивного характера экспериментатора-зависимого подсчета событий репликации β-клеток замедл экспериментальную пропускную способность; (4) использование ядерного инкорпорации / пятно / внешний вид, чтобы идентифицировать репликацию дажеTS и не перекрываются цитоплазматический краситель для выявления бета-клеток приводит к приписывание уточненного событий репликации не-β-клеток в бета-клетки.

Совсем недавно зрелые первичные бета-клетки были использованы для оценки влияния трансгенов избыточная экспрессия, а также продукт гена или соединение лечения на репликацию β-клеток 13-16. Тем не менее, эти исследования также полагались на субъективном подсчета событий репликации, цитоплазматический staining- или неспецифических методов идентификации β-клеток и / или трудоемких шагов , которые ограничивают пропускную способность , например, индивидуальный слайд-луночного покрытия клеток или неповрежденной островок парафин и обработка 17. Следует отметить, что человеческий β-клеток методологии скрининга репликации на основе изображений, похожий на тот , представленный здесь, был опубликован 18; Тем не менее, успешное использование этого анализа не было продемонстрировано и использование человеческих островки для первичного скрининга не может быть широко FEAскорее.

Альтернативной стратегией для выявления репликации промотирующее веществ для оценки индукции роста β-клеточных линий. Первоначальные усилия использовали трансформированных бета-клеточные линии , такие как min6 клетки или INS 832/13-клетки 14,19-21. Тем не менее, эти клеточные линии демонстрируют-безудержный рост и имеют мало общего с хорошо дифференцированных -клеток 22. Следовательно, рост индукции мощность минимальна, неясного отношение и иногда трудно пересказать. Улучшенная стратегия для скрининга на основе клеточной линии утилизирует "обратимо трансформировали" клетки, рост арестованы в отсутствие тетрациклина (доксициклин) экспрессия 23,24 антигена -зависимая SV40 T. Тем не менее, неясно, будет ли вернуть эти клетки к "нормальной" β-клеток, как состояние после удаления доксициклина. К сожалению, использование этих клеток дало обобщенные стимулирующие рост соединений, которые, кажется, не имеют немедленного утилиты24. В целом, использование клеточных линий для изучения регуляции роста клеток типа , где отображаются минимальное спонтанную активность репликации может иметь ограниченную применимость.

Репликации скрининга платформы β-клеток , представленные здесь используют зрелые первичные крысы бета-клетки , чтобы сохранить в регуляции роста естественных условиях в максимально возможной степени, островок-клеточные культуры состава смешанного клеточного типа , который позволяет идентифицировать деятельности , способствующих росту LINEAGE-ограниченным, мульти -ну форматирование, чтобы максимизировать пропускную способность и автоматизированный анализ для устранения смещения и облегчить пропускную способность. Успешное использование этой платформы позволило выявить несколько соединений , которые способствуют репликации β-клеток 25,26. Кроме того, исследование было использовано для изучения зависимости структура-активность и химических экспериментов эпистазу обеспечить механистических понимание молекулярной регуляции репликации β-клеток. Представленная платформа была успешно адаптирована FOг лентивирусов RNAi на основе исследование репликации β-клеток дорожками 25. Ограничения анализа включают ограниченный масштабируемость (использование первичных клеток), использование грызуна, а не человеческих островковых клеток (хотя анализ может быть адаптирован для исследования островковых человека), расходы, связанные с изображениями на основе антител и использование первичного островкового, использование дисперсных островках (нарушена островок архитектуры), чтобы облегчить автоматизированное получение изображений и зависимость от наличия автоматизированного микроскопа с приобретением изображения и возможности анализа. Несмотря на то, снисходительный в естественных условиях методики скрининга для выявления генных продуктов или соединений , которые стимулируют регенерацию β-клеток на месте было бы идеально, такая платформа еще не доступна 27. Следовательно, описанная платформа подходит для исследователя, заинтересованного в исследовании большинство аспектов репликации β-клеток.

Protocol

Этот протокол был проведен в соответствии с Animal Care и использование комитета Institutional (IACUC) из школы Стэнфордского университета медицины. Описанный протокол масштабируется для выделения островковых клеток из шести 250 – 300 г (8 – 9 недель) самцов крыс Sprague Dawley, которых достаточно для создания 228 лунки 384-лу…

Representative Results

Для оценки бета-клетки или репликацию α-клеток, необходим протокол анализа четыре цвета. Во-первых, объекты идентифицируются с помощью DAPI окрашивания (Channel 1, 386 нм). Далее, бета-клетки (событие 1) подсчитываются: объекты , которые со-экспресс PDX-1 + (канал 2, 650 нм) и пери-…

Discussion

Экспериментальные методы исследования молекулярных путей, которые контролируют рост β-клеток и регенерации являются важными инструментами для исследователей диабета. При этом, крыса-островок на основе скрининга платформа для идентификации и характеристики малых молекул стимулятор…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by NIDDK grants DK098143 and DK101530 from the NIH (JPA), Stanford’s Spectrum Child Health Research Institute (CHRI) and SPARK (UL1 TR001085, JPA).

Materials

250g male Male Sprague Dawly Rat Charles River Stain # 400
12 cm teeth tisuue forceps Fine Science Tools 11021-12
11.5 cm fine scissors Fine Science Tools 14058-11
14.5 cm surgical scissors Fine Science Tools 14001-14
16 cm curved forceps Fine Science Tools 11003-16
12 cm curved hepostat Fine Science Tools 13011-12
12 cm scalpel handle Fine Science Tools 10003-12
Tissue sieve-30 mesh Bellco Glass 1985-85000
Cizyme RI, 375,000 CDA units VitaCyte 005-1030
Hanks' Balanced Salt solution (Ca++ and Mg++) Gibco 24020-117
Ketamine HCl (200 mg/20 ml) JHP Pharmaceuticals NDC# 42023-113-10 to make anesthetic cocktail 
Xylazine (5 g/50 ml) LLOYD NADA# 139-236 to make anesthetic cocktail 
Histopaque 1077 Sigma H-1077 to make histopaque 1100
Histopaque 1119 Sigma H-1119 to make histopaque 1100
Newborn Calf Serum 500 ml Hyclone SH30118.03
Hanks' Balanced Salt solution Hyclone SH30268.01
Dulbecco's Modified Eagle Medium/Low Glucose  Hyclone SH30021.01
Functionality/Viability Solution  Mediatech 99-768-CV
RPMI1640 media  Hyclone SH30096.01 to make conditioned medium
804G rat bladder carcinoma cell-line Available upon request to make conditioned medium
Fetal Bovine Serum, Qualified Gibco 26160
GlutaMax-I Gibco 35050-061
Penicillin (5,000 IU/ml/Strptomycin (5 mg/ml)  MP Biomedicals 1670049
Formamide 500 mL Fisher BioReagents BP227-500
Antigen Unmasking Solution 250 mL (PH 6.0) Vector Laboratories H-3300 to make 0.15 M Sodium Sitrate solution
Dextrose, Anhydrous EMD Chemicals DX0145-1 to make 1 M glucose solution
Nomal Donkey Serum (Powder) Jackson ImmunoResearch 017-000-121
Triton X-100 Sigma T8787-100ML
Mouse anti-human Ki67 antibody BD Biosciences 556003
Goat anti-human PDX-1 antibody R&D Systems AF2419
Polyclonal Guinea Pig anti-insulin antibody Dako 2016-08
Polyclonal Rabbit anti-glucagon antibody Dako 2014-06
Polyclonal Rabbit anti-somatostatin antibody Dako 2011-08
Polyclonal chicken anti-vimentin antibody abcam ab24525
Biotin-SP-conjugated, Donkey Anti-Mouse IgG Jackson ImmunoResearch 715-065-150
StreptAvidin, Alex Flour 488 conjugated  Invitrogen S32354
Rhodamine-conjugated Donkey Anti-Goat IgG  Jackson ImmunoResearch 705-025-147
Rhodamine-conjugated Donkey Anti-Guinea Pig IgG  Jackson ImmunoResearch 706-025-148
Rhodamine-conjugated Donkey Anti-Rabbit IgG Jackson ImmunoResearch 711-025-152
Cy 5-conjugated Donkey Anti-Guinea Pig IgG  Jackson ImmunoResearch 706-175-148
Cy 5-conjugated Donkey Anti-Goat IgG Jackson ImmunoResearch 705-175-147
Cy 5-conjugated Donkey Anti-Rabbit IgG Jackson ImmunoResearch 711-175-152
Cy 5-conjugated Donkey Anti-Chicken IgG Jackson ImmunoResearch 703-175-155
DAPI Millipore S7113
Disposable Reagent Reservoir 25 mL Sorenson BioScience 39900
384 well, black/clear, tissue culture treated plate BD Falcon 353962
96 well, black/clear, tissue culture treated plate Costar 3603
Multi-channel pipettor Costar 4880
12-channel vaccume aspirator Drummond 3-000-096
Cell Scraper Falcon 353085
Isotemp Water Bath Model 2223  Fisher Scientific
High-content screening instrument: ArrayScan VTI Thermo Scientific

References

  1. Butler, A. E., et al. Beta-cell deficit and increased beta-cell apoptosis in humans with type 2 diabetes. Diabetes. 52 (1), 102-110 (2003).
  2. Kloppel, G., Lohr, M., Habich, K., Oberholzer, M., Heitz, P. U. Islet pathology and the pathogenesis of type 1 and type 2 diabetes mellitus revisited. Surv Synth Pathol Res. 4 (2), 110-125 (1985).
  3. Harlan, D. M., Kenyon, N. S., Korsgren, O., Roep, B. O. Current advances and travails in islet transplantation. Diabetes. 58 (10), 2175-2184 (2009).
  4. Nath, D. S., et al. Outcomes of pancreas transplants for patients with type 2 diabetes mellitus. Clin Transplant. 19 (6), 792-797 (2005).
  5. Nichols, R. J., New, C., Annes, J. P. Adult tissue sources for new beta cells. Transl Res. 163 (4), 418-431 (2014).
  6. Pagliuca, F. W., et al. Generation of functional human pancreatic beta cells in vitro. Cell. 159 (2), 428-439 (2014).
  7. Kushner, J. A., MacDonald, P. E., Atkinson, M. A. Stem cells to insulin secreting cells: two steps forward and now a time to pause. Cell Stem Cell. 15 (5), 535-536 (2014).
  8. Dor, Y., Brown, J., Martinez, O. I., Melton, D. A. Adult pancreatic beta-cells are formed by self-duplication rather than stem-cell differentiation. Nature. 429 (6987), 41-46 (2004).
  9. Meier, J. J., et al. Beta-cell replication is the primary mechanism subserving the postnatal expansion of beta-cell mass in humans. Diabetes. 57 (6), 1584-1594 (2008).
  10. Chick, W. L., Lauris, V., Flewelling, J. H., Andrews, K. A., Woodruff, J. M. Effects of glucose on beta cells in pancreatic monolayer cultures. Endocrinology. 92 (1), 212-218 (1973).
  11. Brelje, T. C., Sorenson, R. L. Role of prolactin versus growth hormone on islet B-cell proliferation in vitro: implications for pregnancy. Endocrinology. 128 (1), 45-57 (1991).
  12. Chen, H., et al. PDGF signalling controls age-dependent proliferation in pancreatic beta-cells. Nature. 478 (7369), 349-355 (2011).
  13. Liu, H., et al. Glycogen synthase kinase-3 and mammalian target of rapamycin pathways contribute to DNA synthesis, cell cycle progression, and proliferation in human islets. Diabetes. 58 (3), 663-672 (2009).
  14. Metukuri, M. R., et al. ChREBP mediates glucose-stimulated pancreatic beta-cell proliferation. Diabetes. 61 (8), 2004-2015 (2012).
  15. Wang, P., et al. A high-throughput chemical screen reveals that harmine-mediated inhibition of DYRK1A increases human pancreatic beta cell replication. Nat Med. 21 (4), 383-388 (2015).
  16. Schisler, J. C., et al. Stimulation of human and rat islet beta-cell proliferation with retention of function by the homeodomain transcription factor Nkx6.1. Mol Cell Biol. 28 (10), 3465-3476 (2008).
  17. Fueger, P. T., Hernandez, A. M., Chen, Y. C., Colvin, E. S. Assessing replication and beta cell function in adenovirally-transduced isolated rodent islets. J Vis Exp. (64), (2012).
  18. Walpita, D., et al. A human islet cell culture system for high-throughput screening. J Biomol Screen. 17 (4), 509-518 (2012).
  19. Miyazaki, J., et al. Establishment of a pancreatic beta cell line that retains glucose-inducible insulin secretion: special reference to expression of glucose transporter isoforms. Endocrinology. 127 (1), 126-132 (1990).
  20. Song, W. J., et al. Phosphorylation and inactivation of glycogen synthase kinase 3beta (GSK3beta) by dual-specificity tyrosine phosphorylation-regulated kinase 1A (Dyrk1A). J Biol Chem. 290 (4), 2321-2333 (2015).
  21. Hohmeier, H. E., et al. Isolation of INS-1-derived cell lines with robust ATP-sensitive K+ channel-dependent and -independent glucose-stimulated insulin secretion. Diabetes. 49 (3), 424-430 (2000).
  22. Cozar-Castellano, I., et al. Lessons from the first comprehensive molecular characterization of cell cycle control in rodent insulinoma cell lines. Diabetes. 57 (11), 3056-3068 (2008).
  23. Efrat, S., Fusco-DeMane, D., Lemberg, H., aL Emran, O., Wang, X. Conditional transformation of a pancreatic beta-cell line derived from transgenic mice expressing a tetracycline-regulated oncogene. Proc Natl Acad Sci U S A. 92 (8), 3576-3580 (1995).
  24. Wang, W., et al. Identification of small-molecule inducers of pancreatic beta-cell expansion. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (5), 1427-1432 (2009).
  25. Annes, J. P., et al. Adenosine kinase inhibition selectively promotes rodent and porcine islet beta-cell replication. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (10), 3915-3920 (2012).
  26. Zhao, Z., et al. Repurposing cAMP-modulating medications to promote beta-cell replication. Mol Endocrinol. 28 (10), 1682-1697 (2014).
  27. Chen, C. A., Carolan, P. J., Annes, J. P. In vivo screening for secreted proteins that modulate glucose handling identifies interleukin-6 family members as potent hypoglycemic agents. PLoS One. 7 (9), e44600 (2012).
  28. Izumi, K., Hirao, Y., Hopp, L., Oyasu, R. In vitro induction of ornithine decarboxylase in urinary bladder carcinoma cells. Cancer Res. 41 (2), 405-409 (1981).
  29. Serup, P., et al. The homeodomain protein IPF-1/STF-1 is expressed in a subset of islet cells and promotes rat insulin 1 gene expression dependent on an intact E1 helix-loop-helix factor binding site. Biochem J. 310, 997-1003 (1995).
  30. Szabat, M., Luciani, D. S., Piret, J. M., Johnson, J. D. Maturation of adult beta-cells revealed using a Pdx1/insulin dual-reporter lentivirus. Endocrinology. 150 (4), 1627-1635 (2009).
  31. Rieck, S., et al. Overexpression of hepatocyte nuclear factor-4alpha initiates cell cycle entry, but is not sufficient to promote beta-cell expansion in human islets. Mol Endocrinol. 26 (9), 1590-1602 (2012).
  32. Wang, P., et al. Diabetes mellitus–advances and challenges in human beta-cell proliferation. Nat Rev Endocrinol. 11 (4), 201-212 (2015).
check_url/fr/54298?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zhao, Z., Abdolazimi, Y., Armstrong, N. A., Annes, J. P. A High-content In Vitro Pancreatic Islet β-cell Replication Discovery Platform. J. Vis. Exp. (113), e54298, doi:10.3791/54298 (2016).

View Video