Summary

Skanning elektronmikroskopi (SEM) Protokoller for Problema Plant, eggsporesopper, og Fungal Samples

Published: February 03, 2017
doi:

Summary

Problems in the processing of biological samples for scanning electron microscopy observation include cell collapse, treatment of samples from wet microenvironments and cell destruction. Low-cost and relatively rapid protocols suited for preparing challenging samples such as floral meristems, oomycete cysts, and fungi (Agaricales) are compiled and detailed here.

Abstract

Vanlige problemer i behandling av biologiske prøver for observasjoner med scanning elektronmikroskop (SEM) innbefatter at celler faller sammen, behandling av prøver fra våte microenvironments og celle-ødeleggelse. Ved hjelp av små blomster vev, eggsporesopper cyster, og sopp sporer (Agaricales) som eksempler, spesifikke protokoller for å behandle ømfintlige prøvene er beskrevet her at overvinne noen av de viktigste utfordringene i prøvebehandling for bildeopptak under SEM.

Blomster meristemer fast med FAA (Formalin-Acetic-alkohol) og behandlet med Critical Point Dryer (CPD) ble ikke vist kollapset mobile vegger eller forvrengt organer. Disse resultatene er avgjørende for gjenoppbyggingen av floral utvikling. En lignende CPD-basert behandling av prøver fra våte mikromiljøer, slik som glutaraldehyd-fiks eggsporesopper cyster, er optimal for å teste den differensielle vekst av diagnostiske egenskaper (f.eks, cysten pigger) på forskjellige typer substrates. Ødeleggelse av sykepleier celler knyttet til sopp sporer ble unngått etter utvanning, dehydrering, og CPD behandling, et viktig skritt for videre funksjonelle studier av disse cellene.

Protokollene beskrevet her representerer lav pris og raske alternativer for erverv av bilder av god kvalitet for å rekonstruere vekstprosesser og for å studere diagnostiske egenskaper.

Introduction

I biologi, har bruken av scanning elektronmikroskopi (SEM) er utvidet til studier av strukturell utvikling, sammenlignende morfologi, organutvikling, og karakterisering av populasjoner eller arter 1. Med sin to-dimensjonal visning av mikroskopiske strukturer, områder som micromorphology og systematikk profit SEM teknikk fremskritt siden andre halvdel av det 20. århundre. For eksempel, innføring av frese belegget metodikken i 1970 gjort mulig observasjoner av ømfintlige materialer som skyter toppunktene og blomster som forsterker avbildning av ikke-ledende vev 2, 3. SEM bruker elektroner kastet ut fra overflaten av prøven for å reprodusere topografien i en høy-vakuum miljø 4.

Studier med SEM er fokusert både i slutning av strukturelle tegn og gjenoppbygging av growth prosesser. Nye strukturelle tegn som er relevante for taksonomi og systematikk til et bredt spekter av organismer har blitt oppdaget fra SEM observasjoner. For eksempel plantetrekk brukes for arter diagnose eller supraspecific klassifikasjoner, for eksempel vestured groper av tre 5, stigma mangfold 6, nectary og floral morfologi 7, 8, trichome detaljer 9 og pollenkorn 10, 11, kan ikke være riktig visualiseres uten SEM. Vellykket observasjoner med konvensjonelle SEM har også oppnådd for lang tid formalinfikserte organismer 12 og plante herbarium eksemplarer 13.

På den annen side, studier av rekonstruksjon av vekstprosesser ved hjelp av SEM involverer et bredt spekter av emner, for eksempel organutvikling 14, infections forårsaket av bakterier 15, plante rot fysiologi 16, parasitt-vert festemekanismer 17, 18, narkotika effekter på parasitter 19, mycoparasitism og antibiosis 20, 21, vekst misdannelses 22, komparativ utvikling av ville og mutante personer 23, og hele livssykluser 24. Selv om miljø scanning elektronmikroskop (ESEM) 25 kan ha viktige fordeler for observasjon av våte biologiske prøver på vekstprosesser, kan sart materiale fremdeles bli svekket, selv i lav-vakuum-tilstand ESEM), og må behandles tilfredsstillende for å unngå tap av verdifulle morfologiske observasjon.

I denne utredningen, en gjennomgang av spesifikke protokoller for SEM observasjon av tre different typer prøver blir presentert: floral meristemer, Oomycetes (Saprolegnia), og soppmateriale. Disse protokollene kompilere opplevelsen av våre tidligere SEM-baserte studier 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, hvor spesifikke vansker og alternative løsninger har blitt funnet. I tilfelle av anlegget komparativ utviklingsmessige og strukturelle studier, bruk av SEM startet i 1970 34, 35, og siden da, oppdaget forskerne at visse floral funksjoner er mer labile enn tidligere antatt 36. Rekonstruksjon av floral utvikling innebærer fangst av alle stadier mellom unge blomster meristemer og anthesis. For å nå dette målet, er det essential at prøven topografi og celleveggen integritet ikke blir kompromittert etter fiksering og påfølgende dehydrering. Unge floral meristemer er spesielt utsatt for celleveggen kollaps (Tall 1a, 1b). Tilsvarende delikate strukturer som nectaries, petals, arr og sporangia krever effektive og undamaging protokoller. Denne anmeldelsen oppsummerer en optimal protokoll for å holde små og delikate vev intakt for SEM bildebehandling.

Når det gjelder de Oomycetes (Stramenopiles) -en av de mest varierte og utbredte grupper av parasitter, med verter som strekker seg fra mikrober og planter til virvelløse dyr og virveldyr 37 – det er sporer som vokser og utvikler seg i et vått miljø. Denne tilstanden er en utfordring for SEM observasjon fordi sporene trenger en tilstrekkelig underlag ikke egnet for standard SEM protokoller. Blant de Oomycetes, arter av Saprolegnia er av spesiell interesse fordi de can forårsake alvorlige reduksjoner i akvakulturer, fiskeri og amfibier populasjoner 38. Micromorphological egenskaper, for eksempel de krok pigger cyster, er blitt funnet å være nyttig for å identifisere arter av Saprolegnia, som er grunnleggende for å etablere infeksjon kontroller og potensielle behandlinger 39. Her er det en forsøksprotokoll for å sammenligne mønstre av ryggraden vekst av cyster på forskjellige substrater, og å manipulere prøve for kritiske punktet tørker (CPD) fremstilling og etterfølgende SEM observasjon.

I et tredje tilfelle, er det interessante funn som kom opp etter en inspeksjon av sporer av sopp Phellorinia herculanea f. lata f. nova (Agaricales) 31. Sammen med sporene, ble en gruppe av uventede barnehage celler identifisert under SEM. Med tidligere tradisjonelle protokoller og ubehandlet materiale, kom sykepleier celler out fullstendig kollapset (Figur 1c). Ytterligere slutninger om spesielle vev knyttet til sporene kan gjøres med enkle, men viktige endringer i standard tilnærminger beskrevet her (figur 1D).

I denne gjennomgangen, er det detaljerte SEM protokoller som kan brukes til å håndtere forskjellige problemer i forbindelse med SEM observasjon i angiosperms, Oomycetes, og Agaricales, slik som at celler faller sammen og krymping meristematic vev, ikke-optimal vekst av cyste pigger, og ødeleggelse av flyktige vev, henholdsvis.

Figur 1
Figur 1: Sammenligning av prøvene som er behandlet uten (a, c) og med (b, d) protokollen FAA-etanol-CPD. (Ab) Blomster knopper av Anacyclus clavatus, mid-utvikling. Bud behandles med osmiumtetroksid 46 </ sup> (a) og Bud behandles med FAA-CPD-protokollen (b). (Cd) Sykepleier celler med sporer av Phellorinia herculanea f. lata. Tørkede prøver uten noen behandling (c) og med den protokoll som er beskrevet her for Agaricales (d). Sporer i oransje. Scales: (ab) 100 mikrometer, (cd) 50 mikrometer. Bilder ble tatt av Y. Ruiz-León. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Protocol

MERK: Denne protokollen omfatter seks hoveddeler, tre viet til bestemte organismer (§§ 1-3), og tre som beskriver prosedyrer som er felles for alle (4-6). Stjerne (*) indikerer trinn modifisert av forskere. 1. Studier av Utvikling og fullt dannet anleggsstruktur Innsamling og fiksering Dersom plantematerialet samles på et sted uten tilgang til et avtrekksskap, og innføre dyppe materialet i 70% etanol i sentrifugerør. Ideelt dyppe materialet etter 48 …

Representative Results

Blomster Utvikling og Fiksering av Utvikling og fullt dannet anleggsstruktur Bruke FAA-CPD-protokollen er beskrevet her, er unge og modne plantevev optimalt fast og dehydrert for SEM bildebehandling. Prosesser som blomsterutvikling kan rekonstrueres fordi topografi og formen av knopper ikke blir forvrengt av celle krymping (fig 1b, 1d, 4a-f). Strukturer med komplekse former kan med hell belagt med et jevnt lag a…

Discussion

Med hensyn til standard SEM protokoller, prosedyrer som presenteres her inkluderer relativt rask, lett å følge, og rimelige metoder. Avhengig av hvor mye prøver og på enkel behandling, tar det fire til fem dager for å hente bilder av god kvalitet. Inkludert tilstrekkelige sikkerhetsregler for CPD og SEM drift, prosedyrene er lett å håndtere. Spesiell forsiktighet bør tas med formalin og glutaraldehyd (se trinn 1.1.1 til 1.1.3 og 2.1.5 i protokollen). Det er visse skritt der, hvis det er nødvendig, kan prosessen…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette prosjektet har fått støtte fra EUs Horizon 2020 forsknings- og innovasjonsprogram i tilskuddsavtalen No. 634429. Denne publikasjonen reflekterer bare synet til forfatteren, og EU-kommisjonen kan ikke holdes ansvarlig for bruk som kan gjøres av informasjonen inneholdt deri. Vi erkjenner også den økonomiske bidraget fra Real Jardín Botánico, CSIC. SR er takknemlig overfor EU [ITN-Sapro-238550] for støtte av sin forskning i Saprolegnia. Vi ønsker også å takke Francisco Calonge for bes gi Phellorinia herculanea bilder og B. Pueyo for behandling av prøvene (figur 5). Alle bildene ble tatt av SEM tjenesten på Real Jardín Botánico-CSIC i Madrid.

Materials

Acetic acid No specific supplier Skin irritation, eye irritation
aluminium stubs Ted Pella, Inc. 16221 www.tedpella.com
Centrifuge tubes No specific supplier
Critical Point Dryer Polaron Quatum Technologies CPD7501
D (+) Glucose Merck 1,083,421,000
Double sided sellotape No specific supplier
Ethanol absolute No specific supplier. Flammable
European bacteriological agar Conda 1800.00 www.condalab.com
Filter paper No specific supplier
Forceps No specific supplier
Formalin 4% No specific supplier. Harmful, acute toxicity, skin sensitisation, carcinogenicity. Flammable
Glass cover slips No specific supplier
Glass hermetic container  No specific supplier
Glutaraldehyde 25% DC 253857.1611  (L) Dismadel S.L. 3336 www.dismadel.com
Mycological peptone Conda 1922.00 www.condalab.com
needles No specific supplier
Petri dishes No specific supplier
Plastic containers No specific supplier
Sample holder with lid  for the critical point dryer  Ted Pella, Inc. 4591 www.tedpella.com
scalpels No specific supplier
Scanning Electron Microscope Hitachi S3000N
Software for SEM
Solution A: NaH2PO4
Solution B: Na2HPO4
Specimen holders No specific supplier
Sputter coater Balzers SCD 004
Stereomicroscope No specific supplier
Transmission Electron Microscope (TEM) grids Electron Microscopy Sciences G200 (Square Mesh) www.emsdiassum.com
Tweezers No specific supplier

References

  1. Endress, P. K., Baas, P., Gregory, M. Systematic plant morphology and anatomy: 50 years of progress. Taxon. 49 (3), 401-434 (2000).
  2. Falk, R. H., Gifford, E. M., Cutter, E. G. Scanning electron microscopy of developing plant organs. Science. 168 (3938), 1471-1474 (1970).
  3. Damblon, F. Sputtering, a new method of coating pollen grains in scanning electron microscopy. Grana. 15 (3), 137-144 (1975).
  4. Everhart, T. E., Thornley, R. F. M. Wide-band detector for micro-microampere low-energy electron currents. J. Sci. Instrum. 37 (7), 37246-37248 (1960).
  5. Collins, S. P., et al. Advantages of environmental scanning electron microscopy in studies of microorganisms. Microsc. Res. Techniq. 25 (5-6), 398-405 (1993).
  6. Fannes, W., Vanhove, M. P. M., Huyse, T., Paladini, G. A scanning electron microscope technique for studying the sclerites of Cichlidogyrus. Parasitol. Res. 114 (5), 2031-2034 (2015).
  7. Erbar, C., Leins, P. Portioned pollen release and the syndromes of secondary pollen presentation in the Campanulales-Asterales complex. Flora. 190 (4), 323-338 (1995).
  8. Jansen, S., Smets, E., Baas, P. Vestures in woody plants: a review. IAWA Journal. 19 (4), 347-382 (1998).
  9. Bortolin Costa, M. F., et al. Stigma diversity in tropical legumes with considerations on stigma classification. Bot. Rev. 80 (1), 1-29 (2014).
  10. Almeida, O. J. G., Cota-Sánchez, J. H., Paoli, A. A. S. The systematic significance of floral morphology, nectaries, and nectar concentration in epiphytic cacti of tribes Hylocereeae and Rhipsalideae (Cactaceae). Perspect. Plant Ecol. 15 (5), 255-268 (2013).
  11. Konarska, A. Comparison of the structure of floral nectaries in two Euonymus L. species (Celastraceae). Protoplasma. 252 (3), 901-910 (2015).
  12. Giuliani, C., Maleci Bini, L. Insight into the structure and chemistry of glandular trichomes of Labiatae, with emphasis on subfamily Lamioideae. Plant Syst. Evol. 276 (3-4), 199-208 (2008).
  13. Li, K., Zheng, B., Wang, Y., Zhou, L. L.Breeding system and pollination biology of Paeonia delavayi (Paeoniaceae), an endangered plant in the Southwest of China. Pak. J. Bot. 46 (5), 1631-1642 (2014).
  14. García, L., Rivero, M., Droppelmann, F. Descripción morfológica y viabilidad del polen de Nothofagus nervosa (Nothofagaceae). Bosque. 36 (3), 487-496 (2015).
  15. Prenner, G., Klitgaard, B. B. Towards unlocking the deep nodes of Leguminosae: floral development and morphology of the enigmatic Duparquetia orchidacea (Leguminosae, Caesalpinioideae). Am. J. Bot. 95 (11), 1349-1365 (2008).
  16. Ratnayake, K., Joyce, D. C., Webb, R. I. A convenient sample preparation protocol for scanning electron microscope examination of xylem-occluding bacterial biofilm on cut flowers and foliage. Sci. Hortic-Amsterdam. 140 (1), 12-18 (2012).
  17. Çolak, G., Celalettin Baykul, M., Gürler, R., Çatak, E., Caner, N. Investigation of the effects of aluminium stress on some macro and micro-nutrient contents of the seedlings of Lycopersicon esculentum Mill. by using scanning electron microscope. Pak. J. Bot. 46 (1), 147-160 (2014).
  18. Arafa, S. Z. Scanning electron microscope observations on the monogenean parasite Paraquadriacanthus nasalis from the nasal cavities of the freshwater fish Clarias gariepinus in Egypt with a note on some surface features of its microhabitat. Parasitol. Res. 110 (5), 1687-1693 (2012).
  19. Uppalapatia, S. R., Kerwinb, J. L., Fujitac, Y. Epifluorescence and scanning electron microscopy of host-pathogen interactions between Pythium porphyrae (Peronosporales, Oomycota)and Porphyra yezoensis (Bangiales, Rhodophyta). Bot. Mar. 44 (2), 139-145 (2001).
  20. Meaney, M., Haughey, S., Brennan, G. P., Fairweather, I. A scanning electron microscope study on the route of entry of clorsulon into the liver fluke, Fasciola hepatica. Parasitol. Res. 95 (2), 117-128 (2005).
  21. Sundarasekar, J., Sahgal, G., Subramaniam, S. Anti-candida activity by Hymenocallis littoralis extracts for opportunistic oral and genital infection Candida albicans. Bangladesh J. Pharmacol. 7 (3), 211-216 (2012).
  22. Benhamou, N., Rey, P., Picard, K., Tirilly, Y. Ultrastructural and cytochemical aspects of the interaction between the mycoparasite Pythium oligandrum and soilborne plant pathogens. Phytopathology. 89 (6), 506-517 (1999).
  23. Singh, A., et al. First evidence of putrescine involvement in mitigating the floral malformation in mangoes: A scanning electron microscope study. Protoplasma. 251 (5), 1255-1261 (2014).
  24. Xiang, C., et al. Fine mapping of a palea defective 1 (pd1), a locus associated with palea and stamen development in rice. Plant Cell Rep. 34 (12), 2151-2159 (2015).
  25. Mendoza, L., Hernandez, F., Ajello, L. Life cycle of the human and animal oomycete pathogen Pythium insidiosum. J. Clin. Microbiol. 31 (11), 2967-2973 (1993).
  26. Bello, M. A., Rudall, P. J., González, F., Fernández, J. L. Floral morphology and development in Aragoa (Plantaginaceae) andrelated members of the order Lamiales. Int. J. Plant Sci. 165 (5), 723-738 (2004).
  27. Bello, M. A., Hawkins, J. A., Rudall, P. J. Floral morphology and development in Quillajaceae and Surianaceae (Fabales), the species-poor relatives of Leguminosae and Polygalaceae. Ann. Bot. 100 (4), 1491-1505 (2007).
  28. Bello, M. A., Hawkins, J. A., Rudall, P. J. Floral ontogeny in Polygalaceae and its bearing on the homologies of keeled flowers in Fabales. Int. J. Plant Sci. 171 (5), 482-498 (2010).
  29. Bello, M. A., Alvarez, I., Torices, R., Fuertes-Aguilar, J. Floral development and evolution of capitulum structure in Anacyclus (Anthemideae, Asteraceae). Ann. Bot. 112 (8), 1597-1612 (2013).
  30. Bello, M. A., Martínez-Asperilla, A., Fuertes-Aguilar, J. Floral development of Lavatera trimestris and Malva hispanica reveals the nature of the epicalyx in the Malva generic alliance. Bot. J. Linn. Soc. 181 (1), 84-98 (2016).
  31. Calonge, F. D., Martínez, A. J., Falcó, I., Samper, L. E. Phellorinia herculanea f. stellata f. nova encontrada en España. Bol. Soc. Micol.Madrid. 35 (1), 65-70 (2011).
  32. Liu, Y., et al. Deciphering microbial landscapes of fish eggs to mitigate emerging diseases. ISME J. 8 (10), 2002-2014 (2014).
  33. Sandoval-Sierra, J. V., Diéguez-Uribeondo, J. A comprehensive protocol for improving the description of Saprolegniales (Oomycota): two practical examples (Saprolegnia aenigmatica sp. nov. and Saprolegnia racemosa sp. nov.). PLOS one. , (2015).
  34. Endress, P. K. Zur vergleichenden Entwicklungsmorphologie, Embryologie und Systematik bei Laurales. Bot. Jahrb. Syst. 92 (2), 331-428 (1972).
  35. Tucker, S. Floral development in Saururus cernuus (Saururaceae):1. Floral initiation and stamen development. Am. J. Bot. 62 (3), 993-1005 (1975).
  36. Endress, P. K., Matthews, M. L. Progress and problems in the assessment of flower morphology in higher-level systematics. Plant Syst. Evol. 298 (2), 257-276 (2012).
  37. Beakes, G. W., Glockling, S. L., Sekimoto, S. The evolutionary phylogeny of the oomycete "fungi&#34. Protoplasma. 249 (1), 3-19 (2012).
  38. Romansic, J. M., et al. Effects of the pathogenic water mold Saprolegnia ferax on survival of amphibian larvae. Dis. Aquat. Organ. 83 (3), 187-193 (2009).
  39. van West, P. Saprolegnia parasitica, an oomycete pathogen with a fishy appetite: new challengues for an old problem. Mycologist. 20 (3), 99-104 (2006).
  40. Johansen, D. A. . Plant microtechnique. , (1940).
  41. Unestam, T. Studies on the crayfish plague fungus Aphanomyces astaci. Some factors affecting growth in vitro. Physiol. Plantarum. 18 (2), 483-505 (1965).
  42. Cerenius, L., Söderhäll, K. Repeated zoospore emergence from isolated spore cysts of Aphanomyces astaci. Exp. Mycol. 8 (4), 370-377 (1984).
  43. Diéguez-Uribeondo, J., Cerenius, L., Söderhäll, K. Repeated zoospore emergence in Saprolegnia parasitica. Mycol. Res. 98 (7), 810-815 (1994).
  44. Söderhäll, K., Svensson, E., Unestam, T. Chitinase and protease activities in germinating zoospore cysts of a parasitic fungus, Aphanomyces astaci, Oomycetes. Mycopathologia. 64 (1), 9-11 (1978).
  45. Echlin, P. . Handbook of sample preparation for scanning electron microscopy and X-Ray Microanalysis. , (2009).
  46. Osumi, M., et al. Preparation for observation of fine structure of biological specimens by high-resolution SEM. Microscopy. 32 (4), 321-330 (1983).
  47. Rezinciuc, S. . The Saprolegniales morpho-molecular puzzle: an insight into markers identifying specific and subspecific levels in main parasites. , (2013).
check_url/fr/55031?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Bello, M. A., Ruiz-León, Y., Sandoval-Sierra, J. V., Rezinciuc, S., Diéguez-Uribeondo, J. Scanning Electron Microscopy (SEM) Protocols for Problematic Plant, Oomycete, and Fungal Samples. J. Vis. Exp. (120), e55031, doi:10.3791/55031 (2017).

View Video