Summary

الشعرية الكهربائي لرصد الببتيد مسمار على الأفلام الشيتوزان في الوقت الحقيقي

Published: October 26, 2016
doi:

Summary

Free solution capillary electrophoresis is a fast, cheap and robust analytical method that enables the quantitative monitoring of chemical reactions in real time. Its utility for rapid, convenient and precise analysis is demonstrated here through analysis of covalent peptide grafting onto chitosan films for improved cell adhesion.

Abstract

خالية من حل الشعرية الكهربائي (CE) يفصل التحاليل والمركبات اتهم عموما في حل من خلال تطبيق مجال كهربائي. بالمقارنة مع تقنيات الفصل التحليلية الأخرى، مثل اللوني، CE رخيصة وقوية ويتطلب أي تحضير العينة (لعدد من المصفوفات الطبيعية المعقدة أو عينات البوليمر) على نحو فعال. CE سريع، ويمكن استخدامها لمتابعة تطور مخاليط في الوقت الحقيقي (على سبيل المثال، حركية التفاعل الكيميائي)، وإشارات لوحظت في المركبات فصل ويتناسب طرديا مع كمية في الحل.

هنا، وأثبت كفاءة CE لرصد تطعيم التساهمية من الببتيدات على الأفلام الشيتوزان للتطبيقات الطبية اللاحقة. الخصائص المضادة للميكروبات وحيويا الشيتوزان تجعل من مادة جذابة للتطبيقات الطبية الحيوية مثل ركائز نمو الخلايا. تطعيم تساهمي في RGDS الببتيد (أرجينين – الجلايسين -ويهدف سيرين) على سطح الأفلام الشيتوزان في تحسين مرفق الخلية – حمض الأسبارتيك. تاريخيا، تم استخدام اللوني وتحليل الحمض الأميني لتوفير قياس مباشر من مبلغ الببتيد المطعمة. ومع ذلك، فإن فصل سريع وغياب إعداد العينات المقدمة من قبل CE يمكن رصد في الوقت الحقيقي على قدم المساواة دقيقة بعد عملية ترقيع الببتيد. CE غير قادرة على فصل وتحديد مختلف مكونات خليط التفاعل: (عدم المطعمة) الببتيد وكلاء اقتران الكيميائية. في هذه الطريقة استخدام CE النتائج في تحسين الأفلام لتطبيقات المصب.

وتميزت الأفلام الشيتوزان من خلال الحالة الصلبة الرنين المغناطيسي النووي (الرنين المغناطيسي النووي) الطيفي. هذا الأسلوب هو أكثر استهلاكا للوقت، ولا يمكن أن تطبق في الوقت الحقيقي، ولكن غلة القياس المباشر من الببتيد، وبالتالي بالتحقق من صحة تقنية CE.

Introduction

حل الحرة الشعرية الكهربائي (م) هو الاسلوب الذي يفصل بين المركبات في الحلول المبنية على من نسبة 1،2 الشحنة للاحتكاك. وكثيرا ما ذكر نسبة الشحنة للحجم في الأدب، ولكن لا ينطبق هذا التبسيط إلى polyelectrolytes، بما في ذلك البروتينية في هذا العمل، وأظهرت أيضا أن لا يكون مناسبا لجزيئات عضوية صغيرة 3. CE يختلف عن تقنيات الفصل الأخرى من حيث أنه لايوجد مرحلة ثابتة، فقط بالكهرباء الخلفية (عادة عازلة). وهذا يسمح للتقنية ليكون قويا في قدرته على تحليل مجموعة كبيرة من العينات مع المصفوفات المعقدة 4 مثل الألياف النباتية التخمير يهيئ 6 مسمار على البوليمرات الاصطناعية عينات المواد الغذائية والببتيدات بالكاد القابلة للذوبان 9 دون تحضير عينة مملة و طهارة. وهذا أمر مهم خاصة بالنسبة للpolyelectrolytes المعقدة التي لديها قضايا الحل (قاوك والشيتوزان 10 و جيلان اللثة 11)، وبالتالي وجود مجمعة كما أو عجلت في حل وتم تحليلها بنجاح دون عينة الترشيح. وعلاوة على ذلك، فإن تحليل السكريات في حبوب الإفطار تشارك حقن عينات مع جزيئات من عينات حبوب الافطار عجلت في الماء 8. هذا يمتد أيضا إلى تحليل polyelectrolytes متفرعة أو بوليمرات 12،13. كما تم الانتهاء من أعمال مكثفة في مجال تطوير تقنيات CE خصيصا لتحليل البروتينات لالبروتينات 14، الفصل انطباقي من الببتيدات الطبيعية أو الاصطناعية 15 و فصل رقاقة من البروتينات والببتيدات 16. منذ الانفصال وتحليل تجري في شعري، وتستخدم كميات صغيرة فقط من العينة، والمذيبات التي تمكن CE لتكلفة تشغيلها أقل من تقنيات الفصل أخرى بما في ذلك 5،6،17 اللوني. منذ الانفصال من قبل CE سريع، لأنها تتيح رصد ومراقبةحلقة من حركية التفاعل. وقد تجلى ذلك في حالة تطعيم الببتيدات على الأفلام الشيتوزان لتحسين التصاق الخلية 18.

الشيتوزان هو السكاريد المستمدة من -deacetylation N من الكيتين. الأفلام الشيتوزان يمكن استخدامها لمختلف التطبيقات الطبية الحيوية مثل bioadhesives 19 وركائز نمو الخلايا 18،20، نظرا لتوافق مع الحياة الشيتوزان البالغ عددهم 21. مرفق الخلية البروتينات المصفوفة خارج الخلية المحددة، مثل فبرونيكتين، الكولاجين و laminin، يرتبط ارتباطا مباشرا لبقاء الخلايا 22. وتجدر الإشارة إلى أنواع مختلفة من الخلايا وغالبا ما تتطلب مرفق لمختلف البروتينات المصفوفة خارج الخلية من أجل البقاء وظيفة مناسبة. وقد تبين مرفق الخلية إلى الأفلام الشيتوزان ليتم تعزيزها من خلال تطعيم الفيبرونكتين 23؛ ومع ذلك، وإعداد وتنقية وتطعيم هذه البروتينات كبيرة غير قابلة للتطبيق اقتصاديا. بالتناوب مجموعة من الببتيدات الصغيرة هفثبت ه لتكون قادرة على محاكاة خصائص البروتينات كبيرة المصفوفة خارج الخلية. على سبيل المثال، الببتيدات مثل RGD محاكيات الفيبرونكتين استخدمت لتسهيل وزيادة مرفق الخلية 24 (أرجينين – الجلايسين – حمض الأسبارتيك) وRGDS (سيرين أرجينين – الجلايسين – – حمض الأسبارتيك). أدى التساهمية تطعيم RGDS على الأفلام الشيتوزان في تحسين مرفق الخلية لخلايا المعروف أن نعلق على فبرونيكتين في الجسم الحي 18. استبدال البروتينات أكبر يحب فبرونيكتين مع الببتيدات الصغيرة التي لديها نفس الوظيفة توفر انخفاض كبير في التكاليف.

هنا، تم تنفيذ الببتيد تطعيم لالشيتوزان كما نشرت سابقا (18). كما هو موضح سابقا، ويوفر هذا النهج التطعيم بسيطة وفعالة عن طريق استخدام وكلاء اقتران EDC، حمض الهيدروكلوريك (1 إيثيل-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide) وNHS (N -hydroxysuccinimide) إلى functionalize الأحماض الكربوكسيلية من RGDS أن يكون تطعم بهفيلم الشيتوزان. اثنين من مزايا هذه الطريقة التطعيم هي أنه لا يتطلب أي تعديل الشيتوزان أو من الببتيد، واضطلعت بها في وسط مائي لتحقيق التوافق مع تطبيقات زراعة الخلايا المستقبلية 18،20. كما يمكن شحن وكلاء اقتران والببتيد، م هي طريقة مناسبة لتحليل حركية التفاعل. الأهم من ذلك، تحليل حركية التفاعل عبر CE يمكن رصد في الوقت الحقيقي من رد فعل التطعيم، وبالتالي تمكن كل من تحسين وقياس درجة التطعيم.

في حين أنه ليس من الضروري بشكل روتيني، ونتائج التحليل CE يمكن التحقق من صحة خارج الخط من قبل القياس المباشر من الببتيد تطعيم على الأفلام الشيتوزان باستخدام الحالة الصلبة الرنين المغناطيسي النووي (الرنين المغناطيسي النووي) الطيفي 25،26 للتدليل على تطعيم التساهمية من الببتيد على فيلم 18. ومع ذلك، بالمقارنة مع الحالة الصلبة الرنين المغناطيسي الطيفي، في الوقت الحقيقي التحليل الذي قدمهCE تمكن من تقدير حجم استهلاك الببتيد في الوقت الحقيقي، وبالتالي القدرة على تقييم حركية التفاعل.

الطريقة المذكورة أعلاه بسيط ويسمح للتحليل في الوقت الحقيقي من الببتيد تطعيم على الأفلام الشيتوزان مع تقدير غير مباشر لمدى التطعيم. ويمكن تمديد الأسلوب هو موضح في التقييم الكمي في الوقت الحقيقي من التفاعلات الكيميائية المختلفة طالما المواد المتفاعلة أو المنتجات التي سيتم تحليلها يمكن توجيه الاتهام.

Protocol

1. إعداد الشيتوزان الأفلام تزن من 2 غرام من حامض الخليك الجليدي، الكامل إلى 100 مل مع الماء عالى النقاء. تزن من 1.7 غرام من مسحوق الشيتوزان، إضافة 100 مل من 2٪ م / م الخليك محلول مائي الحمضية. يحرك ال…

Representative Results

م هي مناسبة تماما لمراقبة التطعيم من الببتيدات (على سبيل المثال، RGDS) على الأفلام الشيتوزان. تشمل وكلاء اقتران مناسبة EDC، حمض الهيدروكلوريك وNHS التي تنشط الببتيد إلى أن تطعم به الشيتوزان (الشكل 1). CE قادر على فصل جزيئات مختلفة من الاهتمام …

Discussion

بساطة بروتوكول صفها هنا يجعل من مناسبة بشكل مثالي لتطبيق على نطاق واسع. ومع ذلك، يحتاج إلى عناية خاصة ليتم دفعها إلى من الخطوات الرئيسية التالية.

إعداد الأداة المناسبة CE

من المهم أن ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

MG, MO’C and PC thank the Molecular Medicine Research Group at WSU for Research Seed Funding, as well as Michele Mason (WSU), Richard Wuhrer (Advanced Materials Characterisation Facility, AMCF, WSU) and Hervé Cottet (Montpellier) for discussions.

Materials

Water Millipore All water used in the experiment has to be of Milli-Q quality
Chitosan powder (medium molecular weight) Sigma-Aldrich 448877 lot MKBH1108V was used. Significant batch-to-batch variations occur with natural products such as polysaccharides
Acetic acid – Unilab Ajax Finechem 2-2.5L GL laboratory reagent
Dimethylsulfoxide Sigma-Aldrich D4540 laboratory reagent, slightly hazardous to skin, hazardous if ingested
Sodium hydroxide  Sigma-Aldrich 221465  laboratory reagent, corrosive 
RGDS  Bachem H‐1155 peptide, bought from Auspep Pty Ltd
1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide  Sigma-Aldrich D80002 Irritant to skin 
N-hydroxysuccinimide  Sigma-Aldrich 130672 Irritant to skin
Sodium chloride  Ajax Finechem 466-500G laboratory reagent
Potassium chloride – Univar Ajax Finechem 384-500G analytical reagent, slight skin irritant
Disodium hydrogen phosphate – Unilab Ajax Finechem 1234-500G laboratory reagent, slight skin irritant
Potassium dihydrogen phosphate – Univar Ajax Finechem 4745-500G analytical reagent, slight skin irritant
Oligoacrylate standard custom made See reference for synthetic protocol: Castignolles, P.; Gaborieau, M.; Hilder, E. F.; Sprong, E.; Ferguson, C. J.; Gilbert, R. G. Macromol. Rapid Commun. 2006, 27, 42-46
Boric acid  BDH AnalR, Merck Pty Ltd 10058 Corrosive
Hydrochloric acid – Unilab Ajax Finechem A1367-2.5L laboratory reagent, corrosivie
Fused silica tubing Polymicro (Molex) TSP050375 Flexible fused silica capillary tubing with standard polyimide coating, 50 µm internal diameter, 363 µm outer diameter 
Agilent 7100 CE Agilent Technologies G7100CE Capillary electrophoresis instrument
Orbital shaker  IKA KS260
Electronic balance Mettler Toledo MS204S
Milli-Q Synthesis  Millipore ZMQS5VF01 Ultrapure water filtration system
Parafilm  Labtek PM966 Parrafin wax

References

  1. Muthukumar, M. Theory of electrophoretic mobility of a polyelectrolyte in semidilute solutions of neutral polymers. Electrophoresis. 17, 1167-1172 (1996).
  2. Barrat, J. L., Joanny, J. F. . in Advances in Chemical Physics, Vol Xciv Vol. 94 Advances in Chemical Physics. , 1-66 (1996).
  3. Fu, S. L., Lucy, C. A. Prediction of electrophoretic mobilities. 1. Monoamines. Anal. Chem. 70, 173-181 (1998).
  4. Harvey, D. . Modern Analytical Chemistry. , (2000).
  5. Oliver, J. D., Gaborieau, M., Hilder, E. F., Castignolles, P. Simple and robust determination of monosaccharides in plant fibers in complex mixtures by capillary electrophoresis and high performance liquid chromatography. J. Chromatogr. A. 1291, 179-186 (2013).
  6. Oliver, J. D., Sutton, A. T., Karu, N., Phillips, M., Markham, J., Peiris, P., Hilder, E. F., Castignolles, P. Simple and robust monitoring of ethanol fermentations by capillary electrophoresis. Biotechnology and Applied Biochemistry. 62, 329-342 (2015).
  7. Thevarajah, J. J., Sutton, A. T., Maniego, A. R., Whitty, E. G., Harrisson, S., Cottet, H., Castignolles, P., Gaborieau, M. Quantifying the Heterogeneity of Chemical Structures in Complex Charged Polymers through the Dispersity of Their Distributions of Electrophoretic Mobilities or of Compositions. Anal. Chem. 88, 1674-1681 (2016).
  8. Toutounji, M. R., Van Leeuwen, M. P., Oliver, J. D., Shrestha, A. K., Castignolles, P., Gaborieau, M. Quantification of sugars in breakfast cereals using capillary electrophoresis. Carbohydr. Res. 408, 134-141 (2015).
  9. Miramon, H., Cavelier, F., Martinez, J., Cottet, H. Highly Resolutive Separations of Hardly Soluble Synthetic Polypeptides by Capillary Electrophoresis. Anal. Chem. 82, 394-399 (2010).
  10. Mnatsakanyan, M., Thevarajah, J. J., Roi, R. S., Lauto, A., Gaborieau, M., Castignolles, P. Separation of chitosan by degree of acetylation using simple free solution capillary electrophoresis. Anal. Bioanal. Chem. 405, 6873-6877 (2013).
  11. Taylor, D. L., Ferris, C. J., Maniego, A. R., Castignolles, P., in het Panhuis, M., Gaborieau, M. Characterization of Gellan Gum by Capillary Electrophoresis. Australian Journal of Chemistry. 65, 1156-1164 (2012).
  12. Thevarajah, J. J., Gaborieau, M., Castignolles, P. Separation and characterization of synthetic polyelectrolytes and polysaccharides with capillary electrophoresis. Adv. Chem. 2014, 798503 (2014).
  13. Sutton, A. T., Read, E., Maniego, A. R., Thevarajah, J., Marty, J. -. D., Destarac, M., Gaborieau, M., Castignolles, P. Purity of double hydrophilic block copolymers revealed by capillary electrophoresis in the critical conditions. J. Chromatogr. A. 1372, 187-195 (2014).
  14. Righetti, P. G., Sebastiano, R., Citterio, A. Capillary electrophoresis and isoelectric focusing in peptide and protein analysis. Proteomics. 13, 325-340 (2013).
  15. Ali, I., Al-Othman, Z. A., Al-Warthan, A., Asnin, L., Chudinov, A. Advances in chiral separations of small peptides by capillary electrophoresis and chromatography. J. Sep. Sci. 37, 2447-2466 (2014).
  16. Kasicka, V. Recent developments in capillary and microchip electroseparations of peptides (2011-2013). Electrophoresis. 35, 69-95 (2014).
  17. Taylor, D. L., Thevarajah, J. J., Narayan, D. K., Murphy, P., Mangala, M. M., Lim, S., Wuhrer, R., Lefay, C., O’Connor, M. D., Gaborieau, M., Castignolles, P. Real-time monitoring of peptide grafting onto chitosan films using capillary electrophoresis. Anal. Bioanal. Chem. 407, 2543-2555 (2015).
  18. Rinaudo, M. Chitin and chitosan: Properties and applications. Prog. Polym. Sci. 31, 603-632 (2006).
  19. Li, Z., Leung, M., Hopper, R., Ellenbogen, R., Zhang, M. Feeder-free self-renewal of human embryonic stem cells in 3D porous natural polymer scaffolds. Biomaterials. 31, 404-412 (2010).
  20. Domard, A. A perspective on 30 years research on chitin and chitosan. Carbohydr. Polym. 84, 696-703 (2011).
  21. Shekaran, A., Garcia, A. J. Nanoscale engineering of extracellular matrix-mimetic bioadhesive surfaces and implants for tissue engineering. Biochim. Biophys. Acta Gen. Subj. 1810, 350-360 (2011).
  22. Custodio, C. A., Alves, C. M., Reis, R. L., Mano, J. F. Immobilization of fibronectin in chitosan substrates improves cell adhesion and proliferation. J. Tissue Eng. Regen. Med. 4, 316-323 (2010).
  23. Boateng, S. Y., Lateef, S. S., Mosley, W., Hartman, T. J., Hanley, L., Russell, B. RGD and YIGSR synthetic peptides facilitate cellular adhesion identical to that of laminin and fibronectin but alter the physiology of neonatal cardiac myocytes. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 288, C30-C38 (2005).
  24. Lefay, C., Guillaneuf, Y., Moreira, G., Thevarajah, J. J., Castignolles, P., Ziarelli, F., Bloch, E., Major, M., Charles, L., Gaborieau, M., Bertin, D., Gigmes, D. Heterogeneous modification of chitosan via nitroxide-mediated polymerization. Polym. Chem. 4, 322-328 (2013).
  25. Gartner, C., Lopez, B. L., Sierra, L., Graf, R., Spiess, H. W., Gaborieau, M. Interplay between Structure and Dynamics in Chitosan Films Investigated with Solid-State NMR, Dynamic Mechanical Analysis, and X-ray Diffraction. Biomacromolecules. 12, 1380-1386 (2011).
  26. Castignolles, P., Gaborieau, M., Hilder, E. F., Sprong, E., Ferguson, C. J., Gilbert, R. G. High resolution separation of oligo(acrylic acid) by capillary zone electrophoresis. Macromol. Rapid Commun. 27, 42-46 (2006).
  27. Chamieh, J., Martin, M., Cottet, H. Quantitative Analysis in Capillary Electrophoresis: Transformation of Raw Electropherograms into Continuous Distributions. Anal. Chem. 87, 1050-1057 (2015).
  28. Maniego, A. R., Ang, D., Guillaneuf, Y., Lefay, C., Gigmes, D., Aldrich-Wright, J. R., Gaborieau, M., Castignolles, P. Separation of poly(acrylic acid) salts according to topology using capillary electrophoresis in the critical conditions. Anal. Bioanal. Chem. 405, 9009-9020 (2013).
  29. Chung, T. W., Lu, Y. F., Wang, S. S., Lin, Y. S., Chu, S. H. Growth of human endothelial cells on photochemically grafted Gly-Arg-Gly-Asp (GRGD) chitosans. Biomaterials. 23, 4803-4809 (2002).
check_url/fr/54549?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Thevarajah, J. J., O’Connor, M. D., Castignolles, P., Gaborieau, M. Capillary Electrophoresis to Monitor Peptide Grafting onto Chitosan Films in Real Time. J. Vis. Exp. (116), e54549, doi:10.3791/54549 (2016).

View Video