Les protéines de liaison à l’ARN (RBP) jouent un rôle important dans tous les aspects du métabolisme et de la régulation de l’ARN. Leur identification est un défi majeur de la biologie moderne. Seules quelques méthodes
in vitro et
in vivo permettent d’identifier des RBP associées à un ARNm cible particulier. Cependant, leurs principales limites sont l’identification des RBP dans un environnement non cellulaire (
in vitro) ou l’isolement à faible efficacité de l’ARN d’intérêt (
in vivo). Une méthodologie de purification et d’identification des protéines de liaison à l’ARN (RaPID) a été conçue pour surmonter ces limitations chez la levure et permettre l’isolement efficace des protéines associées
in vivo. Pour ce faire, l’ARN d’intérêt est marqué avec des boucles MS2 et co-exprimé avec une protéine de fusion d’une protéine de liaison à MS2 et d’une protéine de liaison à la streptavidine (SBP). Les cellules sont ensuite soumises à la réticulation et lysées, et les complexes sont isolés par des billes de streptavidine. Les protéines qui co-purifient avec l’ARN marqué peuvent ensuite être déterminées par spectrométrie de masse. Nous avons récemment utilisé ce protocole pour identifier de nouvelles protéines associées à l’ARNm
PMP1 associé au RE. Ici, nous fournissons un protocole détaillé de RaPID et discutons de certaines de ses limites et avantages.