Summary

Aanhoudende toediening van β-cel mitogenen om Intact Mouse Islets<em> Ex Vivo</em> Bioafbreekbare poly (melkzuur-co-glycolzuur) Microspheres

Published: November 05, 2016
doi:

Summary

Here, we present methodology to generate and administer compound of interest-loaded poly(lactic-co-glycolic acid) (PLGA) microspheres to intact mouse islets in culture with subsequent immunofluorescence analysis of β-cell proliferation. This method is suitable for determining the efficacy of candidate β-cell mitogens.

Abstract

De ontwikkeling van biomaterialen aanzienlijk vergroot de kans op doelgerichte geneesmiddelafgifte om een ​​verscheidenheid aan cel- en weefseltypes, zoals de pancreas β-cellen. Daarnaast biomateriaal deeltjes, hydrogels, en steigers bieden ook een unieke gelegenheid om te dienen duurzame, controleerbare drug delivery om ß-cellen in de cultuur en in het getransplanteerde weefsel modellen. Deze technologieën kunnen de studie van proliferatie kandidaat-β-cel factoren met behulp van intacte eilandjes en een translationeel relevant systeem. Bovendien bepalen van de effectiviteit en haalbaarheid van kandidaat factoren voor het stimuleren van proliferatie β-cellen in een kweeksysteem kritisch voordat ze verder in vivo modellen. Hierin beschrijven we een werkwijze voor co-kweek intacte eilandjes muis met biologisch afbreekbare verbinding van belang (COI) -geladen poly (melkzuur-co-glycolzuur) (PLGA) microsferen voor de beoordeling van de effecten van aanhoudende afgifte in situ of mitogene factoren β-celproliferatie. Deze techniek beschrijft in detail hoe PLGA microsferen die een gewenste lading met behulp van commercieel verkrijgbare reagentia te genereren. Hoewel de beschreven techniek maakt gebruik van recombinant humaan Bindweefsel groeifactor (rhCTGF) als voorbeeld, kan een grote verscheidenheid aan COI onmiddellijk kunnen worden gebruikt. Bovendien is deze werkwijze gebruikt 96-well platen de hoeveelheid reagentia die nodig zijn om proliferatie β-cellen te beoordelen minimaliseren. Dit protocol kan gemakkelijk worden aangepast aan andere biomaterialen en andere endocrine celeigenschappen zoals celoverleving en differentiatie status gebruiken.

Introduction

Pancreatische β-cellen zijn de enige insulineproducerende cellen in het lichaam en is essentieel voor bloedglucose homeostase. Terwijl gezonde individuen voldoende β-celmassa en functionaliteit, om goed te reguleren bloedglucose, zijn individuen met diabetes gekenmerkt door onvoldoende β-celmassa en / of functie 1,2. Het is voorgesteld dat het induceren van proliferatie β-cel kan uiteindelijk stijgen β-celmassa en herstellen glucose homeostase bij patiënten met diabetes 3. Echter, beoordeling en validatie van mogelijke β-celproliferatieve verbindingen intacte eilandjes noodzakelijk voor effectieve therapieën kunnen worden ontwikkeld. Transplantatie van postmortale menselijke eilandjes in personen met diabetes herstelt bloedglucose homeostase enige tijd, maar de beschikbaarheid en het succes van deze experimentele procedure wordt gehinderd door een gebrek aan menselijke eilandjes voor transplantatie en ß-celdood in de eilandjes achtersteer transplantatie 4. Zelfs met de ontdekking van factoren die vermenigvuldiging van insulineproducerende cellen induceren een belangrijke uitdaging bestaat nog verwezenlijken van deze factoren relevante sites in vivo. Een strategie voor duurzame lokale afgifte van β-celproliferatieve verbindingen poly (melkzuur-co-glycolzuur) (PLGA). PLGA heeft een gebruiksgeschiedenis in FDA goedgekeurde geneesmiddel levering producten vanwege de hoge veiligheid, biologische afbreekbaarheid en afgiftekinetiek verlengde 5. Specifiek PLGA is een copolymeer van lactide en glycolide dat afbreekt door hydrolyse met water, hetzij in vivo of in kweek in melkzuur en glycolzuur, zijn natuurlijk voorkomende metabolieten in het lichaam. De ingekapselde geneesmiddel verbinding kan worden vrijgegeven in de omgeving van zowel diffusie en / of afbraak gecontroleerde afgiftemechanismen. Inkapseling van COI beschermt tegen enzymatische degradatie, verbetering van de biobeschikbaarheid van het reagens ten opzichte unencapsulated COI 5. Wij stellen voor dat PLGA microsferen kunnen worden gebruikt om kandidaat-verbindingen intacte eilandjes dienen in cultuur, en uiteindelijk in vivo. Het testen van de werkzaamheid van PLGA tot β-cel mitogenen toedienen aan eilandjes ex vivo kritisch voor transplantatie protocol worden onderzocht.

Momenteel is er geen techniek om proliferatie β-cellen in levende dieren te meten. Experimenten om de effectiviteit van mogelijke proliferatieve verbindingen in vivo te beoordelen vereisen daarom toediening van deze verbindingen levende dieren, met daaropvolgend dissectie en verwerking van pancreata voor immunokleuring. Dergelijke protocollen zijn duur en arbeidsintensief en vereisen de verbinding systemisch worden toegediend, zonder garantie dat de eilandjes bereiken. Omgekeerd verschillende β-geïmmortaliseerde cellijnen beschikbaar voor de studie van insulineproducerende cellen in kweek, maar deze cellijnen missen het eilandje architectuur en environment gevonden in levende organismen 6. Β-geïmmortaliseerde cellijnen worden ook gekenmerkt door een opvallend hoger dan replicatie endogene β-cellen in vivo, waardoor complicerende analyse van verbindingen die proliferatie induceren. In deze studie beschrijven we een protocol dat intacte eilandjes geïsoleerd uit volwassen muizen gebruikt. In tegenstelling tot de β-cellijnen, intact eilandjes behouden normale eilandje architectuur. Ook in tegenstelling tot experimenten in vivo toediening proliferatieve verbindingen direct gekweekte intacte eilandjes vermindert de hoeveelheid reagentia die nodig zijn om nauwkeurig proliferatie β-cel.

De huidige studie gebruikt PLGA een COI beheren, in dit voorbeeld, recombinante humane bindweefselgroeifactor (rhCTGF). De hier beschreven methode geeft een aanzienlijk voordeel ten opzichte van de toediening van ruwe verbinding gekweekte eilandjes omdat het zorgt voor een continue afgifte van de verbinding in the media. Met name kan deze test worden aangepast aan een grote verscheidenheid aan eiwitten en antilichamen van belang intacte eilandjes dienen. Endocrine effecten op andere celtypen, waaronder α-cellen kunnen worden geanalyseerd.

Protocol

Alle procedures werden goedgekeurd en uitgevoerd volgens de Vanderbilt Institutional Animal Care en gebruik Committee. 1. Labeling COI met Fluorofoor (optioneel) Kies een fluorescente kleurstof die reageren met een vrij primair amine (bijvoorbeeld een eiwit), zoals succinimidyl esters of fluoresceïne derivaten op microsfeer lading visualiseren. Ontbinden 8x molaire overmaat (ten opzichte van mol COI) fluorofoor in 200 gl dimethylsulfoxide (DMSO). Resuspendeer 5…

Representative Results

Figuur 1 is een visuele weergave van de microsferen geproduceerd met de bovenstaande protocol. De hier beschreven protocol levert rhCTGF-beladen microsferen van verschillende groottes. De grootste fractie van microsferen zal tussen 1 en 10 urn in diameter, hoewel sommige microsferen groter (Figuur 2) zijn. Desgewenst kan microsfeergrootte worden afgestemd en geoptimaliseerd op basis fabricage parameters zoals homogeniseren snelheid en ti…

Discussion

De studie van β-celproliferatie in kweek wordt gewoonlijk afgeremd door een aantal moeilijkheden. Eerst worden geïmmortaliseerde β-cellijnen gekarakteriseerd door een hogere graad van proliferatie dan wat in endogene β-cellen in levende eilandjes. Bovendien zijn deze geïmmortaliseerde cellijnen missen de normale architectuur essentieel voor normale β-celfunctie. Deze twee feiten maken het moeilijk om te bepalen of de resultaten verkregen met β-geïmmortaliseerde cellijnen opgaan wanneer getest in vivo of…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Bethany Carboneau (Vanderbilt University) for critical reading of this manuscript. We also thank Anastasia Coldren (Vanderbilt University Medical Center Islet Procurement and Analysis Core) for islet isolations, and Dr. Alvin C. Powers (Vanderbilt University Medical Center) and Dr. David Jacobson (Vanderbilt University) for use of their centrifuge and tissue culture facility. This research involved use of the Islet Procurement and Analysis Core of the Vanderbilt Diabetes Research and Training Center supported by NIH grant DK20593. This work was supported by an American Heart Association Postdoctoral Fellowship (14POST20380262) to R.C.P., and grants from the Juvenile Diabetes Research Foundation (1-2011-592), and Department of Veterans Affairs (1BX00090-01A1) to M.A.G.

Materials

Oregon Green 488 Carboxylic Acid, Succinimidyl Ester, 6-isomer ThermoFisher Scientific O6149 For labeling COI with fluorophore
DMSO Dimethyl Sulfoxide Fisher BioReagents BP231-1 For dissolving fluorophore in step 1
Disposable PD-10 Desalting Columns GE Healthcare 17-0851-01 Desalting column used in step 1
Resomer RG 505, Poly(D,L-lactide-co-glycolide), ester terminated, molecular weight 54,000-69,000 Sigma-Aldrich 739960 Used in generation of microspheres in step 2
Poly(vinyl alcohol) molecular weight 89,000-98,000 Sigma-Aldrich 341584 Used in generation of microspheres in step 2
RPMI 1640 Thermo Scientific 11879-020 For culturing islets
Dextrose Anhydrous Fisher BioReagents 200-075-1 Supplement for islet media
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P4333 Antibiotics for islet media
Normal horse serum Jackson ImmunoResearch 008-000-121 Supplement for islet media
96-well tissue culture plate Corning 3603 For culturing islets
Ethylene glyco-bis(2-aminoethylether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid Sigma-Aldrich E4378 Supplement for pre-assay islet media
Cytospin 4 Cytocentrifuge Thermo Scientific A78300003 For spinning cells onto microscope slides
EZ Single Cytofunnel Thermo Scientific A78710020 For spinning cells onto microscope slides
Ethylenediaminetetraacetic acid Fisher BioReagents BP118-500 Used in dissociating islets
paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148 For fixing cells
Triton  X-100 Fisher BioReagents BP151 For permeabilizing cells
Normal donkey serum Jackson ImmunoResearch 017-000-121 Blocking reagents for immunofluorescence
Anti-Ki67 antibody abcam ab15580 For Ki67 immunofluorescence
Polyclonal Guinea Pig Anti-Insulin Dako A0564 For insulin immunofluorescence
Cy3 AffiniPure Donkey Anti-Rabbit Jackson ImmunoResearch 711-165-152 For Ki67 immunofluorescence
Cy5 AffiniPure Donkey Anti-Guinea Pig Jackson ImmunoResearch 706-175-148 For insulin immunofluorescence
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) ThermoFisher Scientific D1306 For nuclei visualization in immunofluorescence
Aqua-Mount Lerner Laboratories 13800 Fast drying mounting media
FreeZone -105°C 4.5 Liter Cascade Benchtop Freeze Dry System Labconco 7382020 For lyophilization of microspheres

References

  1. Butler, A. E., et al. Beta-cell deficit and increased beta-cell apoptosis in humans with type 2 diabetes. Diabetes. 52 (1), 102-110 (2003).
  2. Levy, J., Atkinson, A. B., Bell, P. M., McCance, D. R., Hadden, D. R. Beta-cell deterioration determines the onset and rate of progression of secondary dietary failure in type 2 diabetes mellitus: the 10-year follow-up of the Belfast Diet Study. Diabet Med. 15 (4), 290-296 (1998).
  3. Bouwens, L., Rooman, I. Regulation of pancreatic beta-cell mass. Physiol Rev. 85 (4), 1255-1270 (2005).
  4. McCall, M., Shapiro, A. M. Update on islet transplantation. Cold Spring Harb Perspect Med. 2 (7), 007823 (2012).
  5. Danhier, F., et al. PLGA-based nanoparticles: an overview of biomedical applications. J Control Release. 161 (2), 505-522 (2012).
  6. Skelin, M., Rupnik, M., Cencic, A. Pancreatic beta cell lines and their applications in diabetes mellitus research. ALTEX. 27 (2), 105-113 (2010).
  7. Rui, J., et al. Controlled release of vascular endothelial growth factor using poly-lactic-co-glycolic acid microspheres: in vitro characterization and application in polycaprolactone fumarate nerve conduits. Acta Biomater. 8 (2), 511-518 (2012).
  8. Lacy, P. E., Kostianovsky, M. Method for the isolation of intact islets of Langerhans from the rat pancreas. Diabetes. 16 (1), 35-39 (1967).
  9. Szot, G. L., Koudria, P., Bluestone, J. A. Murine pancreatic islet isolation. J Vis Exp. (7), e255 (2007).
  10. Mukherjee, B., Santra, K., Pattnaik, G., Ghosh, S. Preparation, characterization and in-vitro evaluation of sustained release protein-loaded nanoparticles based on biodegradable polymers. Int J Nanomedicine. 3 (4), 487-496 (2008).
  11. Riley, K. G., et al. Connective tissue growth factor modulates adult beta-cell maturity and proliferation to promote beta-cell regeneration in mice. Diabetes. 64 (4), 1284-1298 (2015).
  12. Mosser, R. E., Gannon, M. An assay for small scale screening of candidate beta cell proliferative factors using intact islets. Biotechniques. 55 (6), 310-312 (2013).
  13. Carvell, M. J., Marsh, P. J., Persaud, S. J., Jones, P. M. E-cadherin interactions regulate beta-cell proliferation in islet-like structures. Cell Physiol Biochem. 20 (5), 617-626 (2007).
  14. Wakae-Takada, N., Xuan, S., Watanabe, K., Meda, P., Leibel, R. L. Molecular basis for the regulation of islet beta cell mass in mice: the role of E-cadherin. Diabetologia. 56 (4), 856-866 (2013).
  15. Gavrieli, Y., Sherman, Y., Ben-Sasson, S. A. Identification of programmed cell death in situ via specific labeling of nuclear DNA fragmentation. J Cell Biol. 119 (3), 493-501 (1992).
  16. Kuo, L. J., Yang, L. X. Gamma-H2AX – a novel biomarker for DNA double-strand breaks. In Vivo. 22 (3), 305-309 (2008).
  17. Daoud, J., Rosenberg, L., Tabrizian, M. Pancreatic islet culture and preservation strategies: advances, challenges, and future outlook. Cell Transplant. 19 (12), 1523-1535 (2010).
  18. Carter, J. D., Dula, S. B., Corbin, K. L., Wu, R., Nunemaker, C. S. A practical guide to rodent islet isolation and assessment. Biol Proced Online. 11, 3-31 (2009).
  19. Xu, Q., He, C., Xiao, C., Chen, X. Reactive Oxygen Species (ROS) Responsive Polymers for Biomedical Applications. Macromol Biosci. 16 (5), 635-646 (2016).
  20. Makadia, H. K., Siegel, S. J. Poly Lactic-co-Glycolic Acid (PLGA) as Biodegradable Controlled Drug Delivery Carrier. Polymers (Basel). 3 (3), 1377-1397 (2011).
  21. Cui, F., Shi, K., Zhang, L., Tao, A., Kawashima, Y. Biodegradable nanoparticles loaded with insulin-phospholipid complex for oral delivery: preparation, in vitro characterization and in vivo evaluation. J Control Release. 114 (2), 242-250 (2006).
  22. Kavanaugh, T. E., Werfel, T. A., Cho, H., Hasty, K. A., Duvall, C. L. Particle-based technologies for osteoarthritis detection and therapy. Drug Deliv Transl Res. , (2015).
  23. Joshi, R. V., Nelson, C. E., Poole, K. M., Skala, M. C., Duvall, C. L. Dual pH- and temperature-responsive microparticles for protein delivery to ischemic tissues. Acta Biomater. 9 (5), 6526-6534 (2013).
  24. Poole, K. M., et al. ROS-responsive microspheres for on demand antioxidant therapy in a model of diabetic peripheral arterial disease. Biomaterials. 41, 166-175 (2015).
check_url/fr/54664?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Pasek, R. C., Kavanaugh, T. E., Duvall, C. L., Gannon, M. A. Sustained Administration of β-cell Mitogens to Intact Mouse Islets Ex Vivo Using Biodegradable Poly(lactic-co-glycolic acid) Microspheres. J. Vis. Exp. (117), e54664, doi:10.3791/54664 (2016).

View Video