Summary

जिगर में कोलोरेक्टल मेटास्टेसिस के उन्नत पशु मॉडल: इमेजिंग तकनीक और metastatic क्लोन का गुण

Published: November 30, 2016
doi:

Summary

The ability of metastatic clones to colonize distant sites depends on their proliferation capacity and/or their ability to survive in the host microenvironment without significant proliferation. Here, we present an animal model that allows quantitative visualization of both types of liver colonization by metastatic clones.

Abstract

यकृत मेटास्टेसिस और प्रगति की धीमी दर की एक सीमित संख्या के साथ मरीजों को सफलतापूर्वक स्थानीय उपचार के साथ इलाज किया जा सकता 1,2 दृष्टिकोण। हालांकि, छोटे जिगर metastases की विविधता के बारे में जाना जाता है, और पशु व्यक्ति मेटास्टेटिक कालोनियों के विकास का मूल्यांकन करने में सक्षम मॉडल की जरूरत है। यहाँ, हम यकृत मेटास्टेसिस कि मात्रात्मक जिगर में अलग-अलग ट्यूमर क्लोन के विकास के लिए कल्पना और उनके विकास कैनेटीक्स और उपनिवेशवाद दक्षता अनुमान करने की क्षमता प्रदान करता है के एक उन्नत मॉडल प्रस्तुत करते हैं। हम HCT116 मानव कोलोरेक्टल कैंसर की कोशिकाओं को स्थिरतापूर्वक luciferase और tdTomato और विभिन्न विकास गुण रखने के साथ लेबल की मोनोक्लोनल डेरिवेटिव के एक पैनल उत्पन्न। एक splenectomy के बाद एक प्लीहा इंजेक्शन के साथ, इन क्लोन के बहुमत यकृत मेटास्टेसिस उत्पन्न करने में सक्षम है, लेकिन उपनिवेशवाद के विभिन्न आवृत्तियों और अलग-अलग विकास दर के साथ कर रहे हैं। Vivo इमेजिंग Syste का प्रयोगमीटर (IVIS), यह कल्पना और इन विवो luminescent और पूर्व vivo फ्लोरोसेंट इमेजिंग के साथ मेटास्टेसिस विकास यों के लिए संभव है। इसके अलावा, फैलाना Luminescent इमेजिंग टोमोग्राफी (DLIT) जिगर उपनिवेशवाद की आवृत्ति के मूल्यांकन और विकास कैनेटीक्स के लिए अनुमति देता है, विवो में जिगर metastases के एक 3 डी वितरण प्रदान करता है। पूर्व vivo काटा यकृत के फ्लोरोसेंट इमेजिंग व्यक्ति यकृत मेटास्टेटिक कालोनियों के मात्रात्मक मापन प्रदान करता है मेटास्टेसिस की। चूंकि मॉडल चिकित्सकीय मनाया जिगर metastases के समान है, यह यकृत मेटास्टेसिस के साथ जुड़े जीन का पता लगाने के लिए और जिगर मेटास्टेटिक रोग के लिए संभावित पंचमी विभक्ति या सहायक उपचार के परीक्षण के लिए एक साधन के रूप में सेवा कर सकते हैं।

Introduction

प्राथमिक कोलोरेक्टल कैंसर (सीआरसी) से यकृत मेटास्टेसिस के साथ मरीजों को एक गरीब पूर्वानुमान की विशेषता है। प्राथमिक nonmetastatic सीआरसी के लिए 5 साल की जीवित रहने की दर (चरणों मैं – तृतीय) – 88% 3,4 जबकि यकृत मेटास्टेसिस (चतुर्थ चरण) के साथ रोगियों को केवल 8 के एक 5 साल की जीवित रहने की दर है – के रूप में 75 का अनुमान है 12% 5 , 6। हालांकि, मेटास्टेटिक रोगियों को एक विषम समूह का प्रतिनिधित्व करते, मेटास्टेसिस और विभिन्न पुनरावृत्ति बार के विभिन्न संख्या के साथ पेश किया। नैदानिक टिप्पणियों से संकेत मिलता है कि मेटास्टेसिस की संख्या और किसी एक मेटास्टेसिस (स्थानीय विकास दर के लिए आनुपातिक) के आकार (जो बस्तियां क्षमता या उपनिवेशवाद की आवृत्ति के लिए आनुपातिक हो सकता है) स्वतंत्र शकुन कारकों 1,7 हैं। उनकी विकसित करने के लिए और उनके प्रसार और जिगर microenvironment में जीवित रहने की क्षमता की क्षमता: दूसरे शब्दों में, जिगर बस्तियां मेटास्टेटिक क्लोन की सफलता के दो प्रमुख गुणों पर निर्भर करता है।

परिरूपकब्जा करने और मेटास्टेटिक क्लोन के गुणों को बढ़ाता काफी जिगर मेटास्टेसिस जीव विज्ञान के बारे में हमारी समझ में सुधार और क्षमता चिकित्सकीय दृष्टिकोण के डिजाइन के लिए एक प्रभावी उपकरण प्रदान कर सकते हैं की क्षमता के साथ के सफल नैदानिक ​​मॉडल। प्रयोगात्मक जिगर मेटास्टेसिस के मॉडल पहले से 8,9 सूचना दी गई है, लेकिन न तो उनमें से मात्रात्मक कब्जा है और दोनों विवो और पूर्व vivo में अलग-अलग मेटास्टेटिक क्लोन के गुणों का वर्णन करने की क्षमता प्रदान की है।

यहाँ, हम जिगर मेटास्टेसिस कि विभिन्न जिगर बसाना क्षमता और विकास के गुणों के साथ ट्यूमर क्लोन की पीढ़ी भी शामिल है के लिए एक नया, उन्नत मॉडल प्रस्तुत करते हैं। हम luciferase और मोनोक्लोनल सेल लाइनों मेटास्टेटिक क्षमता में आंतरिक मतभेद है की पीढ़ी के साथ tdTomato फ्लोरोसेंट प्रोटीन के साथ कैंसर कोशिकाओं के दोहरे लेबलिंग का एक संयोजन कार्यरत हैं। इस प्रयोगात्मक मॉडल में, आंकड़ों से संकेत मिलता है कि विकास कीजिगर metastases बसाना आवृत्ति की शर्तें और दुगनी समय (टीडी) है, जो नैदानिक ​​टिप्पणियों के साथ संगत है में वर्णित किया जा सकता है। इस मॉडल की मात्रात्मक प्रकृति यह आसानी से दवाओं की खोज और नैदानिक ​​प्रयोजनों के लिए ग्रहणीय बनाता है।

Protocol

सभी पशु प्रक्रियाओं शिकागो विश्वविद्यालय (प्रोटोकॉल # 72213-09) में संस्थागत पशु की देखभाल और उपयोग समिति ने मंजूरी दे दी है और बाँझ शर्तों के तहत प्रदर्शन किया गया। 1. तैयारी Dulbecco संशोधित ईगल मध्यम (DMEM) 10…

Representative Results

इस प्रयोग के लक्ष्य में विवो metastatic ट्यूमर बोझ के धारावाहिक मात्रा का ठहराव के लिए और बस्तियां आवृत्ति और जिगर metastases के विकास के विकास कैनेटीक्स के आकलन के लिए क्षमता के साथ एक सुसंगत और आसा…

Discussion

वर्तमान रिपोर्ट में प्रस्तुत पशु मॉडल दो प्रमुख दृष्टिकोण पर आधारित है। सबसे पहले, क्रम में विभिन्न प्रवृत्तियों के साथ मेटास्टेटिक क्लोन निरीक्षण करने के उपनिवेश और जिगर में पैदा करने की क्षमता सु?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम Luc2-tdTomato प्लाज्मिड और HCT116 सेल लाइन, श्री Ani सोलंकी (पशु संसाधन केंद्र) चूहों के प्रबंधन के लिए, और डॉ लारा लियोनी सहायता के लिए के लिए डॉ जेफ्री एल ग्रीन (शिकागो विश्वविद्यालय) का शुक्रिया अदा करना चाहते हैं DLIT के साथ। फ्लोरोसेंट और luminescent तीव्रता के quantifications एक IVIS स्पेक्ट्रम पर शिकागो विश्वविद्यालय (PerkinElmer, Hopkinton, एमए) पर एकीकृत छोटे पशु इमेजिंग अनुसंधान संसाधन में प्रदर्शन किया गया। इस काम के वर्जीनिया और कैंसर अनुसंधान के लिए डीके लुडविग कोष द्वारा समर्थित किया गया था, फेफड़ों के कैंसर रिसर्च फाउंडेशन (LCRF), प्रोस्टेट कैंसर फाउंडेशन (पीसीएफ), और कैंसर केंद्र सहायता अनुदान (P30CA014599)। funders अध्ययन डिजाइन, डेटा संग्रह और विश्लेषण, प्रकाशित करने का निर्णय, या पांडुलिपि की तैयारी में कोई भूमिका नहीं थी।

Materials

IVIS Spectrum In Vivo Imaging System Caliper Life Sciences 124262 In vivo imaging system
LivingImage 4.0 Software Caliper Life Sciences 128165 Imaging software
VAD-MGX Research Anesthetic Machine Vetamac VAD-MGX Inhalation anesthesia machine
DMEM Gibco 11965-118 Cell culture reagents
DPBS Gibco 14190250 Cell culture reagents
Penicillin-Streptomycin, liquid (10,000 units penicillin;10,000 μg streptomycin) Invitrogen 15140163 Cell culture reagents
HBSS ThermoFisher 24020117 Cell culture reagents
Buprenex Injection (0.3mg/mL) Reckitt Benckiser Healthcare Ltd. 12496-0757-5 Buprenorphine hydrochloride
Gemini Cautery System Braintree Scientific GEM 5917 Hand-held cautery for splenectomy
Micro Clip; Straight; 70 Grams Pressure; 1.5mm Clip Width; 10mm Jaw Length Roboz Surgical Instrument RS-5426 Hemoclip: Hemostasis instruments after spleen injection
D-luciferin, potassium salt Goldbio Technology LUCK-1G Luciferin potassium salt
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Gibco 31985062 Reduced Serum Medium
TC20 Automated Cell Counter BIO-RAD 1450102 Automatic cell counter
JMP10 software  SAS Institute Data analysis software
BD FACSAria II cell sorter BD Biocsiences Cell sorter

References

  1. Fong, Y., Fortner, J., Sun, R. L., Brennan, M. F., Blumgart, L. H. Clinical score for predicting recurrence after hepatic resection for metastatic colorectal cancer: analysis of 1001 consecutive cases. Ann. Surg. 230 (3), 309-318 (1999).
  2. Pawlik, T. M., et al. Effect of surgical margin status on survival and site of recurrence after hepatic resection for colorectal metastases. Ann. Surg. 241 (5), 715-722 (2005).
  3. Park, J. H., Watt, D. G., Roxburgh, C. S., Horgan, P. G., McMillan, D. C. Colorectal Cancer, Systemic Inflammation, and Outcome: Staging the Tumor and Staging the Host. Ann. Surg. 263 (2), 326-336 (2016).
  4. Veen, T., et al. Long-Term Follow-Up and Survivorship After Completing Systematic Surveillance in Stage I-III Colorectal Cancer: Who Is Still at Risk. J. Gastrointest. Cancer. 46 (3), 259-266 (2015).
  5. Siegel, R., et al. Cancer treatment and survivorship statistics. CA Cancer J. Clin. 62 (2), 220-241 (2012).
  6. O’Connell, J. B., Maggard, M. A., Ko, C. Y. Colon cancer survival rates with the new American Joint Committee on Cancer sixth edition staging. J. Natl. Cancer Inst. 96 (19), 1420-1425 (2004).
  7. House, M. G., et al. Survival after hepatic resection for metastatic colorectal cancer: trends in outcomes for 1,600 patients during two decades at a single institution. J. Am. Coll. Surg. 210 (5), 744-752 (2010).
  8. Smakman, N., Martens, A., Kranenburg, O., Borel Rinkes, I. H. Validation of bioluminescence imaging of colorectal liver metastases in the mouse. J. Surg. Res. 122 (2), 225-230 (2004).
  9. Rajendran, S., et al. Murine bioluminescent hepatic tumour model. J. Vis. Exp. (41), (2010).
  10. Oshima, G., et al. Imaging of tumor clones with differential liver colonization. Sci. Rep. 5 (10946), (2015).
  11. Liu, H., et al. Cancer stem cells from human breast tumors are involved in spontaneous metastases in orthotopic mouse models. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 107 (42), 18115-18120 (2010).
  12. Wang, X. M., et al. Integrative analyses identify osteopontin, LAMB3 and ITGB1 as critical pro-metastatic genes for lung cancer. PLoS One. 8 (2), e55714 (2013).
  13. Fidler, I. J., Kripke, M. L. Metastasis results from preexisting variant cells within a malignant tumor. Science. 197 (4306), 893-895 (1977).
  14. Yachida, S., et al. Distant metastasis occurs late during the genetic evolution of pancreatic cancer. Nature. 467 (7319), 1114-1117 (2010).
  15. Khodarev, N. N., et al. STAT1 pathway mediates amplification of metastatic potential and resistance to therapy. PLoS One. 4 (6), e5821 (2009).
  16. Langley, R. R., Fidler, I. J. Tumor cell-organ microenvironment interactions in the pathogenesis of cancer metastasis. Endocr. Rev. 28 (3), 297-321 (2007).
  17. Lussier, Y. A., et al. Oligo- and polymetastatic progression in lung metastasis(es) patients is associated with specific microRNAs. PLoS One. 7 (12), e50141 (2012).
  18. Lussier, Y. A., et al. MicroRNA expression characterizes oligometastasis(es). PLoS One. 6 (12), e28650 (2011).
  19. Calon, A., et al. Dependency of colorectal cancer on a TGF-beta-driven program in stromal cells for metastasis initiation. Cancer Cell. 22 (5), 571-584 (2012).
  20. Vanharanta, S., Massague, J. Origins of metastatic traits. Cancer Cell. 24 (4), 410-421 (2013).
  21. Khodarev, N. N., Roizman, B., Weichselbaum, R. R. Molecular pathways: Interferon/Stat1 Pathway: Role in the tumor resistance to genotoxic stress and aggressive growth. Clin. Cancer Res. 18 (11), 3015-3021 (2012).
  22. Li, C., et al. Interferon-stimulated gene 15 (ISG15) is a trigger for tumorigenesis and metastasis of hepatocellular carcinoma. Oncotarget. 5 (18), 8429-8441 (2014).
  23. Cespedes, M. V., et al. Orthotopic microinjection of human colon cancer cells in nude mice induces tumor foci in all clinically relevant metastatic sites. Am. J. Pathol. 170 (3), 1077-1085 (2007).
  24. Tseng, W., Leong, X., Engleman, E. Orthotopic mouse model of colorectal cancer. J. Vis. Exp. (10), (2007).
  25. Soares, K. C., et al. A preclinical murine model of hepatic metastases. J. Vis. Exp. (27), e51677 (2014).
  26. Evans, J. P., et al. From mice to men: Murine models of colorectal cancer for use in translational research. Crit. Rev. Oncol. Hematol. 98, 94-105 (2016).
check_url/fr/54657?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Oshima, G., Stack, M. E., Wightman, S. C., Bryan, D., Poli, E., Xue, L., Skowron, K. B., Uppal, A., Pitroda, S. P., Huang, X., Posner, M. C., Hellman, S., Weichselbaum, R. R., Khodarev, N. N. Advanced Animal Model of Colorectal Metastasis in Liver: Imaging Techniques and Properties of Metastatic Clones. J. Vis. Exp. (117), e54657, doi:10.3791/54657 (2016).

View Video