Summary

कुशल और साइट विशेष तनाव प्रवर्तित अब्द-alkyne cycloaddition द्वारा एंटीबॉडी लेबलिंग

Published: December 23, 2016
doi:

Summary

Here, we present a protocol to site-specifically introduce chemical probes into an antibody fragment by genetically incorporating an azide-containing amino acid, and subsequently coupling the azide with a chemical probe by strain-promoted azide-alkyne cycloaddition (SPAAC).

Abstract

वर्तमान में कई रासायनिक उपकरण उनकी संरचना और समारोह का अध्ययन करने के लिए प्रोटीन में रासायनिक जांच के परिचय के लिए उपलब्ध हैं। एक उपयोगी तरीका आनुवंशिक रूप से एक bioorthogonal कार्यात्मक समूह युक्त एक अप्राकृतिक अमीनो एसिड को शुरू करने से प्रोटीन विकार है। इस रिपोर्ट में यह साइट विशेष एंटीबॉडी विकार के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल का वर्णन है। प्रोटोकॉल एक azide युक्त एमिनो एसिड की आनुवंशिक समावेश, और तनाव प्रवर्तित azide-alkyne cycloaddition (SPAAC) द्वारा विकार प्रतिक्रिया के लिए प्रयोगात्मक विवरण शामिल हैं। इस तनाव प्रवर्तित प्रतिक्रिया शारीरिक पीएच और तापमान पर प्रतिक्रिया अणुओं की साधारण मिश्रण से गुज़रता है, और इस तरह तांबे (आई) आयनों और तांबे chelating ligands के रूप में अतिरिक्त अभिकर्मकों की आवश्यकता नहीं है। इसलिए, इस विधि सामान्य प्रोटीन विकार और एंटीबॉडी दवा conjugates (एडीसी) के विकास के लिए उपयोगी होगा।

Introduction

चूंकि कोलाई में पी -methoxyphenylalanine के आनुवंशिक समावेश सूचना मिली थी, 1 100 से अधिक अप्राकृतिक अमीनो एसिड (UAAs) सफलतापूर्वक विभिन्न प्रोटीन में शामिल किया गया है। 1-3 इन UAAs के अलावा, अमीनो bioorthogonal कार्य समूहों युक्त एसिड बड़े पैमाने पर अध्ययन और सबसे बड़ा अनुपात का प्रतिनिधित्व कर दिया है। Bioorthogonal कार्यात्मक UAAs में इस्तेमाल समूहों कीटोन, 4 azide, 5 alkyne, 6 cyclooctyne, 7 tetrazine, 8 α, β-असंतृप्त एमाइड, 9 norbonene, 10 transcyclooctene, 11 और bicyclo [6.1.0] -nonyne शामिल हैं। 11 यद्यपि प्रत्येक कार्य समूह ने अपने फायदे और नुकसान है, azide युक्त एमिनो एसिड सबसे बड़े पैमाने पर प्रोटीन विकार के लिए इस्तेमाल किया गया है। पी -Azidophenylalanine (वायुसेना), azido युक्त एमिनो एसिड में से एक, आसानी से उपलब्ध है, और इसके समावेश efficiency उत्कृष्ट है। उत्परिवर्ती इस एमिनो एसिड युक्त प्रोटीन तांबा उत्प्रेरित cycloaddition द्वारा या SPAAC द्वारा cyclooctynes ​​साथ alkynes साथ प्रतिक्रिया व्यक्त की जा सकती है। 12-20

हाल ही में, बायोफार्मास्यूटिकल्स दवा उद्योग में काफी ध्यान आकर्षित किया गया है। एंटीबॉडी दवा साधना (एडीसी) मानव कैंसर के उपचार के लिए 21 और लक्षित चिकित्सा के लिए उनकी क्षमता के कारण चिकित्सीय एंटीबॉडी कि फायदेमंद हैं का एक वर्ग है अन्य रोगों। 50 से अधिक एडीसी नैदानिक ​​परीक्षण में वर्तमान में कर रहे हैं, और संख्या तेजी से बढ़ रही है। एडीसी के विकास में, कई कारकों प्रभावकारिता को अधिकतम और दुष्प्रभावों को कम करने के लिए विचार किया जाना चाहिए। इन कारकों के अलावा, एक कुशल और साइट विशेष विकार प्रतिक्रिया एक एंटीबॉडी के बीच एक सहसंयोजक बांड के रूप में और एक दवा के लिए महत्वपूर्ण है। वांछित दक्षता और विकार प्रतिक्रिया में विशिष्टता एक में एक bioorthogonal कार्यात्मक समूह के साथ संयोजन के द्वारा प्राप्त किया जा सकताअप्राकृतिक एमिनो एसिड है कि विशेष रूप से एक एंटीबॉडी में शामिल किया है। 22-26 यहाँ, हम करने के लिए एक प्रोटोकॉल रिपोर्ट साइट विशेष रूप से शामिल एक एंटीबॉडी टुकड़ा में वायुसेना और एक जैव रासायनिक जांच के साथ उत्परिवर्ती एंटीबॉडी टुकड़ा एकत्रित।

Protocol

1. प्लाज्मिड निर्माण एक अभिव्यक्ति प्लाज्मिड (pBAD-HerFab-L177TAG) है कि एक अपने 6 -tag के साथ लक्ष्य प्रतिरक्षी जीन (pBAD-HerFab-डब्ल्यूटी) का निर्माण व्यक्त करेंगे, और एम्बर कोडोन साथ Leucine-177 के लिए कोडोन की जगह (टैग), 27,</…

Representative Results

इस अध्ययन में, एक एंटीबॉडी टुकड़ा साइट विशेष टुकड़ा में एक azide युक्त एमिनो एसिड शामिल करने और एक तनावपूर्ण cyclooctyne साथ उत्परिवर्ती एंटीबॉडी टुकड़ा प्रतिक्रिया द्वारा एक fluorophore साथ संयुग्मित <…

Discussion

प्रोटीन में अप्राकृतिक एमिनो एसिड की आनुवंशिक समावेश प्रोटीन संशोधन के लिए इस्तेमाल अन्य तरीकों पर कई फायदे हैं। महत्वपूर्ण लाभ में से 1-3 से एक प्रोटीन की किसी भी तरह के लिए अपने सामान्य प्रयोज्य?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Materials

1. plasmid Construction
plasmid pBAD_HerFab_L177TAG optionally contain the amber stop codon(TAG) at a desired position. Ko, W. et al. Efficient and Site-Specific Antibody Labeling by Strain-promoted Azide-Alkyne Cycloaddition. BKCS. 36 (9), 2352-2354, doi: 10.1002/bkcs.10423, (2015)
plasmid pEvol-AFRS Young, T. S., Ahmad, I., Yin, J. A., and Schultz, P. G. An enhanced system for unnatural amino acid mutagenesis in E. coli. J. Mol. Biol. 395 (2), 361-374, doi: 10.1016/j.jmb.2009.10.030, (2010)
DH10B Invitrogen C6400-03 Expression Host
Plasmid Mini-prep kit Nucleogen 5112 200/pack
Agarose Intron biotechnology 32034 500g
Ethidium bromide Alfa Aesar L07482 1g
LB Broth BD Difco 244620 500g
2. Culture preparation
2.1) Electroporation
Micro pulser  BIO-RAD 165-2100
Micro pulser cuvette BIO-RAD 165-2089 0.1cm electrode gap, pkg. of 50
Ampicillin Sodium Wako 018-10372 25g
Chloramphenicol Alfa Aesar B20841 25g
Agar SAMCHUN 214230 500g
SOC medium Sigma S1797 100ML
3. Expression and purification of HerFab-L177AF
3.1 Expression of Herfab-L177AF
p-azido-L-phenylalanine (AF) Bachem F-3075.0001 1g
L(+)-Arabinose, 99% Acros 104981000 100g
Hydrochloric acid, 35~37% SAMCHUN H0256 500ml
3.2 Cell lysis
Tris(hydroxymethyl)aminomethane, 99% SAMCHUN T1351 500g
EDTA disodium salt dihydrate, 99.5% SAMCHUN E0064 1kg
Sucrose Sigma S9378 500g
Lysozyme Siyaku 126-0671 1g
3.3 Ni-NTA Affinity Chromatography
Ni-NTA resin QIAGEN 30210 25ml
Polypropylene column QIAGEN 34924 50/pack, 1ml capacity
Imidazole, 99% SAMCHUN I0578 1kg
Sodium phosphate monobasic, 98% SAMCHUN S0919 1kg
Sodium Chloride, 99% SAMCHUN S2907 1kg
4. Conjugation of Purified HerFab-L177AF with Alkyne Probes Using Strain-Promoted Azide-Alkyne Cycloaddition (SPAAC) 
Cy5.5-ADIBO  FutureChem FC-6119 1mg
5. Purification of Labeled HerFab
Amicon Ultra 0.5 mL Centrifugal Filters MILLIPORE UFC500396 96/pack, 500ul capacity
6. SDS-PAGE Analysis of Labeled HerFab and Fluorescent Gel Scanning
1,4-Dithio-DL-threitol, DTT, 99.5 % Sigma 10708984001 10g
NuPAGE LDS Sample Buffer, 4X Thermofisher NP0007 10ml
MES running buffer Thermofisher NP0002 500ml
Nupage Novex 4-12% SDS PAGE gels Thermofisher NO0321 12well
Coomassie Brilliant Blue R-250 Wako 031-17922 25g
Typhoon 9210 variable mode imager Amersham Biosciences

References

  1. Wang, L., Schultz, P. G. Expanding the genetic code. Angew. Chem. Int. Ed. 44 (1), 34-66 (2004).
  2. Wu, X., Schultz, P. G. Synthesis at the interface of chemistry and biology. J. Am. Chem. Soc. 131 (35), 12497-12515 (2009).
  3. Liu, C. C., Schultz, P. G. Adding new chemistries to the genetic code. Annu. Rev. Biochem. 79, 413-444 (2010).
  4. Wang, L., Zhang, Z., Brock, A., Schultz, P. G. Addition of the keto functional groupto the genetic code of Escherichia coli. proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100 (1), 56-61 (2003).
  5. Chin, J. W., et al. Addition of p-azido-L-phenylalanine to the genetic code of Escherichia coli. J. Am. Chem. Soc. 124 (31), 9026-9027 (2002).
  6. Deiters, A., Schultz, P. G. In vivo incorporation of an alkyne into proteins in Esshcerichia coli. Bioorg. Med. Chem. Lett. 15 (5), 1521-1524 (2005).
  7. Plass, T., Milles, S., Koehler, C., Schultz, C., Lemke, E. A. Genetically encoded copper-free click chemistry. Angew. Chem. Int. Ed. 50 (17), 3878-3881 (2011).
  8. Seitchik, J. L., et al. Genetically encoded tetrazine amino acid directs rapid site-specific in vivo bioorthogonal ligation with transcyclooctenes. J. Am. Chem. Soc. 134 (6), 2898-2901 (2014).
  9. Lee, Y. -. J., et al. A genetically encoded acrylamide fuctionality. ACS Chem. Biol. 8 (8), 1664-1670 (2013).
  10. Lang, K., et al. Genetically encoded norbornene directs site-specific cellular protein labelling via a rapid bioorthogonal raction. Nat Chem. 4 (4), 298-304 (2012).
  11. Lang, K., et al. Genetic encoding of bicyclononynes and trans-cyclooctenes for site-specific protein labeling in vitro and in live mammalian cells via rapid fluorogenic Diels-Alder reactions. J. Am. Chem. Soc. 134 (25), 10317-10320 (2012).
  12. Jewett, J. C., Sletten, E. M., Bertozzi, C. R. Rapid Cu-free click chemistry with readily synthesized biarylazacyclooctynones. J. Am. Chem. Soc. 132 (11), 3688-3690 (2010).
  13. Debets, M. F., et al. Azadibenzocyclooctynes for fast and efficient enzyme PEGylation via copper-free (3 + 2) cycloaddition. Chem. Commun. 46 (1), 97-99 (2010).
  14. Sletten, E. M., Bertozzi, C. R. From mechanism to mouse: a tale of two bioorthogonal reactions. Acc. Chem. Res. 44 (9), 666-676 (2011).
  15. Debets, M. F., et al. Bioconjugation with strained alkenes and alkynes. Acc. Chem. Res. 44 (9), 805-815 (2011).
  16. Mbua, N. E., Guo, J., Wolfert, M. A., Steet, R., Boons, G. -. J. Strain-promoted alkyne−azide cycloadditions (SPAAC) reveal new features of glycoconjugate biosynthesis. ChemBioChem. 12 (12), 1912-1921 (2011).
  17. Kuzmin, A., Poloukhtine, A., Wolfert, M. A., Popik, V. V. Surface functionalization using catalyst-free azide-alkyne cycloaddition. Bioconjug. Chem. 21 (11), 2076-2085 (2011).
  18. Yao, J. Z., et al. Fluorophore targeting to cellular proteins via enzymemediated azide ligation and strain-promoted cycloaddition. J. Am. Chem. Soc. 134 (8), 3720-3728 (2012).
  19. Hao, Z., Hong, S., Chen, X., Chen, P. R. Introducing bioorthogonal functionalities into proteins in living cells. Acc. Chem. Res. 44 (9), 742-751 (2011).
  20. Reddington, S. C., Tippmann, E. M., Jones, D. D. Residue choice defines efficiency and influence of bioorthogonal protein modification via genetically encoded strain promoted Click chemistry. Chem. Commun. 48 (9), 8419-8421 (2012).
  21. Chari, R. V. J., Miller, M. L., Widdison, W. C. Antibody-drug conjugates: an emerging concept in cancer therapy. Angew. Chem. Int. Ed. 53 (15), 3751-4005 (2014).
  22. Tsao, M., Tian, F., Schultz, P. G. Selective staudinger modification of proteins containing p-Azidophenylalanine. ChemBioChem. 6 (12), 2147-2149 (2005).
  23. Brustad, E. M., Lemke, E. A., Schultz, P. G., Deniz, A. A. A general and efficient method for the site-specific dual-labeling of proteins for single molecule fluorescence resonance energy transfer. J. Am. Chem. Soc. 130 (52), 17664-17665 (2008).
  24. Milles, S., et al. Click strategies for single-molecule protein fluorescence. J. Am. Chem. Soc. 134 (11), 5187-5195 (2012).
  25. Jang, S., Sachin, K., Lee, h. J., Kim, D. W., Lee, h. S. Development of a simple method for protein conjugation by copper-free click reaction and its application to antibody-free Western blot analysis. Bioconjug. Chem. 23 (11), 2256-2261 (2012).
  26. Kazane, S. A., et al. Self-assembled antibody multimers through peptide nucleic acid conjugation. J. Am. Chem. Soc. 135 (1), 340-346 (2012).
  27. Ko, W., et al. Efficient and site-specific antibody labeling by strain-promoted azide-alkyne cycloaddition. Bull. Korean Chem. Soc. 36 (9), 2352-2354 (2015).
  28. Young, T. S., Ahmad, I., Yin, J. A., Schultz, P. G. An enhanced system for unnatural amino acid mutagenesis in E. coli. J. Mol. Biol. 395 (2), 361-374 (2010).
  29. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72, 248-254 (1976).
  30. Cho, H. S., et al. Structure of the extracellular region of HER2 alone and in complex with the Herceptin Fab. Nature. 421 (6924), 756-760 (2003).
  31. Kolb, H. C., Finn, M. G., Sharpless, K. Click chemistry : Diverse chemical function from a few good reactions. Angew. Chem. Int. Ed. 40 (11), 2004-2021 (2001).
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Citer Cet Article
Kim, S., Ko, W., Park, H., Lee, H. S. Efficient and Site-specific Antibody Labeling by Strain-promoted Azide-alkyne Cycloaddition. J. Vis. Exp. (118), e54922, doi:10.3791/54922 (2016).

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