Summary

Met behulp van synthetische biologie levende cellen Engineer die interface met programmeerbare Materials

Published: March 09, 2017
doi:

Summary

Dit artikel presenteert een reeks protocollen voor het ontwikkelen van gemanipuleerde cellen en gefunctionaliseerde oppervlakken die het mogelijk maken synthetisch gemanipuleerde E. coli te beheersen en te manipuleren programmeerbare materiaal oppervlakken.

Abstract

We hebben een abiotische-biotische interface waarmee gemodificeerde cellen aan de materiaaleigenschappen van een gefunctionaliseerd oppervlaktebesturingseenheid ontwikkeld. Dit systeem bestaat, door twee modules: een synthetisch gemodificeerde stam van E. coli cellen en een gefunctionaliseerd materiaal interface. In dit document, we detail een protocol voor genetisch manipuleren geselecteerde gedrag in een stam van E. coli met behulp van moleculaire klonering strategieën. Eenmaal ontwikkeld, dit soort produceert hoge gehalten aan biotine bij blootstelling aan een chemische inductor. Daarnaast hebben we detail protocollen voor het maken van twee verschillende gefunctionaliseerde oppervlakken, waarvan elk kan inspelen op cel gesynthetiseerd biotine. Samengevat presenteren we een methode voor het maken van een gekoppelde, abiotische-biotische systeem waarmee gemanipuleerde cellen materiaalsamenstelling en montage controleren op niet-levende substraten.

Introduction

Hier melden wij procedures voor de ontwikkeling van een programmeerbare substraat kan reageren op een chemisch signaal van een gemodificeerde cellijn. 1 Wij doen dit door het creëren van een biotine-streptavidine-interface die reageert op biotine geproduceerd door synthetisch gemanipuleerde Escherichia coli (E. coli) cellen. Eerder hebben programmeerbare oppervlakken is ontworpen voor een breed scala aan toepassingen van toxine detectie 2 en point-of-care diagnostiek 3 defensie en veiligheid. 4 Terwijl programmeerbare oppervlakken bruikbaar als sensoren en actuatoren kunnen zijn, kunnen ze "slimmer" worden gemaakt door ze te begiftigen met het vermogen tot aanpassing aan verschillende milieuproblemen. Daarentegen, zelfs eenvoudige micro-organismen, zoals E. coli, inherente flexibiliteit en kunnen reageren op uitdagingen geavanceerde en vaak onverwachte oplossingen. Dit aanpassingsvermogen heeft ingeschakeld E.coli bevolking, bestuurd door hun complexe gen-netwerken, op een kosteneffectieve manier te zoeken middelen, 5 creëren producten met toegevoegde waarde, 6 en zelfs de macht micro-schaal robotica. 7 Door het koppelen van de adaptieve voordelen van levende cellen met behulp van programmeerbare oppervlakken, kunnen we een slimme substraat kan reageren op verschillende omgevingsomstandigheden maken.

Synthetische biologie onderzoekers nieuwe mogelijkheden gegeven om het gedrag van levende organismen programmeren. Door engineering van cellen om nieuw gen regulerende netwerken bevatten, kunnen onderzoekers cellen die een reeks van geprogrammeerde gedrag vertonen ontwerpen. 8, 9 voorbij basisonderzoek, kan dit gedrag worden gebruikt voor toepassingen zoals regelend materiaal montage en biologisch produceren van producten met toegevoegde waarde. 10 Hierin we detail hoe we gebruik gemaakt van de instrumenten van de synthetische biologie tot engineer een E. coli-stam die biotine synthetiseert na inductie. Deze stam werd ontwikkeld door gebruikmaking van restrictie-enzym kloneringswerkwijzen een plasmide, pKE1-lad-bioB monteren. Dit plasmide, wanneer getransformeerd in E. coli stam K-12 MG1655, begiftigt cellen met het vermogen om verhoogde niveaus van bioB, een enzym voor biotine synthese drukken. Wanneer getransformeerde cellen werden geïnduceerd met isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) en voorzien van een biotine precursor, desthiobiotine (DTB), werden verhoogde niveaus van biotine geproduceerd.

De bindingsinteractie biotine met streptavidine is een van de sterkste niet-covalente bindingen in de natuur. Als zodanig, de biotine-streptavidine interactie zowel goed gekarakteriseerd en zeer gebruikt in biotechnologie. 11 Binnen dit manuscript, presenteren we twee strategieën in dienst van de biotine-streptavidine interactie aan te voelen en op te sporen cel geproduceerd biotine met een gefunctionaliseerd oppervlak. Wijverwijzen naar deze contrasterende oppervlakken als "indirecte" en "direct" control regelingen. In de besturing indirecte cel geproduceerd biotine concurreert met biotine dat is geconjugeerd en geïmmobiliseerd op een polystyreen oppervlak voor streptavidine bindingsplaatsen. Bovendien wordt de streptavidine geconjugeerd met mierikswortelperoxidase (HRP). HRP wijzigt 3, 3 ', 5, 5'-tetramethylbenzidine (TMB), een optisch signaal, 12 dat kan worden gevolgd door kwantificeren van de spectrale absorptie (dwz optische dichtheid) bij 450 nm (OD 450) te produceren. Zo is de besturing indirect stelt onderzoekers in staat om cellen geproduceerd biotine te meten door het bewaken van de attentuation van de OD 450 signaal.

De directe besturing maakt gebruik van de streptavidine-biotine event door immobiliseren streptavidine rechtstreeks op een materiaaloppervlak en waardoor cellen geproduceerd biotine en gebiotinyleerde HRP om te concurreren voor streptavidine bindingsplaatsen. Nogmaals, derelatieve niveaus van cel geproduceerde biotine worden gevolgd door het meten van een OD 450 signaal.

Samengevat, de gemanipuleerde cellen en gefunctionaliseerde oppervlakken kunnen we de eigenschappen van een programmeerbare oppervlaktebesturingseenheid door het induceren netwerken in levende cellen. Met andere woorden, hebben we een systeem dat gebruik maakt van het aanpassingsvermogen van levende organismen en de betrouwbaarheid en de specificatie van een aangelegde materiaal-interface door het koppelen van deze systemen gemaakt.

Protocol

1. Media en Cultuur Voorbereiding Bereid lysogenie bouillon (LB) media door het mengen van 25 g LB poeder voorraad 1 L gedeïoniseerd (DI) water en autoclaveren de oplossing bij 121 ° C gedurende 20 min te steriliseren. Om LB-platen voor te bereiden, voeg 15 g agar (1,5%) tot de LB media voor de sterilisatie Bereid voorraad oplossingen van 1000x carbenicilline (CB) in DI water (50 mg / ml). Als voorbereiding LB-medium dat een antibioticum voor selectie van resist…

Representative Results

Representatieve resultaten zijn weergegeven in de bijgaande vijf figuren. Eerst geven we het klonen grafisch (figuur 1), zodat de lezer visueel kan volgen de kritische stappen voor het creëren van synthetisch gemodificeerde E. coli-stam. Om de populatie dynamiek van de cellen te karakteriseren, bieden we een groeicurve (figuur 2) gegenereerd door de optische dichtheid bij 600 nm (OD 600) van de bevolking. Vervolgens tonen we hoe de r…

Discussion

We hebben een nieuwe strategie voor het koppelen van gemodificeerde levende cellen met een gefunctionaliseerd materiaaloppervlak gepresenteerd. Dit werd bereikt door de ontwikkeling van een cellijn die in staat synthetiseren verhoogde biotine wanneer geïnduceerd met IPTG. De verhoogde niveaus van biotine kan dan worden gebruikt om het gefunctionaliseerde oppervlak wijzigen. De protocollen gedetailleerd hoe de E. coli cellijn ingenieur en hoe u twee verschillende gefunctionaliseerde oppervlakken te creëren. </…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs dankbaar steun van award FA9550-13-1-0108 uit de Air Force Office van Wetenschappelijk Onderzoek van de Verenigde Staten te erkennen. De auteurs bovendien steun van award N00014-15-1-2502 erkennen van het Office of Naval Research van de Verenigde Staten, de financiering van het Instituut voor Technologie en kritische Applied Science aan de Virginia Polytechnic Institute and State University, en van de National Science Foundation Graduate Research Fellowship Program, award nummer 1.607.310.

Materials

LB Broth, Miller  Fisher Scientific 12-795-027
Agar Fisher Scientific BP9744500
Carbenicillin  Fisher Scientific BP26481
M9, Minimimal Salts, 5X Sigma-Aldrich M6030
Casamino Acids  Fisher Scientific BP1424-100
Magnesium Sulfate, Anhydrous Fisher Scientific M65-500
Calcium Chloride, Dihydrate Fisher Scientific C79-500
Dextrose (D-Glucose), Anhydrous Fisher Scientific D16-1
NEB Turbo Cell Line New England Biolabs C2984l
Oligonucleotide Primers Thermo Fisher Scientific N/A 25N synthesis, DSL purification
Q5 High-Fidelity Polymerase New England Biolabs M0491S
Q5 Reaction Buffer New England Biolabs B9027S
dNTP Solution Mix New England Biolabs N0447S
Agarose Bioexpress E-3120-125
Ethidium Bromide, 1% Fisher Scientific BP1302-10
Gel Extraction Kits Epoch Biolabs 2260250
GenCatch Plasmid DNA Miniprep Kit Epoch Biolabs 2160250
AatII New England Biolabs R0117S
SacII New England Biolabs R0157S
HindIII-HF New England Biolabs R3104S
EcoRI-HF New England Biolabs R3101S
Cutsmart Buffer New England Biolabs B7204S
T4 DNA Ligase New England Biolabs M0202S
T4 DNA Ligase Reaction Buffer New England Biolabs B0202S
ColiRolle Glass Plating Beads  EMD Millipore 7101-3
Glycerol Fisher Scientific BP229-1
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) Fisher Scientific BP1755-10
NHS-Desthiobiotin (DTB) Thermo Fisher Scientific 16129
Succinimidyl Trans-4-(maleimidylmethyl) Cyclohexane-1-Carboxylate (SMCC)  Thermo Fisher Scientific S1534
Dimethyl Sulfoxide (DMSO)  Fisher Scientific BP231-100
Succinimidyl 3-(2-pyridyldithio) Propionate (SPDP)  Thermo Fisher Scientific S1531
NHS-LC-LC-biotin Thermo Fisher Scientific 21343
Horseradish Peroxidase (HRP)  Thermo Fisher Scientific 31490
Phosphate Buffered Saline (PBS), 10X Solution Fisher Scientific BP399500
Streptavidin (SA)  Thermo Fisher Scientific 21145
Bovine Serum Albumin (BSA) Fisher Scientific BP1600-100
Dithiothreitol (DTT) Fisher Scientific BP172-5
Ethylenediaminetetaacetic acid (EDTA)  Fisher Scientific S311-500
Tween 80  Fisher Scientific T164-500
Hydrogen Peroxide Fisher Scientific H325-4
3, 3', 5, 5'-tetramethylbenzidine (TMB) Fisher Scientific AC229280050
Vivaspin 500 Centrifugal Concentrators  Viva Products VS0192
Sodium Acetate, Anhydrous Fisher Scientific BP333-500
96-Well Polystyrene Plates Thermo Fisher Scientific 266120

References

  1. Zhang, R., Heyde, K. C., Scott, F. Y., Paek, S. -. H., Ruder, W. C. Programming Surface Chemistry with Engineered Cells. ACS Synth. Biol. , (2016).
  2. Zhou, X., et al. Reduced graphene oxide films used as matrix of MALDI-TOF-MS for detection of octachlorodibenzo-p-dioxin. Chem. Commun. 46, 6974-6976 (2010).
  3. Pardee, K., et al. Low-Cost Detection of Zika Virus Using Programmable Biomolecular Components. Cell. 165, 1255-1266 (2016).
  4. Bähring, S., et al. Design and Sensing Properties of a Self-Assembled Supramolecular Oligomer. Chem. Eur. J. 22, 1958-1967 (2016).
  5. Nicolau Jr, D. V., Armitage, J. P., Maini, P. K. Directional persistence and the optimality of run-and-tumble chemotaxis. Comp. Biol. Chem. 33, 269-274 (2009).
  6. Du, J., Shao, Z., Zhao, H. Engineering microbial factories for synthesis of value-added products. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 38, 873-890 (2011).
  7. Kim, H., Kim, M. J. Electric Field Control of Bacteria-Powered Microrobots Using a Static Obstacle Avoidance Algorithm. IEEE Trans. Rob. 32, 125-137 (2016).
  8. Gardner, T. S., Cantor, C. R., Collins, J. J. Construction of a genetic toggle switch in Escherichia coli. Nature. 403, 339-342 (2000).
  9. Heyde, K. C., Ruder, W. C. Exploring Host-Microbiome Interactions using an in Silico Model of Biomimetic Robots and Engineered Living Cells. Sci. Rep. 5, 11988 (2015).
  10. Rice, M. K., Ruder, W. C. Creating biological nanomaterials using synthetic biology. Sci. Tech. Adv. Mater. 15, 014401 (2014).
  11. Green, N. M. Avidin. 3. The nature of the biotin-binding site. Biochem. J. 89, 599-609 (1963).
  12. Mesulam, M. M. Tetramethyl benzidine for horseradish peroxidase neurohistochemistry: a non-carcinogenic blue reaction product with superior sensitivity for visualizing neural afferents and efferents. J Histochem. Cytochem. 26, 106-117 (1978).
  13. Litcofsky, K. D., Afeyan, R. B., Krom, R. J., Khalil, A. S., Collins, J. J. Iterative plug-and-play methodology for constructing and modifying synthetic gene networks. Nat. Meth. 9, 1077-1080 (2012).
  14. Gibson, D. G., et al. Complete Chemical Synthesis, Assembly, and Cloning of a Mycoplasma genitalium Genome. Science. 319, 1215-1220 (2008).
  15. Diamandis, E. P., Christopoulos, T. K. The biotin-(strept)avidin system: principles and applications in biotechnology. Clin. Chem. 37, 625-636 (1991).
  16. Nerurkar, L. S., Namba, M., Brashears, G., Jacob, A. J., Lee, Y. J., Sever, J., L, Rapid detection of herpes simplex virus in clinical specimens by use of capture biotin-streptavidin enzyme-linked immunosorbent assay. J. Clin. Micro. 20, 109-114 (1984).
  17. Cui, Y., Wei, Q., Park, H., Lieber, C. M. Nanowire Nanosensors for Highly Sensitive and Selective Detection of Biological and Chemical Species. Science. 293, 1289-1292 (2001).
check_url/fr/55300?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Heyde, K. C., Scott, F. Y., Paek, S., Zhang, R., Ruder, W. C. Using Synthetic Biology to Engineer Living Cells That Interface with Programmable Materials. J. Vis. Exp. (121), e55300, doi:10.3791/55300 (2017).

View Video