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Article de méthode

Immunocoloration des articles biocytine remplis et transformés pour neurochimiques Marqueurs

23K vues

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DOI :

10.3791/54880

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31 décembre 2016

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole présente un procédé pour la récupération morphologique des neurones corrigés lors des enregistrements électrophysiologiques en utilisant le remplissage de la biocytine et de post-traitement immunohistochimique ultérieure. Nous montrons que les sections de biocytin rempli d'épaisseur qui ont été colorées et sous une lamelle peuvent être recolorées avec un deuxième jours ou des mois d'anticorps primaires plus tard.

Résumé

Enregistrements électrophysiologiques des cellules en utilisant la technique du patch clamp ont permis l'identification de différents types de neurones en fonction des modèles de tir. L'inclusion de biocytin / neurobiotin dans l'électrode d'enregistrement permet la récupération post-hoc des détails morphologiques, qui sont nécessaires pour déterminer l'arborisation dendritique et les régions ciblées par les axones des neurones enregistrés. Toutefois, étant donné la présence de neurones morphologiquement similaires avec des identités et des fonctions neurochimiques distinctes, la coloration immunohistochimique pour les protéines cellule de type spécifique est essentiel d'identifier définitivement les neurones. Pour maintenir la connectivité de réseau, des sections de cerveau pour les enregistrements physiologiques sont préparées à une épaisseur de 300 um ou plus. Toutefois, cette épaisseur empêche souvent le post-traitement immunohistochimique à cause de problèmes avec la pénétration de l'anticorps, ce qui nécessite la résection du tissu. Résection de tranches est un art difficile, Resul souventtion de la perte de tissu et de la morphologie des cellules à partir desquelles les données électrophysiologiques ont été obtenus, ce qui rend les données inutilisable. Etant donné que la récupération de la morphologie limiterait la perte de données et le guide dans le choix des marqueurs neuronaux, nous avons adopté une stratégie de récupération de la morphologie des cellules en premier, suivi par immunocoloration secondaire. Nous introduisons une approche pratique pour biocytin remplissage pendant les enregistrements physiologiques et immunocoloration série subséquente pour la récupération de la morphologie, suivie par la recoloration des sections pour déterminer l'identité neurochimique. Nous rapportons que les articles qui ont été remplis avec biocytin, fixés avec du paraformaldehyde (PFA), colorées, et sous une lamelle peuvent être enlevés et recolorées avec un deuxième jours d'anticorps primaires plus tard. Cette recoloration implique la suppression de la lamelle couvre-objet, le lavage des coupes dans une solution tampon et l'incubation des anticorps primaires et secondaires afin de révéler l'identité neurochimique. Le procédé est avantageux pour l'élimination datune perte due à l'incapacité de recouvrer la morphologie et pour réduire la liste des marqueurs neurochimiques à tester sur la base de la morphologie.

Introduction

Le cerveau est connue pour la diversité dans les caractéristiques structurelles et fonctionnelles de ses éléments neuronaux individuels. Comprendre les rôles des types de neurones distincts dans le fonctionnement du cerveau et de la pathologie nécessite la caractérisation et l'identification sans ambiguïté des neurones. Structurellement, les caractéristiques morphologiques définies par emplacement somato-dendritique déterminent les entrées potentielles qu'un neurone donné reçoit, tandis que le modèle d'arborisation axonale identifie des cibles postsynaptiques potentiels. La diversité structurelle des neurones a été apprécié depuis les journées d'étude....

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Protocole

1. biocytine remplissage pendant électrophysiologie

REMARQUE: Les lecteurs peuvent se référer à d' autres sources pour les techniques de base de patch-clamp enregistrement et l' instrumentation 19-22, qui ne sont pas élaborés sur ici. Les étapes détaillées ici supposent que le matériel et les procédures pour les enregistrements de patch-clamp sont déjà établis, et la description seront limités aux détails relatifs à biocytin-remplissage et immunocoloration post-hoc. Toutes les expériences décrites dans ce manuscrit ont été réalisées sur des rats.

  1. En utilisant un vibratome, prépare des coupes de cerveau en direct de l....

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Résultats

En cas de réussite, les sections conservent le remplissage et la biocytine immunomarquage effectué à l'étape 2 et peuvent être imagés en utilisant confocale ou par microscopie à épifluorescence. En outre, les sections traitées montrent également une immunocoloration pour l'antigène marqué au cours du traitement ultérieur dans l' étape 3. Dans la section illustrée à la figure 2, la morphologie d'un neurone biocytine rempli dans une section épaisse (300 um) a été révélée e.......

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Discussion

Étapes critiques dans le Protocole

Remplir la cellule patché avec biocytin est l'étape la plus cruciale pour assurer la récupération complète de la morphologie. Pour la récupération complète de la cellule, il est essentiel de choisir une orientation de tranche optimale pour minimiser la rupture des processus pendant le tranchage. Cette orientation peut varier en fonction du circuit et de type de cellule en cours d'examen. Ensuite, il est essentiel de prévoir suffisam.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n'ont rien à dévoiler.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier le soutien du NIH / NINDS R01 NS069861 et NJCBIR CBIR14IRG024 à VS.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
NaClSigmaS7653Immunomarquage
KClFluka60129Immunomarquage
Na2HPO4  ;SigmaS7907Immunomarquage
KH2PO4  ;Sigma229806Immunomarquage
Triton X-100SigmaT8787Immunomarquage
cochon d’Inde anti CB1  ;SigmaAf530-1Immunomarquage souris
anti CCKCURE, UCLAavec l’aimable autorisation de G. OhningImmunomarquage
Lapin anti ParvalbumineSwantPV27Immunomarquage
Streptavidine, Alexa Fluor ConjuguéSondes moléculairesS11227Immunomarquage
Sérum de chèvre normal (NGS)SigmaG9023Immunomarquage
Vectashield  ;Vector LabsH-1000Immunomarquage
Anticorps secondairesInvitogen Sondesmoléculaires Alexa Fluor Colorants conjuguésImmunomarquage
Labnet orbit agitateur basse vitesseBioexpressS-2030-LS
ImmunomarquagePince Dumont11231-30Immunomarquage
Chemises à lamesEMS71520Immunomarquage
Vibratome VT 1200 SLeica14048142066Électrophysiologie
Amplificateur Multiclamp 700BDispositifs moléculairesMulticlamp 700BÉlectrophysiologie
pCLAMP 10 LogicielAppareilsmoléculaires pCLAMP 10  ;électrophysiologie
NumériseurDispositifs moléculairesDigidata 1440 NumériseurÉlectrophysiologie
Embouts de filtreNalgene171-0020Électrophysiologie
SonicateurFisher Scientific15-335-100Électrophysiologie
MicrochargeursEppendorf930001007Électrophysiologie
BiocytineSigmaB4261Électrophysiologie

Références

  1. Garcia-Lopez, P., Garcia-Marin, V., Freire, M. The histological slides and drawings of cajal. Front Neuroanat. 4, 9(2010).
  2. Klausberger, T., Somogyi, P. Neuronal diversity and temporal dynamics: the unity of hippocampal circuit operations. Science. 321 (5885....

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Réimpressions et autorisations

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