방법은 패치 클램프 전기 생리학 또는 이미징 연구를위한 성인 마우스의 동방 노드 근육 세포 (SAM을)의 분리를 위해 증명된다. 분리 된 세포를 직접 사용할 수 또는 부호화 유전자 리포터로서 관심 단백질의 발현을 허용하는 배양에서 유지 될 수있다.
자발적인 활동 전위 (APS)를 생성하여 이길 각각의 마음을 개시 마음의 자연 페이스 메이커로 동방 노드 근육 세포 (SAM을) 행위. 이 페이스 메이커 AP는 다수의 막 전류와 세포 내 칼슘 자전거의 조정 활동을 반영합니다. 그러나 SAM을에서 자연 페이스 메이커 활동을 구동하는 정확한 메커니즘은 애매 남아있다. 급성 고립 된 SAM은 실험 심장 심장 박동의 분자 기초를 해부하기위한 필수적인 준비합니다. 그러나, 불명료 한 해부학, 복잡한 미세 절제, 그리고 몹시 신경을 쓰는 효소 소화 조건은 급성 고립 된 SAM의 광범위한 사용을 방지했다. 또한, 방법은 단백질 발현 연구에 SAM에의 장기 문화를 허용하는 최근까지 사용할 수 없었다. 여기에서 우리는 성인 쥐에서 SAM을의 분리를위한 단계별 프로토콜 및 비디오 데모를 제공합니다. 방법은 또한 시험 관내 및 expressi 위해 성체 마우스의 SAMs 유지를위한 입증되고아데노 바이러스 감염을 통해 외래 단백질에. 급성 격리 및이 방법에 의해 제조 배양 된 SAM은 전기 생리 및 이미징 연구의 다양한 적합하다.
페이스 메이커의 심장의 동방 노드에서 근육 세포 (동방 근육 세포는, "SAM을")는 각각의 심장 박동을 시작 심근 통해 전파 자연, 리듬 활동 전위 (APS)를 생성합니다. 많은 종에서 급격하게 격리 된 SAM을 사용하여 실험 맥박 조정기 활동의 발생에 기여하는 메커니즘을 해명 필수적이었다. SAM을는 형태, 기능 및 단백질 발현의 관점에서, 심방 및 심실의 심근의 해당 실질적으로 상이 고도로 전문화 심근이다. SAM을 자발적 액세스 포인트들의 특징은 다음 AP 1,2 트리거 임계 막 전위를 구동 이완기 자발적인 탈분극이다. 이러한 "심박 전위"많은 상이한 "재미 전류"(I의 F)을 포함하여 막 전류 T- 및 L 형 칼슘 전류와 나트륨 – 칼슘 교환기 CURR의 활성에 따라 조정근질 세망 3,4에서 칼슘 방출에 의해 구동되는 엔트 (I NCX).
급성 고립 된 마우스 SAM을가 심장 박동의 연구에 필수적인 실험 준비를하는 동안 마우스 SAN의 불명료 한 해부학과 작은 크기가 미묘한 미세 절제와 결합 된 효소 및 기계를 필요로하기 때문에, 마우스에서 SAM을의 분리 채택하기 어려운 방법이 될 수 있습니다 세포의 분리주의 최적화가 필요합니다.
우리는 여기에 성공적으로 패치 클램프 녹음 5-8을위한 성인 마우스에서 SAM을 격리하는 데 사용 된 프로토콜의 상세한 비디오 데모를 제공합니다. 우리의 지식에, 다른 소스에서 사용 가능한 시각적 데모가 없습니다. 또한, 새로운 방법이 설명된다되는 성인 마우스로부터함으로써 유전자의 단백질의 도입을 허용하는, 수 일간 시험관 내에서 유지 될 수있는 SAM을 격리아데노 바이러스 감염 (9)을 통해 기자 분자 또는 RNAi의.
이 논문은 성인 쥐에서 완전히 차별화 된 동방 노드 근육 세포의 분리 및 문화에 대한 상세한 프로토콜을 제공합니다. 분리 프로토콜은 안정적으로 즉시 전기 생리 분석 또는 후속 문화 중 하나에 적합한 자연 활성 마우스 SAM에 생성됩니다. 유사한 프로토콜 (예를 들어, 참조 11,12,10,13-17 참조) 많은 다른 그룹에 의해보고되었다. 그러나, 체외에서 성인 마우스 SAM을 유지를위한 우리?…
The authors have nothing to disclose.
We thank Dr. Christian Rickert for critical reading of the manuscript. This work was supported by a grant from the National Heart Lung and Blood Institute (R01-HL088427) to CP. EJS was supported by 5T32-AG000279 from the National Institute on Aging. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.
Sylgruard/Elastomer Kit | Dow Corning | 184 SIL ELAST KIT 0.5KG | |
Borosilicate 9" pasteur pipettes | Fisher Scientific | 13-678-20C | |
Small, round bottomed culture tubes | Fisher Scientific | 352059 | |
Large, round bottomed culture tubes | Corning | 14-959-11B | |
Elastase | Worthington Biochemical | LS002279 | |
Liberase TM | Roche | 5401119001 | Tissue dissociation solution |
Heparin | SAGENT Pharmaceuticals | NDC 25021-400-10 | |
Mouse Laminin | Corning | CB-354232 | |
12 mm round glass coverslips | Fisher | 12-545-80 | |
24-well culture plate | Fisher | 08-772-1 | |
Ad-mCherry | Vector Biolabs | 1767 | |
Ad-eGFP | Vector Biolabs | 1060 | |
Plastic, disposable transfer pipette | Fisher Scientific | ||
Micro scissors | Fisher Scientific | 17-467-496 | |
Dumont #4 Forceps | Roboz Instruments | RS-4904 | |
Tissue Forceps | Roboz Instruments | RS-8164 | |
Dissecting Iris Scissors | WPI, Inc. | 501264 | |
Dissecting Pins | Fine Science Tools | 26002-20 | |
NaCl | Sigma | 71376 | |
KCl | Sigma | 60128 | |
KH2PO4 | Sigma | 60353 | |
HEPES | Sigma | 54457 | |
glucose | Sigma | G0350500 | |
MgCl2 | Sigma | M8266 | |
CaCl2 | Sigma | C1016 | |
taurine | Sigma | T0625 | |
BSA | Sigma | A2153 | |
K-glutamate | Sigma | G1501 | |
K-aspartate | Sigma | A6558 | |
MgSO4 | Sigma | M7506 | |
creatine | Sigma | C0780 | |
EGTA | Sigma | E3889 | |
Mg-ATP | Sigma | A9187 | |
Amphotericin-B | Fisher Scientific | 1397-89-3 | |
Isoproterenol | Calbiochem | 420355 | |
Media199 | Sigma | M4530 | |
2,3-butanedione monoxime (BDM) | Sigma | B0753 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Sigma | SH30071 | |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma | A5611 | |
Insulin | Sigma | I3146 | |
Transferrin | Sigma | I3146 | |
Selenium | Sigma | I3146 | |
Penicillin | GE Healthcare | SV30010 | |
Streptomycin | Hyclone | SV30010 |