Картирование участок связывания аптамер на АТФ Использование Microscale Термофорез

Summary

MicroScale Thermophoresis (MST) is a sensitive technology to characterize aptamer-target interactions. This manuscript describes an MST protocol to characterize aptamer-small molecule interactions.

Abstract

Characterization of molecular interactions in terms of basic binding parameters such as binding affinity, stoichiometry, and thermodynamics is an essential step in basic and applied science. MicroScale Thermophoresis (MST) is a sensitive biophysical method to obtain this important information. Relying on a physical effect called thermophoresis, which describes the movement of molecules through temperature gradients, this technology allows for the fast and precise determination of binding parameters in solution and allows the free choice of buffer conditions (from buffer to lysates/sera). MST uses the fact that an unbound molecule displays a different thermophoretic movement than a molecule that is in complex with a binding partner. The thermophoretic movement is altered in the moment of molecular interaction due to changes in size, charge, and hydration shell. By comparing the movement profiles of different molecular ratios of the two binding partners, quantitative information such as binding affinity (pM to mM) can be determined. Even challenging interactions between molecules of small sizes, such as aptamers and small compounds, can be studied by MST. Using the well-studied model interaction between the DH25.42 DNA aptamer and ATP, this manuscript provides a protocol to characterize aptamer-small molecule interactions. This study demonstrates that MST is highly sensitive and permits the mapping of the binding site of the 7.9 kDa DNA aptamer to the adenine of ATP.

Introduction

Взаимодействие между молекулами является основой природы. Таким образом, ученые во многих областях фундаментальных и прикладных исследований пытаются понять основные принципы молекулярных взаимодействий различных видов. Microscale Термофорез (MST) позволяет ученым осуществлять быстрый, точный, экономичный, и контроль качества характеристику молекулярных взаимодействий в растворе, со свободным выбором буферов. Есть уже более 1000 публикаций с использованием MST, с 2016 года в одиночку, описывая различные виды анализов, в том числе библиотеки скринингов, связывание валидаций событий, анализы конкуренции, а также эксперименты с несколькими партнерами связывания ^1-8. В общем, МСТ позволяет исследовать классических параметров связывания, такие как аффинность связывания (стр.м.в мМ), стехиометрии и термодинамики, любого вида молекулярного взаимодействия. Большим преимуществом MST является возможность изучения связывания событий независимо от размера партнеров взаимодействия. Даже чалlenging взаимодействия между малыми аптамеров нуклеиновых кислот (15-30 нт) и задачи, такие как небольшие молекулы, лекарственные средства, антибиотики или метаболиты могут быть определены количественно.

Текущее состояние-оф-современные технологии для характеристики аптамеров-мишени взаимодействия либо лабораторного интенсивной и очень сложной или не в состоянии количественно аптамеров-малая молекула взаимодействиях ^9,10. Поверхностного плазмонного резонанса (SPR) основе анализов ^11,12 и действительно этикетки свободные калориметрических подходы, такие как изотермической калориметрии (титрования ITC), ^13-15 изократическим элюирования ^16, равновесному инфильтрации ^17,18, рядный зондирования ^19, гелеобразные анализах сдвига, stopped- потока флуоресценции спектроскопии ^20,21, анизотропии флуоресценции (FA) ^22,23, одной молекулы флуоресценции изображений ^24,25 и Био-слой интерферометрии (BLI) ²⁶ также являются либо неточными или несовместим с аптамеров-небольшой молекулы взаимодействия. Другое principaл вопросы этих методов низкая чувствительность, высокое потребление пробы, иммобилизация, ограничение массовых перевозок на поверхностях, и / или ограничения буфера. Лишь немногие из этих технологий обеспечивают интегрированные средства управления для агрегации и адсорбции эффектов.

MST представляет собой мощный инструмент для ученых , чтобы преодолеть это ограничение для изучения взаимодействия между аптамеров и малыми молекулами ^27-29, а также другие цели , такие как белки ^30-33. Технология опирается на движение молекул через температурных градиентов. Это направленное движение, называемое "термофорезу," зависит от размера, заряда и гидратной оболочки молекулы ^34,35. Связывание лиганда с молекулой будет непосредственно изменять, по меньшей мере один из этих параметров, в результате чего в измененном термофоретического мобильности. Лиганды с малыми размерами не могут иметь значительное влияние с точки зрения изменения размера от несвязанного в связанном состоянии, но они могут иметь Др amatic воздействие на оболочку гидратации и / или заряда. Изменения в термофоретического движение молекул после взаимодействия с партнером по связыванию позволяет количественно оценить основные параметров связывания ^{2,7,34,36,37.}

Как показано на рисунке 1А, устройство МСТ состоит из инфракрасного лазера фокусировалось на образец в стеклянных капиллярах с использованием тех же оптических систем для флуоресцентной детекции. Термофоретическая движение белков с помощью собственной флуоресценции триптофанов ⁶ или флуоресцентно меченого партнерского взаимодействия ^3,8 можно отслеживать в то время как лазер создает температурный градиент (& Delta ; t 2-6 ° С). Полученная разность температур в пространстве, & Delta ; t, приводит к истощению или накопление молекул в области повышенной температуры, которая может быть определена количественно с помощью Соре коэффици- циент (С _Т):

г "/>

С _{горячей} представляет собой концентрацию в нагретой области, и с _{холодом} концентрация в начальной холодной области.

Как показано на фигуре 1В, типичный результаты эксперимента MST в профиле движения MST (время трассировки), состоящий из различных этапов, которые могут быть разделены с помощью их соответствующих временных рамок. Первоначальная измеряют флуоресценцию в первые 5 секунд в отсутствие градиента температуры, чтобы определить точную начальную флуоресценцию и для проверки наличия фотообесцвечиванию или photoenhancement. Скачок температуры (T-Jump) представляет собой фазу, в которой изменения флуоресценции до термофоретического движения. Это начальное снижение флуоресценции зависит от тепловых зависящих от изменений фл uorophore квантового выхода. Фаза термофорезу следует, в которых флуоресценция уменьшается (или увеличивается) в связи с термофоретического движения молекул вплоть до стационарного распределения достигается.Обратное TJump и сопутствующее назад диффузия фл uorescent молекул можно наблюдать , как показано на рисунке 1В после того, как лазер выключен. Для того, чтобы получить доступ к основным параметрам связывания, различные молярные отношения партнеров взаимодействия анализируются и сравниваются. Как правило, 16 различных соотношений изучаются в одном эксперименте MST, в то время как оптический видимый молекулы поддерживается постоянным и поставляется с увеличением количества немеченого лиганда. Взаимодействие между этими двумя связывающими партнерами вызывает изменения в ТФ, и , таким образом , в нормированной флуоресценции, F _норма, которая рассчитывается следующим образом :

F _{горячей} и _{холодной} F представляют собой усредненные интенсивности uorescence Fl на де определены моменты времени следов MST. Аффинности связывания (K _D или ₅₀ значений EC) можно рассчитать по CURVе фитинга (рис 1C).

В целом, MST является мощным инструментом для изучения молекулярных взаимодействий любого рода. Эта рукопись предлагает протокол характеризовать сложные взаимодействия между молекулой небольшой аденозинтрифосфата (АТФ, 0,5 кДа) и 25-нт короткий оцДНК аптамеров DH25.42 (7,9 кДа). В течение рукописи, сайт связывания аптамеров на молекулы АТФ отображается вплоть до аденин группы АТФ.

Protocol

1. Подготовка аптамеров рабочей запаса Следуйте инструкциям производителя и растворить олигонуклеотида (5-Cy5-ЦГКК GGGGAGTATTGCGGAGGAAGG-3, последовательность из ссылки 18) в воде, достигая конечной концентрации 100 мкМ. Подготовка аптамера рабочего раствора путем разбавления олиго…

Representative Results

В данном исследовании МСТ был применен для характеристики участок связывания аптамеров DH25.42 ДНК 18 на АТФ. В отличие от других исследований , характеризующих взаимодействие АТФ или АТФ-имитируя малых молекул с белками случайным образом помеченного одной или бол?…

Discussion

Контроль качества:

Неспецифические прилипание / адсорбции материала образца на поверхности, а также агрегации эффектов, оказывают серьезное влияние на качество данных сродством. Тем не менее, лишь немногие внедренный технологии обеспечивают точные и быстрые варианты ко…

Materials

Aptamer binding buffer			20 mM Tris pH7.6; 300 mM NaCl; 5 mM MgCl2; 0.01%Tween-20
Fluorescently labeled ATP aptamer	IDT, Leuven, Belgium		sequence: DH25.42 50-Cy5-CCTGGGGGAGT- ATTGCGGAGGAAGG-3
ATP	Sigma Aldrich, Germany	A2383	10 mM stock solutions stored at – 20 °C
ADP	Sigma Aldrich, Germany	A2754	10 mM stock solutions stored at – 20 °C
AMP	Sigma Aldrich, Germany	A2252	10 mM stock solutions stored at – 20 °C
Adenine	Sigma Aldrich, Germany	A8626	10 mM stock solutions stored at – 20 °C
SAM	Sigma Aldrich, Germany	A7007	10 mM stock solutions stored at – 20 °C
dATP	Sigma Aldrich, Germany	11934511001	10 mM stock solutions stored at – 20 °C
CTP	Sigma Aldrich, Germany	C1506	10 mM stock solutions stored at – 20 °C
GTP	Sigma Aldrich, Germany	G8877	10 mM stock solutions stored at – 20 °C
Monolith NT.115	NanoTemper Technologies, Munich, Germany	MO-G008	Blue/Red Channel MST device with standard detector, Monolith NT115 pico is MST device with high sensitivity detector
Monolith NT.115 capillaries Standard	NanoTemper Technologies, Munich, Germany	MO-K002
Eppendorf PCR tubes	Eppendorf, Germany	30124537
Monolith control software. 2.1.33, pre-installed on the device	NanoTemper Technologies, Munich, Germany
MO.affinity analysis v2.1.1	NanoTemper Technologies, Munich, Germany
Kaleidagraph 4.5.2	Synergy Software