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Intracellulaires Coloration et cytométrie de flux pour identifier lymphocytaires sous-ensembles au sein murin Aorte, Reins et les ganglions lymphatiques dans un modèle de l'hypertension

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DOI :

10.3791/55266

28 janvier 2017

Dans cet article

Résumé

Cet article fournit une méthodologie détaillée pour identifier et quantifier les sous-ensembles de lymphocytes T fonctionnels présents dans les ganglions rénaux murin, l'aorte et lymphatiques par coloration intracellulaire et cytométrie de flux. Le modèle de l'angiotensine II hypertension induite a été choisi pour expliquer, étape par étape, les procédures et les principes fondamentaux de la cytométrie de flux et de coloration intracellulaire.

Résumé

Il est maintenant bien connu que les lymphocytes T jouent un rôle essentiel dans le développement de plusieurs maladies cardiovasculaires1,2,3,4,5. Par exemple, des études de notre groupe ont montré que l’hypertension est associée à une accumulation excessive de lymphocytes T dans les vaisseaux et les reins lors du développement de l’hypertension expérimentale6. Une fois dans ces tissus, les lymphocytes T produisent plusieurs cytokines qui affectent à la fois la fonction vasculaire et rénale, entraînant une vasoconstriction et une rétention de sodium et d’eau1,2. Pour bien comprendre comment les lymphocytes T causent les maladies cardiovasculaires et rénales, il est important de pouvoir identifier et quantifier les sous-ensembles spécifiques de lymphocytes T présents dans ces tissus. Les sous-ensembles de lymphocytes T sont définis par une combinaison de marqueurs de surface, de cytokines qu’ils sécrètent et de facteurs de transcription qu’ils expriment. La complexité de la population de lymphocytes T fait de la cytométrie en flux et de la coloration intracellulaire une technique inestimable pour disséquer les phénotypes des lymphocytes présents dans les tissus. Ici, nous fournissons un protocole détaillé pour identifier les marqueurs de surface et intracellulaires (cytokines et facteurs de transcription) dans les cellules T isolées des reins, de l’aorte et des ganglions lymphatiques drainants aortiques murins dans un modèle d’hypertension induite par l’angiotensine II. Les étapes suivantes sont décrites en détail : isolement des tissus, génération des suspensions unicellulaires, stimulation ex vivo, fixation, perméabilisation et coloration. De plus, plusieurs principes fondamentaux des analyses cytométriques en flux, y compris le choix des contrôles appropriés et des stratégies de contrôle appropriées, sont abordés.

Introduction

Des données récentes démontrent que le système immunitaire adaptatif, en particulier les lymphocytes T jouent un rôle crucial dans le développement de plusieurs maladies cardiovasculaires 1,2,3,4,5. Par exemple, dans le modèle de l' angiotensine II , l' hypertension induite par une accumulation de lymphocytes T dans les vaisseaux et les reins de souris a été décrite 6. L'accumulation vasculaire est principalement dans l'adventice et la graisse périvasculaire. Dans le rein, les cellules T accumulent à la fois dans la moelle et le cortex rénal. Selon le type de sous - ensemble est en cause, ces cellules T donnent naissance à différ....

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Protocole

Comité des soins et l'utilisation institutionnelle des animaux de l'Université Vanderbilt a approuvé les procédures décrites ici. Les souris sont logés et soignés conformément au Guide pour les soins et l'utilisation des animaux de laboratoire (National Academies Press. Revised 2010).

1. Isolement de l'Aortic Vidange Adénopathies, Reins et Aorte de souris

  1. Euthanasier les souris par inhalation de CO 2. Pulvériser la poitrine avec 70% d'éthanol et ouvrir avec précaution la peau et la paroi thoracique avec des ciseaux pour exposer le cœur.
  2. Perfuser le système vasculaire, effectuer une petite incision dans l'....

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Résultats

Le protocole décrit permet l'identification de marqueurs de surface et intracellulaires dans les cellules T isolées de rein de souris, de l'aorte et de l'aorte ganglions lymphatiques drainant dans un modèle de l'angiotensine II, l'hypertension induite. Les résultats représentatifs sont présentés ci-dessous.

La figure 1 illustre la stratégie de portillonnage utilisé pour identifier la popula.......

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Discussion

Le protocole décrit dans le présent document a été optimisé pour identifier correctement les sous-ensembles de lymphocytes T présents dans les reins, l’aorte et les ganglions lymphatiques murins. Ce protocole peut être facilement adapté pour examiner d’autres sous-ensembles de cellules immunitaires telles que les lymphocytes B et les cellules immunitaires innées et peut être modifié pour inclure d’autres types de tissus. L’étape de digestion est critique et doit être modifiée et optimisée pour chaque tissu9. U.......

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Déclarations de divulgation

MSM est soutenu par une subvention de Gilead Sciences cardiovasculaires.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par un prix de l'American Heart Association Fellowship (16POST29950007) FL, une bourse de formation de la National Institutes of Health (NIH T32 HL069765) à BLD, un prix de l'Association Fellowship American Heart (14POST20420025) à MA Saleh, et une NIH K08 prix (HL121671) au MSM. MSM est également soutenu par une subvention de Gilead Sciences, Inc. recherche

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Collagénase DROCHE11088882001
Collagénase AROCHE10103586001
Collagénase BROCHE11088815001
DnaseROCHE10104159001
1x Tampon de lyse des globules rougeseBioscience00-4333-57
RPMI Medium 1614 1xGibco11835-030
DPBS sans calcium ni magnésiumGibco14190-144
PercollGE Healthcare17-5445-02Pour la centrifugation à gradient de densité
GentleMACS&trade ; Tube CMiltenyi Biotec130-096-334
Dispositif de dissociation GentleMACSMiltenyi Biotec130-093-235Utiliser le programme SPLEEN_04
Cocktail d’activation cellulaire (avec Brefeldin A)Biolegend423303
anti-CD16/32eBioscience14-0161-81diluer 1:100
LIVE/DEAD fixable violet dead cell stain kitLife TechnologiesL34955
Tampon de facteur de transcription BDPharmingen562725
OneComp eBeads  ;eBioscience01-1111-42
123 unités eBeadseBioscience01-1234-42
CD45 AmCyan (clone 30-F11)BioLegend103138
CD3 PerCP-Cy5.5 (clone 17A2)BioLegend100218
IL-17A FITC (clone TC11-18H10.1)BioLegend506910
IL-17F APC (clone 9D3.1C8)BioLegend
CD4 APC-Cy7 (clone GK1.5)BD Biosciences560181
CD8 APC (clone 53-67)eBioscience17-0081-82
T-bet PE-Cy7 (clone 4B10)BioLegend644823
IFN&gamma ; FITC (clone XMG1.2)BD Biosciences557724
517004

Références

  1. Saleh, M. A., McMaster, W. G., Wu, J., et al. Lymphocyte adaptor protein LNK deficiency exacerbates hypertension and end-organ inflammation. J Clin Invest. 125 (3), 1189-1202 (2015).
  2. Madhur, M. S., Lob, H. E., McCann, L. A., et al.

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Mots-clés

Ganglions lymphatiques r nauxmod le d hypertensionsuspension de cellules uniquesdigestion tissulairecentrifugation sur gradient de densitd tection des cytokines

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