Problems in the processing of biological samples for scanning electron microscopy observation include cell collapse, treatment of samples from wet microenvironments and cell destruction. Low-cost and relatively rapid protocols suited for preparing challenging samples such as floral meristems, oomycete cysts, and fungi (Agaricales) are compiled and detailed here.
Vanlige problemer i behandling av biologiske prøver for observasjoner med scanning elektronmikroskop (SEM) innbefatter at celler faller sammen, behandling av prøver fra våte microenvironments og celle-ødeleggelse. Ved hjelp av små blomster vev, eggsporesopper cyster, og sopp sporer (Agaricales) som eksempler, spesifikke protokoller for å behandle ømfintlige prøvene er beskrevet her at overvinne noen av de viktigste utfordringene i prøvebehandling for bildeopptak under SEM.
Blomster meristemer fast med FAA (Formalin-Acetic-alkohol) og behandlet med Critical Point Dryer (CPD) ble ikke vist kollapset mobile vegger eller forvrengt organer. Disse resultatene er avgjørende for gjenoppbyggingen av floral utvikling. En lignende CPD-basert behandling av prøver fra våte mikromiljøer, slik som glutaraldehyd-fiks eggsporesopper cyster, er optimal for å teste den differensielle vekst av diagnostiske egenskaper (f.eks, cysten pigger) på forskjellige typer substrates. Ødeleggelse av sykepleier celler knyttet til sopp sporer ble unngått etter utvanning, dehydrering, og CPD behandling, et viktig skritt for videre funksjonelle studier av disse cellene.
Protokollene beskrevet her representerer lav pris og raske alternativer for erverv av bilder av god kvalitet for å rekonstruere vekstprosesser og for å studere diagnostiske egenskaper.
I biologi, har bruken av scanning elektronmikroskopi (SEM) er utvidet til studier av strukturell utvikling, sammenlignende morfologi, organutvikling, og karakterisering av populasjoner eller arter 1. Med sin to-dimensjonal visning av mikroskopiske strukturer, områder som micromorphology og systematikk profit SEM teknikk fremskritt siden andre halvdel av det 20. århundre. For eksempel, innføring av frese belegget metodikken i 1970 gjort mulig observasjoner av ømfintlige materialer som skyter toppunktene og blomster som forsterker avbildning av ikke-ledende vev 2, 3. SEM bruker elektroner kastet ut fra overflaten av prøven for å reprodusere topografien i en høy-vakuum miljø 4.
Studier med SEM er fokusert både i slutning av strukturelle tegn og gjenoppbygging av growth prosesser. Nye strukturelle tegn som er relevante for taksonomi og systematikk til et bredt spekter av organismer har blitt oppdaget fra SEM observasjoner. For eksempel plantetrekk brukes for arter diagnose eller supraspecific klassifikasjoner, for eksempel vestured groper av tre 5, stigma mangfold 6, nectary og floral morfologi 7, 8, trichome detaljer 9 og pollenkorn 10, 11, kan ikke være riktig visualiseres uten SEM. Vellykket observasjoner med konvensjonelle SEM har også oppnådd for lang tid formalinfikserte organismer 12 og plante herbarium eksemplarer 13.
På den annen side, studier av rekonstruksjon av vekstprosesser ved hjelp av SEM involverer et bredt spekter av emner, for eksempel organutvikling 14, infections forårsaket av bakterier 15, plante rot fysiologi 16, parasitt-vert festemekanismer 17, 18, narkotika effekter på parasitter 19, mycoparasitism og antibiosis 20, 21, vekst misdannelses 22, komparativ utvikling av ville og mutante personer 23, og hele livssykluser 24. Selv om miljø scanning elektronmikroskop (ESEM) 25 kan ha viktige fordeler for observasjon av våte biologiske prøver på vekstprosesser, kan sart materiale fremdeles bli svekket, selv i lav-vakuum-tilstand ESEM), og må behandles tilfredsstillende for å unngå tap av verdifulle morfologiske observasjon.
I denne utredningen, en gjennomgang av spesifikke protokoller for SEM observasjon av tre different typer prøver blir presentert: floral meristemer, Oomycetes (Saprolegnia), og soppmateriale. Disse protokollene kompilere opplevelsen av våre tidligere SEM-baserte studier 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, hvor spesifikke vansker og alternative løsninger har blitt funnet. I tilfelle av anlegget komparativ utviklingsmessige og strukturelle studier, bruk av SEM startet i 1970 34, 35, og siden da, oppdaget forskerne at visse floral funksjoner er mer labile enn tidligere antatt 36. Rekonstruksjon av floral utvikling innebærer fangst av alle stadier mellom unge blomster meristemer og anthesis. For å nå dette målet, er det essential at prøven topografi og celleveggen integritet ikke blir kompromittert etter fiksering og påfølgende dehydrering. Unge floral meristemer er spesielt utsatt for celleveggen kollaps (Tall 1a, 1b). Tilsvarende delikate strukturer som nectaries, petals, arr og sporangia krever effektive og undamaging protokoller. Denne anmeldelsen oppsummerer en optimal protokoll for å holde små og delikate vev intakt for SEM bildebehandling.
Når det gjelder de Oomycetes (Stramenopiles) -en av de mest varierte og utbredte grupper av parasitter, med verter som strekker seg fra mikrober og planter til virvelløse dyr og virveldyr 37 – det er sporer som vokser og utvikler seg i et vått miljø. Denne tilstanden er en utfordring for SEM observasjon fordi sporene trenger en tilstrekkelig underlag ikke egnet for standard SEM protokoller. Blant de Oomycetes, arter av Saprolegnia er av spesiell interesse fordi de can forårsake alvorlige reduksjoner i akvakulturer, fiskeri og amfibier populasjoner 38. Micromorphological egenskaper, for eksempel de krok pigger cyster, er blitt funnet å være nyttig for å identifisere arter av Saprolegnia, som er grunnleggende for å etablere infeksjon kontroller og potensielle behandlinger 39. Her er det en forsøksprotokoll for å sammenligne mønstre av ryggraden vekst av cyster på forskjellige substrater, og å manipulere prøve for kritiske punktet tørker (CPD) fremstilling og etterfølgende SEM observasjon.
I et tredje tilfelle, er det interessante funn som kom opp etter en inspeksjon av sporer av sopp Phellorinia herculanea f. lata f. nova (Agaricales) 31. Sammen med sporene, ble en gruppe av uventede barnehage celler identifisert under SEM. Med tidligere tradisjonelle protokoller og ubehandlet materiale, kom sykepleier celler out fullstendig kollapset (Figur 1c). Ytterligere slutninger om spesielle vev knyttet til sporene kan gjøres med enkle, men viktige endringer i standard tilnærminger beskrevet her (figur 1D).
I denne gjennomgangen, er det detaljerte SEM protokoller som kan brukes til å håndtere forskjellige problemer i forbindelse med SEM observasjon i angiosperms, Oomycetes, og Agaricales, slik som at celler faller sammen og krymping meristematic vev, ikke-optimal vekst av cyste pigger, og ødeleggelse av flyktige vev, henholdsvis.
Figur 1: Sammenligning av prøvene som er behandlet uten (a, c) og med (b, d) protokollen FAA-etanol-CPD. (A – b) Blomster knopper av Anacyclus clavatus, mid-utvikling. Bud behandles med osmiumtetroksid 46 </ sup> (a) og Bud behandles med FAA-CPD-protokollen (b). (C – d) Sykepleier celler med sporer av Phellorinia herculanea f. lata. Tørkede prøver uten noen behandling (c) og med den protokoll som er beskrevet her for Agaricales (d). Sporer i oransje. Scales: (ab) 100 mikrometer, (cd) 50 mikrometer. Bilder ble tatt av Y. Ruiz-León. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Med hensyn til standard SEM protokoller, prosedyrer som presenteres her inkluderer relativt rask, lett å følge, og rimelige metoder. Avhengig av hvor mye prøver og på enkel behandling, tar det fire til fem dager for å hente bilder av god kvalitet. Inkludert tilstrekkelige sikkerhetsregler for CPD og SEM drift, prosedyrene er lett å håndtere. Spesiell forsiktighet bør tas med formalin og glutaraldehyd (se trinn 1.1.1 til 1.1.3 og 2.1.5 i protokollen). Det er visse skritt der, hvis det er nødvendig, kan prosessen…
The authors have nothing to disclose.
Dette prosjektet har fått støtte fra EUs Horizon 2020 forsknings- og innovasjonsprogram i tilskuddsavtalen No. 634429. Denne publikasjonen reflekterer bare synet til forfatteren, og EU-kommisjonen kan ikke holdes ansvarlig for bruk som kan gjøres av informasjonen inneholdt deri. Vi erkjenner også den økonomiske bidraget fra Real Jardín Botánico, CSIC. SR er takknemlig overfor EU [ITN-Sapro-238550] for støtte av sin forskning i Saprolegnia. Vi ønsker også å takke Francisco Calonge for bes gi Phellorinia herculanea bilder og B. Pueyo for behandling av prøvene (figur 5). Alle bildene ble tatt av SEM tjenesten på Real Jardín Botánico-CSIC i Madrid.
Acetic acid | No specific supplier | Skin irritation, eye irritation | |
aluminium stubs | Ted Pella, Inc. | 16221 | www.tedpella.com |
Centrifuge tubes | No specific supplier | ||
Critical Point Dryer | Polaron Quatum Technologies | CPD7501 | |
D (+) Glucose | Merck | 1,083,421,000 | |
Double sided sellotape | No specific supplier | ||
Ethanol absolute | No specific supplier. | Flammable | |
European bacteriological agar | Conda | 1800.00 | www.condalab.com |
Filter paper | No specific supplier | ||
Forceps | No specific supplier | ||
Formalin 4% | No specific supplier. | Harmful, acute toxicity, skin sensitisation, carcinogenicity. Flammable | |
Glass cover slips | No specific supplier | ||
Glass hermetic container | No specific supplier | ||
Glutaraldehyde 25% DC 253857.1611 (L) | Dismadel S.L. | 3336 | www.dismadel.com |
Mycological peptone | Conda | 1922.00 | www.condalab.com |
needles | No specific supplier | ||
Petri dishes | No specific supplier | ||
Plastic containers | No specific supplier | ||
Sample holder with lid for the critical point dryer | Ted Pella, Inc. | 4591 | www.tedpella.com |
scalpels | No specific supplier | ||
Scanning Electron Microscope | Hitachi | S3000N | |
Software for SEM | |||
Solution A: NaH2PO4 | |||
Solution B: Na2HPO4 | |||
Specimen holders | No specific supplier | ||
Sputter coater | Balzers | SCD 004 | |
Stereomicroscope | No specific supplier | ||
Transmission Electron Microscope (TEM) grids | Electron Microscopy Sciences | G200 (Square Mesh) | www.emsdiassum.com |
Tweezers | No specific supplier |