Summary

En omfattende prosedyre for å evaluere<em> I Vivo</em> Utførelse av kreft Nanomedicines

Published: March 04, 2017
doi:

Summary

The poor understanding of the in vivo performance of nanomedicines stymies their clinical translation. Procedures to evaluate the in vivo behavior of cancer nanomedicines at systemic, tissue, single-cell, and subcellular levels in tumor-bearing immunocompetent mice are described here. This approach may help researchers to identify promising cancer nanomedicines for clinical translation.

Abstract

Inspirert av suksessen med tidligere kreft nanomedicines i klinikken, har forskere generert et stort antall nye formuleringer i det siste tiåret. Det er imidlertid bare et lite antall nanomedicines har blitt godkjent for klinisk anvendelse, mens de fleste av nanomedicines under klinisk utvikling har gitt skuffende resultater. En stor utfordring for en vellykket klinisk oversettelse av nye kreft nanomedicines er mangelen på en nøyaktig forståelse av deres in vivo ytelse. Denne artikkelen har en streng prosedyre for å karakterisere in vivo oppførsel av nanomedicines i tumor-bærende mus ved systemisk, vev, encellede, og subcellulære nivåer via integrering av positronemisjonstomografi-computertomografi (PET-CT), radioaktivitet kvantifisering metoder , flowcytometri, og fluorescens mikroskopi. Ved hjelp av denne tilnærmingen, kan forskerne nøyaktig vurdere nye nanoskala formuleringer i relevante musemodeller av ningr. Disse protokollene kan ha evnen til å identifisere de mest lovende kreft nanomedicines med høy translasjons-potensial eller for å hjelpe til optimalisering av kreft nanomedicines for fremtidig oversettelse.

Introduction

Nanomedisin er skiftende paradigmet av kreftbehandling utvikling en. Inspirert av den enorme kliniske betydningen av tidligere kreft nanomedicines som liposombundet og albumin-baserte nanotherapies 2, 3, har mange nye formuleringer blitt produsert i det siste tiåret. Men nyere analyser av den kliniske suksessen til disse kreft nanomedicines viser at bare et fåtall av dem har blitt godkjent for klinisk bruk 4, 5. En stor hindring for klinisk oversettelse av nye kreft nanomedicines er deres begrenset forbedring av den terapeutiske indeks sammenlignet med direkte tilførsel av de frie terapeutiske forbindelser 6. Som sådan nøyaktig evaluering av in vivo-ytelse av nanomedicines ved systemisk, vev, og cellulære nivåer i prekliniske dyremodeller er avgjørende for ID-kort produksjony de med optimale terapeutiske indekser for fremtidig klinisk oversettelse.

Nanomaterialer kan være radiomerket for kvantitativ karakterisering i levende dyr med positronemisjonstomografi (PET) imaging, som har utmerket følsomhet og reproduserbarhet blant alle kliniske bildediagnostikk 7. For eksempel, 89 Zr-merkede lang sirkulerende nanomedicines er blitt karakterisert i musemodeller for kreft 8, 9, 10, så vel som i andre sykdomsmodeller 11. I tillegg kan det blod halveringstid og biofordeling av de nanomedicines bli grundig evaluert ved hjelp av ex vivo-radioaktivitet i enkelte vev 8. Derfor tillater radiomerking for den kvantitative evalueringen av nanomedicines ved systemisk og vev nivåer.

Viktigere, radiolabeled nanomedicines vanligvis ikke kan analyseres på enkelt-celle eller subcellulære nivåer på grunn av den begrensede romlig oppløsning av det radioaktive signal. Derfor viser fluorescerende merking for å være en utfyllende modalitet for evaluering av nanopartikler med optiske avbildningsteknikker slik som strømningscytometri og fluorescensmikroskopi 12. For dette formål kan nanopartiklene som er merket med radioisotoper og fluorescerende koder kvantitativt evaluert in vivo ved nukleær-imaging og ex vivo ved hjelp av radioaktivitet telling, og de kan også i stor utstrekning karakteriseres på cellenivå ved optisk avbildning.

Tidligere har vi utviklet modulære prosedyrer for å innlemme radioaktive og fluoriserende etiketter i ulike nanopartikler, inkludert high-density lipoprotein (HDL) 11, liposomer 9, 10, polymere nanopartikler, antistoff-fragmenter, og nanoemulsions 10, 13. Disse er merket nanopartikler har tillatt for kvantitativ karakterisering i relevante dyremodeller på ulike nivåer, som guidede optimalisering av nanomaterialet for sine spesifikke applikasjoner. I denne studien, er målet å bruke liposomale nanopartikler-de mest etablerte nano plattformen 14-som et eksempel for å demonstrere omfattende prosesser for å generere et to-merket nanopartikkel og for å karakterisere det grundig i en klassisk syngen melanom B16-F10 musemodell 15 . Fra resultatene, er vi sikre på dette nanopartikkel karakterisering tilnærmingen kan tilpasses til å vurdere andre kreft nanomedicines i relevante musemodeller.

Protocol

Prosedyren består av to radioaktive og fluorescerende merking av nanopartikler, in vivo PET-CT-avbildning, ex vivo biofordelingsstudier målinger, og ex vivo immunfarging og flowcytometri analyser. Alle dyreforsøk ble godkjent av Institutional Animal Care og bruk komité Memorial Sloan Kettering Cancer Center. 1. Utarbeidelse av Dual-merkede liposomer MERK: syngene B16 melanom svulster kan induseres ved å injisere 300.000 B16-F10 celle…

Representative Results

Figur 1 viser en oversikt over fremgangsmåten. Figur 2 viser skjematisk syntesefremgangsmåten i de to merkede liposomer er beskrevet i trinn 1. 10. Figur 3 viser en representativ PET-CT-bildet (figur 3a), radioaktivitet kvantifisering fra PET avbildning (figur 3b), blodhalveringstid (figur 3c), og biofordelingen (figur 3d) av radioaktive nanopar…

Discussion

Kritiske trinn i protokollen:

Den høye kvaliteten på dual-merkede liposomer er nøkkelen for å produsere konsistente resultater over en lang tidsperiode. Gratis fluorescerende fargestoffer eller 89 Zr ioner kan generere helt forskjellige målretting mønstre og må fjernes fullstendig under rensetrinnet. I tillegg, hvis immunsystem påvirker eksperimentelle kreft nano ytelsen betraktelig, bør bruken av immunkompetente musemodeller være å foretrekke, slik som B16-F10 melanommode…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Drs. Helene Salmon and Miriam Merad from Icahn School of Medicine at Mount Sinai for providing the B16-F10-YFP cells and for their expert advice on melanoma mouse models. The authors further thank the Animal Imaging Core Facility, the Radiochemistry and Molecular Imaging Probes Core Facility, and the Molecular Cytology Core Facility at Memorial Sloan Kettering Cancer Center (MSK) for their support. This work was supported by National Institutes of Health grants NIH 1 R01 HL125703 (W.J.M.M.), R01CA155432 (W.J.M.M.), K25 EB016673 (T.R.) and P30 CA008748 (MSK Center Grant). The authors also thank the Center for Molecular Imaging and Nanotechnology (CMINT) at MSK for their financial support (T.R.).

Materials

DPPC Avantilipids 850355
Cholesterol Sigma-Aldrich C8667
DSPE-PEG2000 Avantilipids 880120P
DSPE-DFO Home made 110634 Perez-Medina et al, JNM, 2014
DiIC12[5]-DS AAT Bioquest 22051
Centrifugal filter Vivaproducts VS2061
Rotary evaporator Buchi R-100
Radio-HPLC Shimadzu HPLC with 2 LC-10AT pumps N/A
89Zr-oxalate MSKCC Synthesized in house TR19/9 variable beam cyclotron (Ebco Industries Inc)
Micro PET-CT Siemens Inveon Micro-PET/CT
Gamma counter PerkinElmer 2470-0150
Flow cytometry BD Biosciences Fortessa Any multi-parametric flow cytometry analyzers would suffice
C57BL/6 mice Jackson Laboratories
B16-YFP melanoma cells Home made N/A Salmon et al, Immunity, 2016
Ly6C (clone HK1.4)–APC-Cy7 128025 Biolegend
MHCII (M5/114/152)–APC 107613 Biolegend
CD45 (30-F11)–BV510 103137 Biolegend
CD64 (X54-5/7.1)–PE-Cy7 139313 Biolegend
CD11b (M1/70)–BV605 101237 Biolegend
CD3 (17A2)–BV711 100241 Biolegend
CD31 (13.3)–PE 561073 Biolegend
CD11c (M418)–PerCP-Cy5.5 117327 BD Biosciences
CD31 (13.3) no fluorophore 550274 BD Biosciences

References

  1. Peer, D., et al. Nanocarriers as an emerging platform for cancer therapy. Nat Nanotechnol. 2, 751-760 (2007).
  2. Barenholz, Y. Doxil(R)–the first FDA-approved nano-drug: lessons learned. J Control Release. 160, 117-134 (2012).
  3. Green, M. R., et al. Abraxane, a novel Cremophor-free, albumin-bound particle form of paclitaxel for the treatment of advanced non-small-cell lung cancer. Ann Oncol. 17, 1263-1268 (2006).
  4. Juliano, R. Nanomedicine: is the wave cresting?. Nat Rev Drug Discov. 12, 171-172 (2013).
  5. Ledford, H. Bankruptcy filing worries developers of nanoparticle cancer drugs. Nature. 533, 304-305 (2016).
  6. Venditto, V. J., Szoka, F. C. Cancer nanomedicines: so many papers and so few drugs!. Adv Drug Deliv Rev. 65, 80-88 (2013).
  7. Dunphy, M. P., Lewis, J. S. Radiopharmaceuticals in preclinical and clinical development for monitoring of therapy with PET. J Nucl Med. (50 Suppl 1), (2009).
  8. Perez-Medina, C., et al. PET Imaging of Tumor-Associated Macrophages with 89Zr-Labeled High-Density Lipoprotein Nanoparticles. J Nucl Med. 56, 1272-1277 (2015).
  9. Perez-Medina, C., et al. A modular labeling strategy for in vivo PET and near-infrared fluorescence imaging of nanoparticle tumor targeting. J Nucl Med. 55, 1706-1711 (2014).
  10. Perez-Medina, C., et al. Nanoreporter PET predicts the efficacy of anti-cancer therapy. Nature communications. , (2016).
  11. Tang, J., et al. Inhibiting macrophage proliferation suppresses atherosclerotic plaque inflammation. Science advances. , (2015).
  12. Priem, B., Tian, C., Tang, J., Zhao, Y., Mulder, W. J. Fluorescent nanoparticles for the accurate detection of drug delivery. Expert Opin Drug Deliv. 12, 1881-1894 (2015).
  13. Gianella, A., et al. Multifunctional nanoemulsion platform for imaging guided therapy evaluated in experimental cancer. ACS Nano. 5, 4422-4433 (2011).
  14. Torchilin, V. P. Recent advances with liposomes as pharmaceutical carriers. Nat Rev Drug Discov. 4, 145-160 (2005).
  15. Salmon, H., et al. Expansion and Activation of CD103(+) Dendritic Cell Progenitors at the Tumor Site Enhances Tumor Responses to Therapeutic PD-L1 and BRAF Inhibition. Immunity. 44, 924-938 (2016).
  16. Perez-Medina, C., et al. In Vivo PET Imaging of HDL in Multiple Atherosclerosis Models. JACC Cardiovasc Imaging. 9, 950-961 (2016).
  17. Duivenvoorden, R., et al. A statin-loaded reconstituted high-density lipoprotein nanoparticle inhibits atherosclerotic plaque inflammation. Nature communications. 5, 3065 (2014).
  18. Carney, B., et al. Non-invasive PET Imaging of PARP1 Expression in Glioblastoma Models. Mol Imaging Biol. , (2015).
  19. Salinas, B., et al. Radioiodinated PARP1 tracers for glioblastoma imaging. EJNMMI Res. 5, 123 (2015).
  20. Carlucci, G., et al. Dual-Modality Optical/PET Imaging of PARP1 in Glioblastoma. Mol Imaging Biol. 17, 848-855 (2015).
  21. Tang, J., et al. Immune cell screening of a nanoparticle library improves atherosclerosis therapy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. , (2016).
  22. Scott, A. M., Wolchok, J. D., Old, L. J. Antibody therapy of cancer. Nat Rev Cancer. 12, 278-287 (2012).
  23. Goodwill, P., et al. X-space MPI: magnetic nanoparticles for safe medical imaging. Adv Mater. 24, 3870-3877 (2012).
check_url/fr/55271?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Tang, J., Pérez-Medina, C., Zhao, Y., Sadique, A., Mulder, W. J. M., Reiner, T. A Comprehensive Procedure to Evaluate the In Vivo Performance of Cancer Nanomedicines. J. Vis. Exp. (121), e55271, doi:10.3791/55271 (2017).

View Video