Summary

Одновременное измерение митохондриальной кальция и митохондриальной мембраны Потенциал в живых клетках с помощью флуоресцентной микроскопии

Published: January 24, 2017
doi:

Summary

Митохондрии могут использовать электрохимический потенциал через их внутреннюю мембрану (Δ фт) секвестр кальция (Ca 2+), что позволяет им формировать цитозольного Ca 2+ сигналов внутри клетки. Мы опишем метод для одновременного измерения митохондрий поглощения Са 2+ и ΔΨ м в живых клетках с использованием флуоресцентных красителей и конфокальной микроскопии.

Abstract

Помимо своей важной роли в создании АТФ, митохондрии также выступать в качестве местного кальция (Ca 2+) буферы плотно регулировать концентрацию внутриклеточного Ca 2+. Для этого, митохондрии используют электрохимический потенциал через их внутреннюю мембрану (ΔΨ м) секвестр Ca 2+. Приток Са 2+ в митохондрии стимулирует три ограничения скорости дегидрогеназ цикла лимонной кислоты, увеличивая перенос электронов через окислительное фосфорилирование (OXPHOS) комплексов. Эта стимуляция поддерживает Аф м, что временно рассеиваемой как положительные ионы кальция пересекают внутренней мембраны митохондрий в митохондриях.

Здесь мы опишем метод одновременного измерения митохондрий поглощения Са 2+ и ΔΨ м в живых клетках с использованием конфокальной микроскопии. По permeabilizing клеток, митохондриальных Ca 2+ можетбыть измерена с использованием флуоресцентного Са 2+ индикатора Fluo-4, AM, с измерением разориен- м с использованием тетраметилродамин флуоресцентный краситель, метиловый эфир, перхлорат (TMRM). Преимущество этой системы состоит в том , что существует очень мало спектральное перекрытие между флуоресцентных красителей, что позволяет точно измерять митохондриального Са 2+ и Аф м одновременно. Используя последовательное добавление Ca 2+ аликвот, митохондриальная Ca 2+ поглощение можно контролировать, и концентрация , при которой Са 2+ индуцирует митохондриальной переход проницаемость мембран и потеря Аф м определяется.

Introduction

Митохондрии играют важную роль в регуляции внутриклеточной концентрации Са 2+, выступая в качестве местных Са2 + буферов 1. Ca 2+ поступает в митохондрии через унипорт Ca 2+, процесс , приводимый электрохимического градиента , который существует по всей внутренней митохондриальной мембране (ΔΨ м) 2. Оказавшись внутри митохондриях, Ca 2+ может активировать окислительного фосфорилирования, стимулируя три ограничения скорости дегидрогеназ цикла лимонной кислоты 3. Эта стимуляция поддерживает Аф м, что временно рассеиваемой как положительные ионы кальция пересекают внутренней мембраны митохондрий в митохондриях. Если концентрация Са 2+ в митохондриях становится очень высокой, митохондриальная переход проницаемость может быть инициирована, что приводит к распылению разориен- м, то cessatioп окислительного фосфорилирования и индукция гибели клеток путей 4 передачи сигналов.

Важная роль, которую играют митохондрии в пространственной буферизации клеточного кальция делает точный мониторинг митохондриального кальция критическим. Различные методы были созданы для мониторинга митохондриальную кальция, в том числе с использованием красителей на основе родамина. Одним из таких красителей, Rhod-2, АМ, весьма эффективен при разбиении на митохондрии для измерения уровней митохондриальных 5 Ca 2+, 6. Однако необходимо использовать в качестве какой-то краситель будет накапливаться в других органеллах, таких как липосомы, или остаются в цитозоле клетки. Тем не менее, ниже по течению анализы могут быть использованы , чтобы отличить эти сигналы от тех , из митохондрий 7.

Другой метод для мониторинга митохондриальную кальций использует флуоресцентные репортер строит 8 </s вверх>. Польза от этих генетически кодируемых зондов является то, что они могут быть конкретно направлены на митохондрии с помощью эндогенные N-концевых пептидов, например, сигнал с N-концевым адресности человеческого ЦОГ-субъединицы VIII. Эта система была использована для создания митохондриальный-мишенью акворина зонд , который оказался чрезвычайно полезным для исследования митохондриальной кальция сигнализации 9. Главный недостаток этих генетически кодируемых зондов является то, что они должны быть введены в клетки путем временной экспрессии (что не представляется возможным для некоторых типов клеток, и может производить различные результаты), либо путем создания стабильных систем экспрессии (что отнимает много времени).

Для того, чтобы обойти проблемы , описанные выше, мы разработали новый протокол для измерения митохондриальную Са 2+ и Аф м одновременно. Этот протокол основан на методе, описанном ранее, который добавляет экзогенного кальция в клетках пермеабилизированныхs = "Xref"> 10. Наш протокол имеет три основных преимущества по сравнению с другими способами: во – первых, мы используем Fluo-4, AM и TMRM для мониторинга митохондриальную Са 2+ и Аф м, два красителей , которые имеют очень разные спектральные свойства; Во- вторых, клетки проницаемыми , так что сигнал Fluo-4 только обнаружение митохондриальных Ca 2+ и Ca 2+ не локализованы в других органеллах , или в цитозоль клеток; и в- третьих, использование Fluo-4 для обнаружения митохондриальных Ca 2+ позволяет быстро и просто окрашивания клеток, отрицающий любые трансфекции клеток или трансформации проблемы , которые существуют при использовании генетически кодируемых зондов.

Protocol

1. Получение клеток Рост клеток на 10 см чашки для культивирования клеток или 75 см 2 колбах в культуральной среде [10 мл Дульбекко Модифицированные орлов Medium (DMEM) , дополненной 5% (об / об) фетальной бычьей сыворотки (FBS) и 1x пенициллина / стрептомицина (P / S )] при 37 ° C / 5% CO 2. …

Representative Results

Мы использовали этот протокол для изучения влияния мутации MT-ND5 на способность митохондрий клеток 143B в буфер возрастает кальция 12. В примере, показанном здесь, клетки 143В управления были загружены TMRM и Fluo-4, М., прежде чем пермеабилизации дигитонином. Ч?…

Discussion

Кальций играет важную роль во многих клеточных процессах, в том числе сокращение мышц, нервных клеток сигнализации и пролиферации клеток 13. Увеличение концентрации клеток кальция часто связаны с спроса на энергию, с кальцием , способного непосредственно стимулировать мит…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим д-ра Kirstin Elgass и д-р Сара Крида из Monash Micro Imaging, для оказания технической помощи, а также Wellcome Trust и Совет по медицинским исследованиям Великобритании за финансовую поддержку. MMcK поддерживается будущее стипендий схема австралийского совета по научным исследованиям (FT120100459), Бакланд Фонд Уильяма, Австралийский фонд митохондриального заболевания (AMDF), Института Хадсона медицинских исследований и Университета Монаша. Эта работа была поддержана Викторианский правительства Схемы операционной инфраструктуры поддержки.

Materials

Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) ThermoFisher 10566016
fetal bovine serum (FBS) ThermoFisher 16000044
1x phosphate buffered saline (PBS) ThermoFisher 10010023
100x penicillin/streptomycin (p/s) ThermoFisher 15140122
0.25% Trypsin / 0.25% EDTA ThermoFisher 25200056
8-well chambered coverslip ibidi 80826
NaCl Sigma-Aldrich 793566
KCl Sigma-Aldrich P9541 
MgSO4 Sigma-Aldrich 746452
KH2PO4 Sigma-Aldrich 795488
D-glucose Sigma-Aldrich G8270 
CaCl2 Sigma-Aldrich 746495
HEPES Sigma-Aldrich H3375 
MgCl2 Sigma-Aldrich M2670 
EGTA Sigma-Aldrich E4378 
HEDTA Sigma-Aldrich H8126 
malate Sigma-Aldrich M1000
glutamate Sigma-Aldrich G1626
ADP Sigma-Aldrich A5285
Ca2+ free Hank’s buffered salt solution (HBSS)  ThermoFisher 14175-095
tetramethylrhodamine, methyl ester, perchlorate (TMRM) ThermoFisher T668
Verapamil Sigma-Aldrich V4629
Fluo-4 acetoxymethyl ester (Fluo-4, AM) ThermoFisher F14201
dimethyl sulfoxide (DMSO) ThermoFisher D12345
carbonyl cyanide p-trifluoromethoxyphenylhydrazone (FCCP) Sigma-Aldrich C2920
digitonin Sigma-Aldrich D141
thapsigargin Sigma-Aldrich T9033
Pluronic F-127  ThermoFisher P3000MP 
hemacytometer VWR 631-0925
10 cm cell culture dishes Corning COR430167
75 cm2 cell culture flasks Corning COR430641

References

  1. Szabadkai, G., Duchen, M. R. Mitochondria: the hub of cellular Ca2+ signaling. Physiology. 23, 84-94 (2008).
  2. Jacobson, J., Duchen, M. R. Interplay between mitochondria and cellular calcium signalling. Mol. Cell. Biochem. 256-257, 209-218 (2004).
  3. Bhosale, G., Sharpe, J. A., Sundier, S. Y., Duchen, M. R. Calcium signaling as a mediator of cell energy demand and a trigger to cell. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1350, 107-116 (2015).
  4. Duchen, M. R. Mitochondria calcium-dependent neuronal death and neurodegenerative disease. Pflugers Arch. 464, 111-121 (2012).
  5. Drummond, R. M., Mix, T. C., Tuft, R. A., Walsh, J. V., Fay, F. S. Mitochondrial Ca2+ homeostasis during Ca2+ influx and Ca2+ release in gastric myocytes from Bufo marinus. J. Physiol. 522, 375-390 (2000).
  6. Hajnoczky, G., Robb-Gaspers, L. D., Seitz, M. B., Thomas, A. P. Decoding of cytosolic calcium oscillations in the mitochondria. Cell. 82, 415-424 (1995).
  7. Davidson, S. M., Duchen, M. R. Imaging mitochondrial calcium signalling with fluorescent probes and single or two photon confocal microscopy. Methods Mol. Biol. 810, 219-234 (2012).
  8. Pozzan, T., Rudolf, R. Measurements of mitochondrial calcium in vivo. Biochim. Biophys. Acta. 1787, 1317-1323 (2009).
  9. Rizzuto, R., Simpson, A. W., Brini, M., Pozzan, T. Rapid changes of mitochondrial Ca2+ revealed by specifically targeted recombinant aequorin. Nature. 358, 325-327 (1992).
  10. Pitter, J. G., Maechler, P., Wollheim, C. B., Spat, A. Mitochondria respond to Ca2+ already in the submicromolar range: correlation with redox state. Cell Calcium. 31, 97-104 (2002).
  11. Schoenmakers, T. J., Visser, G. J., Flik, G., Theuvenet, A. P. CHELATOR: an improved method for computing metal ion concentrations in physiological solutions. BioTechniques. 12, 870-879 (1992).
  12. McKenzie, M., Duchen, M. R. Impaired Cellular Bioenergetics Causes Mitochondrial Calcium Handling Defects in MT-ND5 Mutant Cybrids. PLoS One. 11, e0154371 (2016).
  13. Berridge, M. J., Lipp, P., Bootman, M. D. The versatility and universality of calcium signalling. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 1, 11-21 (2000).
  14. Homolya, L., Hollo, Z., Germann, U. A., Pastan, I., Gottesman, M. M., Sarkadi, B. Fluorescent cellular indicators are extruded by the multidrug resistance protein. J. Biol. Chem. 268, 21493-21496 (1993).
  15. Fujimoto, K., Chen, Y., Polonsky, K. S., Dorn, G. W. . 2. n. d. Targeting cyclophilin D and the mitochondrial permeability transition enhances beta-cell survival and prevents diabetes in Pdx1 deficiency. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 10214-10219 (2010).
  16. Rao, V. K., Carlson, E. A., Yan, S. S. Mitochondrial permeability transition pore is a potential drug target for neurodegeneration. Biochim. Biophys. Acta. 1842, 1267-1272 (2014).
check_url/fr/55166?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
McKenzie, M., Lim, S. C., Duchen, M. R. Simultaneous Measurement of Mitochondrial Calcium and Mitochondrial Membrane Potential in Live Cells by Fluorescent Microscopy. J. Vis. Exp. (119), e55166, doi:10.3791/55166 (2017).

View Video