Summary

ברחם Electroporation גישות לחקר רגישות של העצבית subpopulations וקישוריות תא יחיד

Published: February 15, 2017
doi:

Summary

כתב יד זה מספק פרוטוקולים המשתמשים ב electroporation ברחם (IUE) כדי לתאר את הקישוריות המבנית של נוירונים ברמת התא בודד ועל הרגישויות של נוירונים שכותרתו fluorescently. היסטולוגיה משמש כדי לאפיין הדנדריטים ותחזיות axonal. הקלטה כל התא פרוס חריפה משמשת לחקור רגישות.

Abstract

מערכת העצבים מורכבת של מגוון עצום של סוגי נוירונים ברורים. תת-אוכלוסיות נוירונים אלו מתאפיינות, בין שאר התכונות, מורפולוגיות הדנדריטים הנבדלות, דפוסים מסוימים שלהם של קישוריות אקסונלית, ותגובות ירי סלקטיווי שלהם. המנגנונים המולקולריים תאיים האחראים על היבטים אלה של בידול במהלך פיתוח עדיין הם הבינו היטב.

כאן אנו מתארים פרוטוקולים משולבים תיוג ואפיון הקישוריות המבנית הרגיש של נוירונים בקליפת המוח. שינוי של electroporation ברחם (IUE) הפרוטוקול מאפשר תיוג של אוכלוסייה דלילה של נוירונים. זה, בתורו, מאפשר זיהוי ומעקב של דנדריטים אקסונים של נוירונים בודדים, אפיון מדויק של מיקום למינרית של תחזיות axonal, וניתוח morphometric. IUE יכול לשמש גם כדי לחקור שינויים הרגישים שלWild-type (WT) או נוירונים מהונדסים גנטית על ידי שילוב עם הקלטה כל תא מן פרוסות חריפה של המוח electroporated. שתי טכניקות אלה תורמות להבנה טובה יותר של הצימוד של קישוריות מבנית ותפקודית ושל המנגנונים המולקולריים השולטים גיוון עצבי במהלך פיתוח. יש תהליכים התפתחותיים אלו השלכות חשובות על חיווט axonal, את המגוון הפונקציונלי של נוירונים, לבין הביולוגיה של פרעות קוגניטיביות.

Introduction

פיתוח המבנים דנדריטים אקסונלית הוא היבט חשוב של תקנה מעגלת במערכת העצבים, כולל בקליפת המוח. זה ממלא תפקיד חיוני במהלך החיווט סלקטיבית של תת-אוכלוסיות נוירונים המגוונות. מספר דיווחים עדכניים הראו כי, בנוסף לקישוריות, המגוון המולקולרי של נוירונים משתקף רכישת מצבים מאוד ספציפיים של ירי. עם זאת, המנגנונים לקביעת הרגישות והקישוריות של תת העצבית הברורה במהלך פיתוח, כמו גם מידת התיאום שלהם, הם עדיין לא ידועים ולא מובן 1, 2.

בשנת vivo loss- ולהשיג של פונקצית המנתח לאפשר לחקר היחסים בין רמת הביטוי של גנים ספציפיים והשפיעו בפיתוח של המעגל. ברחם electroporation (IUE) היא טכניקה בשימוש נרחב ללמודהפונקציה של גן של עניין אוכלוסיות נוירונים ספציפיות כדי לחקור את הדפוסים הכוללים של הקישוריות שלהם. עם זאת, כדי לקבוע את המאפיינים המורפולוגיים של אקסונים דנדריטים בשכבות קליפת המוח בעכברים חיים, חיוני לתייג נוירונים בדלילות. מערכת רקומבינציה Cre בשילוב עם IUE יכול לשמש כדי לסמן אוכלוסייה דלילה של נוירונים בצפיפות נמוכה מספיק כדי לפתור את התחזיות נפלטות תאים בודדים של laminas קליפת המוח המזוהית. שיטה זו תוויות מספר מספיק של נוירונים לכל קליפה לקבל נתונים כמותיים לאחר הניתוח של מספרים סבירים של מוח electroporated (איור 1). כתב יד זה מציג שיטה לניתוח קנס כזה של קישוריות. הוא גם מציג אסטרטגיה דומה לנתח, בניסויים נפרדים, את התכונות החשמליות של נוירונים על ידי ביצוע הקלטות מהדק הנוכחי על חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) -electroporated תאים פרוסים קליפת מוח חריף. אלה הפרוtocols הם מגוונים וניתן להחיל את המחקר של הרגישות והקישוריות של נוירונים של חיות WT ו מהונדסות, וגם של נוירונים אשר הפסדים ורווחים של פונקציה הם הציגו על ידי פלסמידים נוספים במהלך IUE.

למרות בפרוטוקול זה מתאר את electroporation של עכברים ביום עובריים (E) 15.5, טכניקה זו יכולה להתבצע בכל גיל בין 3 E9.5 ויום לאחר הלידה (P) 2 4. בעוד electroporation ב מוקדם בשלבי מטרות נוירונים ומבשרים בתלמוס רבדים עמוקים של קליפת המוח, הנמצאים בשלבים סימני electroporation בשכבות שטחיות יותר (למשל, שכבת מטרות E15.5 IUE II-III נוירונים). לסיכום, השילוב של IUE עם ניתוח מורפולוגי תא בודד ו אלקטרופיזיולוגיה הוא כלי שימושי כדי להבהיר את המנגנונים המולקולריים שבבסיס המגוון מבני ותפקודי העצום של נוירונים במערכת העצבים.

Protocol

הנהלים כל חיה אושרו על ידי הקהילה של טיפול בבעלי חיים מדריד ועדת שימוש, בהתאם לחקיקה הלאומית האירופי (118/14 PROEX; PROEX 331/15). לשמור על תנאים סטריליים במהלך ההליך. 1. ברחם Electroporation הערה: פרוטוקול זה …

Representative Results

כדי לאפיין את השינויים המורפולוגיים של נוירונים בפירוט וברחבי פיתוח, חיוני לתייג נוירונים בדלילות. מערכת Cre-recombinase בדילול מאפשרת את הביטוי של גן של עניין אוכלוסייה דלילה של נוירונים, כך שרק נוירונים אלה המשלבים אנזים זה להביע GFP (איור 1 א). בא…

Discussion

פרוטוקול זה מתאר בפירוט כיצד לתייג נוירונים של הקליפה החושית של עכברי C75BL / 6 כדי לנתח הקישוריות שלהם הרגישה שלהם. עם כל כבוד לשיטות קיימות, היא מדמיין היבטים להפלות של קישוריות, כגון מספר הסניפים אקסונלית לכל נוירון, הטופוגרפיה המדויקת שלהם, ואת המיקום האנטומי שלהם. ע?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים ר 'גוטיירז וא מוראלס לקבלת הסיוע הטכני המעולה שלהם ללוס אנג'לס וייס לעריכה. CGB ממומן על ידי דואר ספרדית Ministerio דה Ciencia Innovacion (MICINN), FPI-BES-2,012-056,011. עבודה זו מומנה על ידי מענק מטעם BBVA קרן SAF2014-58598-JIN (MINECO) למ 'Navarrete ועל ידי מענק מטעם רמון Areces קרן ומענקים SAF2014-52119-R ו- BFU2014-55738-REDT (מ MINECO) כדי מ Nieto.

Materials

pCAG-Cre Addgene 13775
pCALNL-GFP Addgene 13770
pCAG-DsRed2 Addgene 15777
pCAG-GFP Addgene 11150
Fast Green Carl Roth 301.1
EndoFree Plasmid Maxi Kit QIAGEN 12362
Carprofen (Rimadyl) Pfizer GmbH 1615 ESP
Isoflurane (IsoFlo) Abbott (Esteve) 1385 ESP
Ketamine (Imalgene) Merial 2528-ESP
Xylazine (Xilagesic) Calier 0682-ESP
Povidone Iodine Meda 694109.6
Eye Ointment (Lipolac) Angelini 65.277
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) Gibco by Life Technologies 24020-091
Penicillin-Streptomycin Sigma -Aldrich P4333
Scalpel Handle #3 – 12cm Fine Science Tools 10003-12
Scalpel Blades #10 Fine Science Tools 10010-00
Adson Forceps-Serrated – Straight 12 cm Fine Science Tools 1106-12
Hardened Fine Scissors – Straight   11 cm Fine Science Tools 14090-11
Scissors Mezenbaum-Nelson Curved L=14,5cm Teleflex PO143281
Thin curved tips – Style 7 Dumoxel Dumont 0303-7-PO
Dumont #5 Forceps-Inox Fine Science Tools 11251-20
Mathieu Needle Holder – Serrated Fine Science Tools 12010-14
AutoClip Applier Braintree scientific, Inc ACS APL
9mm AutoClips MikRon Precision, Inc. 205016
Sutures – Polysorb 6-0 Covidien UL-101
Electric Razor  Panasonic ER 240
Borosilicate glass capillaries (100mm, 1.0/0.58 Outer/Inner diameter) Wold Precision Instrument Inc. 1B100F-4
Aspirator tube assemblies for calibrated microcapillary pipettes Sigma -Aldrich A5177-5EA
Gauze (Aposan) Laboratorios Indas, S.A.U. C.N. 482232.8
Cotton Swabs (Star Cott) Albasa
Needle 25G (BD Microlance 3) Becton, Dickinson and Company 300600
Sucrose Sigma -Aldrich S0389
Paraformaldehyde Sigma -Aldrich 158127
OCT Compound Sakura 4583
Tissue Culture Dish 100 x 20 mm Falcon 353003
GFP Tag Polyclonal Antibody Thermo Fisher Scientific A-11122
Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 conjugate Thermo Fisher Scientific A-11008
DAPI Sigma-Aldrich D9542 
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific 10270106 
Triton X-100 Sigma-Aldrich X100-500ML
Electroporator ECM 830  BTX Harvard Apparatus 45-0002
Platinum electrodes 650P 7 mm Nepagene CUY650P7
Microscope for Fluorescent Imaging – MZ10F Leica
VIP 3000 Isofluorane Vaporizer Matrx
TCS-SP5 Laser Scanning System Leica
Axiovert 200 Microscope Zeiss
Cryostat – CM 1950 Leica
P-97 Micropette Puller Sutter Instrument Company P-97
Patch clamp analysis softwarw (p-Clamp Clampfit 10.3) Molecular Devices
Acquisition software (MultiClamp 700B Amplifier) Molecular Devices DD1440A
Motorized Micromanipulator + Rotating Base  Sutter Instrument MP-225
Air Table Newport
Miniature Peristaltic Pumps WPI

References

  1. Dehorter, N., et al. Tuning of fast-spiking interneuron properties by an activity-dependent transcriptional switch. Science. 349 (6253), 1216-1220 (2015).
  2. Rodriguez-Tornos, F. M., et al. Cux1 Enables Interhemispheric Connections of Layer II/III Neurons by Regulating Kv1-Dependent Firing. Neuron. 89 (3), 494-506 (2016).
  3. Matsui, A., Yoshida, A. C., Kubota, M., Ogawa, M., Shimogori, T. Mouse in utero electroporation: controlled spatiotemporal gene transfection. J Vis Exp. (54), (2011).
  4. Sonego, M., Zhou, Y., Oudin, M. J., Doherty, P., Lalli, G. In vivo postnatal electroporation and time-lapse imaging of neuroblast migration in mouse acute brain slices. J Vis Exp. (81), (2013).
  5. Baumgart, J., Baumgart, N. Cortex-, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-,Lateral Septal Nucleus- and Striatum-specific In Utero Electroporation in the C57BL/6 Mouse. J Vis Exp. (107), (2016).
  6. Petros, T. J., Rebsam, A., Mason, C. A. In utero and ex vivo electroporation for gene expression in mouse retinal ganglion cells. J Vis Exp. (31), (2009).
  7. Rice, H., Suth, S., Cavanaugh, W., Bai, J., Young-Pearse, T. L. In utero electroporation followed by primary neuronal culture for studying gene function in subset of cortical neurons. J Vis Exp. (44), (2010).
  8. Woodworth, M. B., et al. Ctip1 Regulates the Balance between Specification of Distinct Projection Neuron Subtypes in Deep Cortical Layers. Cell Rep. 15 (5), 999-1012 (2016).
  9. Wickersham, I. R., et al. Monosynaptic restriction of transsynaptic tracing from single, genetically targeted neurons. Neuron. 53 (5), 639-647 (2007).
  10. Matsuda, T., Cepko, C. L. Controlled expression of transgenes introduced by in vivo electroporation. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (3), 1027-1032 (2007).
  11. Matsuda, T., Cepko, C. L. Electroporation and RNA interference in the rodent retina in vivo and in vitro. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (1), 16-22 (2004).
  12. Saito, T. In vivo electroporation in the embryonic mouse central nervous system. Nat Protoc. 1 (3), 1552-1558 (2006).
  13. Bullmann, T., Arendt, T., Frey, U., Hanashima, C. A transportable, inexpensive electroporator for in utero electroporation. Dev Growth Differ. , (2015).
  14. Miller, M. Maturation of rat visual cortex. I. A quantitative study of Golgi-impregnated pyramidal neurons. J Neurocytol. 10 (5), 859-878 (1981).
  15. Miller, M., Peters, A. Maturation of rat visual cortex. II. A combined Golgi-electron microscope study of pyramidal neurons. J Comp Neurol. 203 (4), 555-573 (1981).
  16. Cubelos, B., et al. Cux-2 controls the proliferation of neuronal intermediate precursors of the cortical subventricular zone. Cereb Cortex. 18 (8), 1758-1770 (2008).
  17. Kang, J. Y., Kawaguchi, D., Wang, L. Optical Control of a Neuronal Protein Using a Genetically Encoded Unnatural Amino Acid in Neurons. J Vis Exp. (109), (2016).
  18. Mathis, D. M., Furman, J. L., Norris, C. M. Preparation of acute hippocampal slices from rats and transgenic mice for the study of synaptic alterations during aging and amyloid pathology. J Vis Exp. (49), (2011).
  19. Maravall, M., Stern, E. A., Svoboda, K. Development of intrinsic properties and excitability of layer 2/3 pyramidal neurons during a critical period for sensory maps in rat barrel cortex. J Neurophysiol. 92 (1), 144-156 (2004).
  20. Karadottir, R., Attwell, D. Combining patch-clamping of cells in brain slices with immunocytochemical labeling to define cell type and developmental stage. Nat Protoc. 1 (4), 1977-1986 (2006).
  21. Sakmann, B., Neher, E. Patch clamp techniques for studying ionic channels in excitable membranes. Annu Rev Physiol. 46, 455-472 (1984).
  22. Saito, T., Nakatsuji, N. Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation. Dev Biol. 240 (1), 237-246 (2001).
check_url/fr/55139?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Briz, C. G., Navarrete, M., Esteban, J. A., Nieto, M. In Utero Electroporation Approaches to Study the Excitability of Neuronal Subpopulations and Single-cell Connectivity. J. Vis. Exp. (120), e55139, doi:10.3791/55139 (2017).

View Video