Summary

Выделение эндотелиальных клеток-предшественников от здоровых добровольцев и их миграционном потенциал Под влиянием Образцы сыворотки после кардиохирургии

Published: February 14, 2017
doi:

Summary

Эндотелиальные клетки-предшественники (ЕРС) имеют решающее участие в неоваскуляризации ишемических тканей. Этот метод описывает выделение человека ЕРС из периферической крови, а также выявление их миграционного потенциала в отношении образцов сыворотки хирургических больных сердечными.

Abstract

Эндотелиальные клетки-предшественники (ЕРС) набираются из костного мозга при патологических состояниях, как гипоксии и в решающей степени участвуют в неоваскуляризации ишемических тканей. Происхождение, классификация и характеристика ЕРС являются сложными; Несмотря на это, два известных подтипов ЕРС были созданы: так называемые "ранние" ЕРС (впоследствии называют раннего EPCs) и поздним вырост ЕРС (позднего EPCs). Они могут быть классифицированы по биологическим свойствам, а также по их внешнему виду в процессе культивирования в лабораторных условиях . В то время как "ранние" ЕРС появляются в менее чем через неделю после того, как культуры периферических мононуклеарных клеток крови, полученных в ЕС конкретных средств массовой информации, в конце-отросток ЕРС можно найти через 2-3 недели. Поздний вырост ЕРС были признаны непосредственно участвовать в неоваскуляризации, в основном за счет их способности дифференцироваться в зрелые эндотелиальные клетки, в то время как "ранние" ЕРС выражают различные ангиогенные факторы, как эндогенныхOUs грузов для содействия ангиогенеза в паракринной образом. Во время ишемии миокарда / реперфузии (I / R), различные факторы управления хоминг ЕРС в регионах формирования кровеносных сосудов.

Макрофагами фактор ингибирования миграции (MIF) представляет собой хемокин подобный провоспалительных и повсеместно экспрессируется цитокин и недавно был описан функционировать в качестве ключевого регулятора миграции ЕРС при физиологических концентрациях 1. Интересно отметить , что MIF хранится в внутриклеточных пулов и может быстро высвобождаться в кровоток после нескольких раздражителей (например , инфаркт миокарда).
Этот протокол описан способ надежной изоляции и культуры раннего ЕРС от взрослых периферической крови человека на основе CD34-позитивной селекции с последующей культуры в среде , содержащей эндотелиальные факторы роста на покрытой фибронектином пластин для использования в ин витро миграции анализов против образцов сыворотки хирургических больных сердечными. Кроме того,мигрирующий влияние MIF на хемотаксис ЕРС по сравнению с другими известными ангиогенеза-стимулирующего цитокинов продемонстрирована.

Introduction

Эндотелиальные клетки – предшественники (ЕРС) циркулируют в крови человека и обладают способностью дифференцироваться в эндотелиальные клетки 2. Они участвуют в васкулогенезе и способны минимизировать повреждения , вызванные воспалением и ишемии / реперфузии (I / R) травм различными способами 3, 4. Например, ЕРС показывают повышенные уровни внутриклеточных антиоксидантных ферментов , таких как каталазы, глутатионпероксидазы или марганца супероксиддисмутаза (MnSOD) 5. Повышенная устойчивость к окислительному стрессу позволяет ЕРС функционировать в микросреды с повышенными активных форм кислорода (ROS) после ишемического повреждения 6. Предыдущие исследования также показали , что количество ЕРС может быть соотнесена с сосудистой ремонта и что снижается количество циркулирующих ЕРС предсказывает возникновение сердечно – сосудистых событий 7,класс = "Xref"> 8. Однако четкое определение EPC еще не найден. До сих пор нет никакой конкретной клеточной поверхности маркер или последовательным фенотип для ЕРС и эти клетки очень редки в периферической крови 9. У человека EPC следует рассматривать как циркулирующей клетки с возможностью способствовать восстановлению поврежденного эндотелия и новых сосудистых структур.

Один из способов выделения и характеризующий ЕРС через адгезию к фибронектина. Таким образом, пропускная способность этих клеток используется , чтобы показать превосходную адгезию с фибронектином посуду с покрытием по сравнению с 1 типа коллагена, например , 3, 10, 11. Тем не менее, другие обнаружили , что покрытие мононуклеаров на покрытой фибронектином блюда без предварительной или последующей стадии очистки приводит к колонии в том числе миелоидных клеток – предшественников, моноцитов и Т – лимфоцитов 12, 13, 14. К тому же , в этом случае, тромбоциты могут контаминировать мононуклеарных клеток (МНК) фракции и , таким образом , передача белков плазматической мембраны в каких – либо прилипшие клетки 15.

Помимо определения характеристик с помощью анализов адгезии в пробирке, сочетание различных маркеров клеточной поверхности используется для описания типа клеток рассматривается как EPC. В этом случае, после того, как фибронектин-опосредованной адгезии, клетки проанализированных в отношении их эндотелий как атрибуты. В этом процессе две эндотелиальных клеток-ассоциированных маркеров, липопротеин ацетилированный-низкой плотности (AcLDL) и сосудистый эндотелиальный фактор роста рецептора 2 (VEGFR-2, KDR), играют определенную роль. Эндотелиальные клетки и макрофаги было показано, в частности , занимают AcLDL в процессе , называемом "поглотитель клеток путь" 16. Другой маркер белок KDR в качестве основного рецептора VEGF на эндотелиальные17 клетки. Тем не менее, в качестве ЕРС в целом, культивируют в среде с эндотелиальными факторами роста и фетальной сыворотки теленка, то возможно, что макрофаги, которые, возможно, также были ошибочно изолированы, проявляют профиль маркера эндотелиальной типа. Как было показано ранее, если культивировали в эндотелиальной-кондиционированной среды, макрофаги экспресс "эндотелиальные специфические белки" 18.

В общем, есть две категории ЕРС в рамках более подтипов, которые могут быть найдены в крови или быть выращены в лабораторных условиях . Поздние-вырост ЕРС (позднего ЕРС) появляются через 2-3 недели культуры. Эти клетки интегрируются быстрее в монослой эндотелиальных клеток пупочной вены человека и могут образовывать капиллярные трубки 19. К тому же, так называемый "ранний-ЕРС" циркулируют в крови в течение приблизительно одной недели и действовать более пассивным способом посредством доставляющих ангиогенных молекул, таких, как сосудистый эндотелиальный ростфактор (VEGF), или CXCL8 19. У пациентов с ишемической болезнью сердца (ИБС) показали значительно меньшее количество раннего ЕРС по сравнению с контрольной группой без CAD 20. Интересно отметить, что та же группа исследователей показала более высокие количества позднемагматического ЕРС по сравнению с контрольной группой. Другое исследование показало , что раннее-ЕРС защитить дифференцированные ЕРС от апоптоза в окислительных условиях в паракринной образом 6. Таким образом, ранние ЕРС могли бы обеспечить соответствующие защитные эффекты через миграцию других клеток в авто- или паракринной образом в периферической крови.

Этот протокол описывает метод для очистки раннего ЕРС сначала выделением РВМС фракции из периферической крови человека , а затем выделения клеток CD34 + из РВМС фракции , чтобы очистить эту суспензию клеток от нежелательных клеток. CD34 представляет собой маркер, который используется для выделения человеческих гемопоэтических стволовых клеток 9 </sup>. Затем, CD34 + клетки культивировали на покрытой фибронектином поверхностей для культивирования тканей. Через три дня, среда изменяется, тем самым теряя все, не прилипшие клетки. И, наконец, изолированные ЕРС окрашивают, чтобы проверить поглощение AcLDL и присутствие KDR как эндотелиальные клетки-маркера с помощью флуоресцентной-Активированный сортировки клеток (FACS). В качестве дополнительного маркера, мы проанализировали тромбоцитов эндотелиальной молекулы клеточной адгезии (РЕСАМ-1, CD31), который также имеет место на эндотелиальных клетках.

Восстановление поврежденных или инфарктом миокарда ткани повышенной вербовке ЕРС относится к интенсивно изучаемых стратегий лечения в сердечно-сосудистых заболеваний. Тем не менее, перевод экспериментальных результатов в клиническую практику до сих пор сложной задачей, учитывая сложный клеточный взаимодействие в организме человека в процессе различных патофизиологических условиях. Кроме того, инфаркт I / травмы R вызывают чрезмерную секрецию различных цитокинов, гормонов и FAC роста торы, которые контролируют хоминг ЕРС в районы формирования кровеносных сосудов 13. Как уже было показано, CXCL8, стромальных клеток , полученных фактор 1α (SDF-1α, CXCL12), VEGF и фактор , ингибирующий миграцию макрофагов (MIF) значительно увеличены в образцах сыворотки после инфаркта I / R травмы 1. Среди этих факторов, MIF является плейотропных хемокин-цитокина с преимущественно провоспалительных характеристиками. В отличие от своего исторического названия, MIF имеет про-миграционные функции, действуя как истинный хемокина на различных типах клеток 1, 21, 22. MIF-опосредованные процессы подбора кадров клеток были связаны с рецепторов хемокинов CXCR2 и CXCR4, который MIF связывается и активирует в не родственным образом 21. Следует отметить, что ЕРС выражают оба этих рецепторов на их поверхности, что дополнительно становятся повышающей регуляции в условиях гипоксиипопка = "Xref"> 23, 24. Кроме того, накапливая данные свидетельствуют о том, что MIF имеет общую кардио-защитный эффект в течение I / R повреждения сердца 22, 25, 26. В этом контексте было далее показано , что MIF может поддерживать неоваскуляризации во время гипоксического стресса , что имеет особое значение при рассмотрении вопроса ограниченные механизмы восстановления травмированной миокарда 27. Предыдущие исследования в пробирке и эксперименты в доклинических моделях мышей при условии , первые свидетельства о роли MIF в ЕРС наборе 4. Следует отметить, что MIF также является видным грузовой белок ЕРС , которые могут быть освобождены в ходе ЕРС набора в пределах ишемических участков 28. Тем не менее, исследования в клинических условиях, в частности, по сравнению с другими (ангиогенеза) в сыворотке крови цитокинов остаются неуловимыми.

Protocol

Кровь для выделения ЕРС был получен от здоровых добровольцев после информированного согласия в соответствии с местным комитетом по этике. Образцы сыворотки, используемые в анализах миграции были получены от пациентов, которые перенесли обычную кардиохирургии с использованием искус?…

Representative Results

Характеристика изолированных эндотелиальных клеток-предшественников Во-первых, поглощение AcLDL верифицирован, а также выражение KDR, и CD31 на поверхности популяции клеток изолированной. Как показано на фиг.7А, 85,1% из выде…

Discussion

Первая часть этого исследования включали в себя изоляцию человека ЕРС из периферической крови здоровых добровольцев, чтобы дать всестороннюю оценку крови больных кардиохирургии. Таким образом, градиент плотности проводили центрифугирование для отделения фракции РВМС из плазмы, гра?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы не имеют никаких подтверждений.

Materials

Fibronectin Biochrom AG L7117 Coating of T-75 flasks
Aqua ad iniectabilia Fresenius Kabi
Endothelial cell growth medium MV2 Promo Cell C-22221
Endothelial cell growth medium MV2 SupplementMix Promo Cell C-39226
Ficoll-Paque plus GE Healthcare 17-1440-03 Density centrifugation
EasySep human CD34 positive Selection Kit Stemcell Technologies 18056 Isolation of CD34+ cells
EasySep magnet Stemcell Technologies 18000
Accutase Sigma-Aldrich A6964-100ML Detachment of cells
Corning HTS transwell 96 well permeable supports Sigma-Aldrich CLS3387-8EA Migration system
Hoechst solution ThermoFisher 33342 Staining of migrated cells
ImageJ National institutes of health xxx Counting of migrated cells

References

  1. Emontzpohl, C., et al. Key role of MIF in the migration of endothelial progenitor cells in patients during cardiac surgery. Int J Cardiol. 181C, 284-287 (2014).
  2. Smadja, D. M., et al. Interleukin 8 is differently expressed and modulated by PAR-1 activation in early and late endothelial progenitor cells. J Cell Mol Med. 13 (8B), 2534-2546 (2009).
  3. Asahara, T., et al. Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis. Science. 275 (5302), 964-967 (1997).
  4. Simons, D., et al. Hypoxia-induced endothelial secretion of macrophage migration inhibitory factor and role in endothelial progenitor cell recruitment. J Cell Mol Med. 15 (3), 668-678 (2011).
  5. Dernbach, E., et al. Antioxidative stress-associated genes in circulating progenitor cells: evidence for enhanced resistance against oxidative stress. Blood. 104 (12), 3591-3597 (2004).
  6. Yang, Z., et al. Paracrine factors secreted by endothelial progenitor cells prevent oxidative stress-induced apoptosis of mature endothelial cells. Atherosclerosis. 211 (1), 103-109 (2010).
  7. Asahara, T., Kawamoto, A., Masuda, H. Concise review: Circulating endothelial progenitor cells for vascular medicine. Stem Cells. 29 (11), 1650-1655 (2011).
  8. Schmidt-Lucke, C., et al. Reduced number of circulating endothelial progenitor cells predicts future cardiovascular events: proof of concept for the clinical importance of endogenous vascular repair. Circulation. 111 (22), 2981-2987 (2005).
  9. Yoder, M. C. Human endothelial progenitor cells. Cold Spring Harb Perspect Med. 2 (7), a006692 (2012).
  10. Ito, H., et al. Endothelial progenitor cells as putative targets for angiostatin. Cancer Res. 59 (23), 5875-5877 (1999).
  11. Hill, J. M., et al. Circulating endothelial progenitor cells, vascular function, and cardiovascular risk. N Engl J Med. 348 (7), 593-600 (2003).
  12. Yoder, M. C., et al. Redefining endothelial progenitor cells via clonal analysis and hematopoietic stem/progenitor cell principals. Blood. 109 (5), 1801-1809 (2007).
  13. Rohde, E., et al. Blood monocytes mimic endothelial progenitor cells. Stem Cells. 24 (2), 357-367 (2006).
  14. Rohde, E., et al. Immune cells mimic the morphology of endothelial progenitor colonies in vitro. Stem Cells. 25 (7), 1746-1752 (2007).
  15. Prokopi, M., et al. Proteomic analysis reveals presence of platelet microparticles in endothelial progenitor cell cultures. Blood. 114 (3), 723-732 (2009).
  16. Voyta, J. C., Via, D. P., Butterfield, C. E., Zetter, B. R. Identification and isolation of endothelial cells based on their increased uptake of acetylated-low density lipoprotein. J Cell Biol. 99 (6), 2034-2040 (1984).
  17. Koch, S., Claesson-Welsh, L. Signal transduction by vascular endothelial growth factor receptors. Cold Spring Harb Perspect Med. 2 (7), a006502 (2012).
  18. Hirschi, K. K., Ingram, D. A., Yoder, M. C. Assessing identity, phenotype, and fate of endothelial progenitor cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 28 (9), 1584-1595 (2008).
  19. Hur, J., et al. Characterization of two types of endothelial progenitor cells and their different contributions to neovasculogenesis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 24 (2), 288-293 (2004).
  20. Tagawa, S., et al. Determination of Early and Late Endothelial Progenitor Cells in Peripheral Circulation and Their Clinical Association with Coronary Artery Disease. Int J Vasc Med. , 2015 (2015).
  21. Bernhagen, J., et al. MIF is a noncognate ligand of CXC chemokine receptors in inflammatory and atherogenic cell recruitment. Nat Med. 13 (5), 587-596 (2007).
  22. Stoppe, C., et al. Interaction of MIF Family Proteins in Myocardial Ischemia/Reperfusion Damage and Their Influence on Clinical Outcome of Cardiac Surgery Patients. Antioxid Redox Signal. 23 (11), 865-879 (2015).
  23. Kanzler, I., et al. Differential roles of angiogenic chemokines in endothelial progenitor cell-induced angiogenesis. Basic Res Cardiol. 108 (1), 310 (2013).
  24. Walenta, K. L., Bettink, S., Bohm, M., Friedrich, E. B. Differential chemokine receptor expression regulates functional specialization of endothelial progenitor cell subpopulations. Basic Res Cardiol. 106 (2), 299-305 (2011).
  25. Rassaf, T., Weber, C., Bernhagen, J. Macrophage migration inhibitory factor in myocardial ischaemia/reperfusion injury. Cardiovasc Res. 102 (2), 321-328 (2014).
  26. Stoppe, C., et al. High postoperative blood levels of macrophage migration inhibitory factor are associated with less organ dysfunction in patients after cardiac surgery. Mol Med. 18, 843-850 (2012).
  27. Amin, M. A., et al. Migration inhibitory factor mediates angiogenesis via mitogen-activated protein kinase and phosphatidylinositol kinase. Circ Res. 93 (4), 321-329 (2003).
  28. Kupatt, C., et al. Embryonic endothelial progenitor cells expressing a broad range of proangiogenic and remodeling factors enhance vascularization and tissue recovery in acute and chronic ischemia. FASEB J. 19 (11), 1576-1578 (2005).
  29. Colotta, F., et al. Expression of a monocyte chemotactic cytokine by human mononuclear phagocytes. J Immunol. 148 (3), 760-765 (1992).
  30. Casale, T. B., Kaliner, M. A rapid method for isolation of human mononuclear cells free of significant platelet contamination. J Immunol Methods. 55 (3), 347-353 (1982).
  31. Lewandowska, K., Kaplan, D., Husel, W. CD34 expression on platelets. Platelets. 14 (2), 83-87 (2003).
  32. Stellos, K., et al. Platelet-derived stromal cell-derived factor-1 regulates adhesion and promotes differentiation of human CD34+ cells to endothelial progenitor cells. Circulation. 117 (2), 206-215 (2008).
  33. Thornton, M. A., Poncz, M. In vitro expansion of megakaryocytes from peripheral blood hematopoietic progenitors. Methods Mol Med. 31, 337-345 (1999).
  34. Ivetic, N., et al. Producing megakaryocytes from a human peripheral blood source. Transfusion. 56 (5), 1066-1074 (2016).
  35. Friedrich, E. B., Walenta, K., Scharlau, J., Nickenig, G., Werner, N. CD34-/CD133+/VEGFR-2+ endothelial progenitor cell subpopulation with potent vasoregenerative capacities. Circ Res. 98 (3), e20-e25 (2006).
  36. Wijelath, E. S., et al. Novel vascular endothelial growth factor binding domains of fibronectin enhance vascular endothelial growth factor biological activity. Circ Res. 91 (1), 25-31 (2002).
  37. Hulkower, K. I., Herber, R. L. Cell migration and invasion assays as tools for drug discovery. Pharmaceutics. 3 (1), 107-124 (2011).
  38. Yao, E. H., et al. Effects of the antioxidative beta-blocker celiprolol on endothelial progenitor cells in hypertensive rats. Am J Hypertens. 21 (9), 1062-1068 (2008).
  39. Takahashi, T., et al. Ischemia- and cytokine-induced mobilization of bone marrow-derived endothelial progenitor cells for neovascularization. Nat Med. 5 (4), 434-438 (1999).
  40. Kawamoto, A., et al. Therapeutic potential of ex vivo expanded endothelial progenitor cells for myocardial ischemia. Circulation. 103 (5), 634-637 (2001).
  41. Kim, B. S., et al. Myocardial Ischemia Induces SDF-1alpha Release in Cardiac Surgery Patients. J Cardiovasc Transl Res. 9 (3), 230-238 (2016).
  42. Frangogiannis, N. G., Smith, C. W., Entman, M. L. The inflammatory response in myocardial infarction. Cardiovasc Res. 53 (1), 31-47 (2002).
  43. Zernecke, A., Bernhagen, J., Weber, C. Macrophage migration inhibitory factor in cardiovascular disease. Circulation. 117 (12), 1594-1602 (2008).
  44. White, D. A., et al. Pro-inflammatory action of MIF in acute myocardial infarction via activation of peripheral blood mononuclear cells. PLoS One. 8 (10), e76206 (2013).
check_url/55192?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Emontzpohl, C., Simons, D., Kraemer, S., Goetzenich, A., Marx, G., Bernhagen, J., Stoppe, C. Isolation of Endothelial Progenitor Cells from Healthy Volunteers and Their Migratory Potential Influenced by Serum Samples After Cardiac Surgery. J. Vis. Exp. (120), e55192, doi:10.3791/55192 (2017).

View Video