Summary

Analysere Cell Surface Adhesjon Ombygging i Response til Mekanisk Tension Bruke magnetiske kuler

Published: March 08, 2017
doi:

Summary

Celleoverflatevoksninger er sentrale i mechanotransduction, som de overfører mekanisk spenning og iverksette de signalveier involvert i vev homeostase og utvikling. Her presenterer vi en protokoll for å dissekere de biokjemiske mekanismer som aktiveres i respons til spenning, ved hjelp av ligand-belagt magnetiske mikroperler og kraft søknad til vedheft reseptorer.

Abstract

Mechanosensitive celleoverflate adhesjons komplekser tillate cellene å avføle de mekaniske egenskapene til sine omgivelser. Nyere studier har identifisert både kraft-sensing molekyler på vedheft områder, og tvinge avhengig transkripsjonsfaktorer som regulerer avstamning spesifikke genuttrykk og drive fenotypiske utganger. Imidlertid har signalnettverk konvertere mekanisk spenning i biokjemiske mekanismer vært unnvikende. For å utforske de signalveier som driver etter en mekanisk spenning som er påført celleoverflatereseptor, kan superparamagnetiske mikrokuler anvendes. Her presenterer vi en protokoll for å bruke magnetiske kuler for å bruke kreftene til celleoverflate adhesjonsproteiner. Ved hjelp av denne metode, er det mulig å undersøke ikke bare kraftavhengig cytoplasmatiske signalbaner av forskjellige biokjemiske metoder, men også adhesjon remodellering av magnetisk isolasjon av adhesjons komplekser festet til ligand-belagte kuler. Denne protokollen innbefatter fremstilling av ligand-corerte superparamagnetiske perler, og anvendelse av definere strekkrefter fulgt av biokjemiske analyser. I tillegg tilbyr vi et representativt utvalg av data som viser at spenning påføres intebasert heft utløser heft ombygging og endrer protein tyrosin fosforylering.

Introduction

I metazoer, retning og mekanisk spenning vev utvikling og homeostase gjennom regulering av en myriade av cellulære prosesser som proliferasjon, differensiering og overlevelse 1, 2. Mekaniske spenninger kan oppstå fra den ekstracellulære matriks eller kan genereres av adherente celler, som prøve deres ekstracellulære miljø gjennom actomyosin kontraktile maskiner som trekker ut mot ekstracellulær matriks og sonder dens stivhet ved spenningsfølsomme molekyler. Som svar på spenning, mechanosensitive adhesjonsproteiner gjennomgå konformasjonsforandringer endringer som utløser komplekse signalkaskader. I sin tur, disse signalveier orkestrere en mechanoresponse omfatter spredning, differensiering og overlevelse som justerer cellulære atferd til det ekstracellulære miljøet. Slike prosesser kan bli avgjort i en kortsiktig periode (sekunder til minutter) for raskt å mate tilbake på løkken mecha notransduction ved å endre mechanosensitive strukturer. For eksempel, integrinbaserte voksn forsterke som reaksjon på spenning gjennom Rho GTPase-mediert cytoskeletal remodellering 3, 4, 5. Parallelt er andre signalveier aktivert i løpet av timer og dager for å kontrollere genetiske programmer som til slutt påvirker celle skjebne 6. Mens mange studier har fremhevet effekten av matrisen stivhet på celle determinisme og sykdomsutvikling 1, 2, de nøyaktige molekylære mekanismer for vedheft-mediert mechanotransduction fortsatt unnvikende.

Ulike tilnærminger har blitt utviklet for å studere effekter av cellegenerert styrker eller ytre krefter på celle atferd, inkludert flytsystemer, fluorescens resonans energi overføring (FRET) -tension sensorer 7,lass = "xref"> 8, kompatible underlag 9, magnetiske pinsett, optiske pinsetter 10 og atomic force mikroskopi (AFM) 11. Her presenterer vi en protokoll bruker superparamagnetiske perler å karakter mechanotransduction trasé som svar på strekkrefter brukt på bestemte vedheft reseptorer. Superparamagnetiske kuler er partikler som reversibelt magnetize når den plasseres i et magnetisk felt. Når belagt med en ligand for en spesifikk reseptor, disse perlene tilveiebringe et kraftig verktøy for å studere effektene av ekstracellulært kraftpåførings. Denne metoden har blitt validert av flere studier 3, 5, 12 17 og presentere fordel å i stor grad legge til rette for biokjemisk analyse på heftende celler. Ved hjelp av tilsvarende kollagen-belagte magnetiske kuler, etterfulgt av biokjemisk analyse, tidlige arbeid rapportert en økning iprotein-tyrosin-fosforylering og aktivering RhoA som reaksjon på spenning 5, 18, 19. Metoden som beskrives nedenfor har også vært brukt med fibronektin (FN) -belagte perler for å karakterisere de signalveier nedstrøms fra spenning påføres integriner 3. I denne studien Guilluy et al. viste at spenningen aktiverer RhoA gjennom rekruttering av de to guanin nukleotid utvekslings faktorer (GEFs), Larg og GEF-H1, til integrin vedheft komplekser. Siden det, har andre studier vist at GEF-H1 er rekruttert til vedheft komplekser som svar på celle-generert spenning ved hjelp av ulike metoder 20, 21, demonstrere robustheten til metoden beskrevet her. Som et resultat ble aktivert RhoA vist seg å fremme vedheft forsterkning, gjennom cytoskeletal ombygging. Dette systemet ble også benyttet for å oppdage spenning påført to celle / celle adhesjon reseptorer. Anvendelse av krefter på magnetiske kuler belagt med det ekstracellulære domenet av E-cadherin induserte en økning i vinculin rekrutteringen på samme måte som integrin-assosierte adhesjons komplekser 12. Collins og kolleger observerte at anvendelse av spenning til PECAM-en fremmer inte og RhoA aktivering 13. En annen eksperimentell tilnærming ved hjelp av magnetiske kuler er studiet av spenning tilført til isolerte kjerner. Ved hjelp av kuler belagt med antistoffer mot kjernekapselproteinet nesprin-1, ble atom konvolutt komplekser renses for å vise at de er dynamisk regulert som respons på mekanisk spenning 22. Disse resultatene støtter powerfulness av denne metoden i studiet av mechanotransduction veier. Videre, mens strømnings eller trekkraft systemer stimulere generelle cellulære prosesser, magnetiske kuler spesifikt mot en celle adhesjon reseptor ved hjelp av enten reseptorligander <sup class = "xref"> 3 eller monoklonale antistoffer mot celleoverflatereseptor 13, 15.

En annen fordel med denne fremgangsmåte er isoleringen av adhesjons komplekser gjennom en enkel ligand affinitetsrensing prosedyre. Det er velkjent at tilsetning av ligand-belagte kuler til cellene binder adhesjonsreseptorer og induserer rekruttering av flere adhesjonsproteiner 23. Ytterligere påføring av krefter til ligand-belagte magnetiske kuler svinger disse adhesjons komplekser til makromolekylære plattformer som formidler forskjellige spenningsavhengige signalbaner 4, 24. Cellelyse etterfulgt av kule konsentrasjon ved anvendelse av en magnet tillater isolering av adhesjonsegenskapene plattformer. Andre metoder som brukes for å rense adhesjons komplekser har allerede blitt brukt i adherente celler. De kombinerer kjemisk kryssbinding for å spare protein-protein interaksjonerog en cellelyseringstrinn av vaskemiddel og skjærflyt eller ultralydbehandling 20, 21, 25, 26, 27, 28. Det siste trinnet er samlingen av de resulterende ventrale plasmamembraner inneholdende de adhesjons komplekser. I motsetning til disse fremgangsmåter, magnetiske kuler tillate en høyere grad av rensing celle adhesjons komplekser ved selektivt rettet mot en bestemt familie av adhesjonsreseptorer. Magnetiske kuler har allerede blitt brukt for å rense adhesjons komplekser i ikke-adherente celler bundet til ligand-belagte mikrokuler 29, 30. Metoden er beskrevet nedenfor ligner biologiske situasjoner der makt er søkt om en kort vedvarende periode (sekunder til minutter). Derfor gir det et kraftig verktøy for å undersøke både den molekylære sammensetningen av renset vedheft komplekser ognedstrøms mechanosensitive-signalveier.

Her presenterer vi en detaljert forsøksprotokoll for å bruke magnetiske kuler for å bruke strekkrefter til vedheft overflateproteiner. En permanent neodym-magnet er plassert på toppen av kulturskålen overflate. Den polflate av magneten er plassert ved en høyde på 6 mm, slik at kraften på et enkelt 2,8 pm magnetiske kuler er konstant (omkring 30 til 40 pn) 31. Varigheten av spenning stimulering bestemmes av operatøren avhengig av molekyl av interesse og dens tidsskala for aktivering. Celler blir lysert endelig, adhesjons komplekser blir renset ved hjelp av kuler separasjon ved anvendelse av en magnet og biokjemiske analyser blir behandlet. Denne protokollen innbefatter fremstilling av ligand-belagt superparamagnetiske kuler, og det utøves strekk gjennom magnet etterfulgt av biokjemiske analyser. I tillegg tilbyr vi et representativt utvalg av data som viser at spenning påføres intebaserte adhesions induserer vedheft ombygging og endrer protein tyrosin fosforylering.

Protocol

1. Ligand Bøyning til magnetiske kuler Bemerk: Ligand konjugering utføres ved hjelp av superparamagnetiske tosyl-aktiverte kuler med en 2,8 um diameter (stamoppløsning konsentrasjon 10 8 perler / ml, 30 mg kuler / ml). Den følgende protokollen er basert på prøver av omtrent 2 x 10 5 celler, som tilsvarer MRC-5-celler dyrket til 80% konfluens i en 60 mm vevskulturskål. Juster volumet av perler og reagenser tilsvarende ved bruk plater av forskjellige størrelser elle…

Representative Results

Skjematisk av den teknikk som er illustrert i figur 1a. Etter ligand konjugasjon, er magnetiske kuler inkubert med cellene i 20 minutter, og deretter en permanent magnet anvendes for å påføre strekkrefter på omtrent 30-40 pN for forskjellige tidsrom. Figur 1b viser 2,8 um FN-belagte magnetiske kuler bundet til MRC5 celle-adhesjonsreseptorer. Vasketrinnet av superparamagnetiske kuler etter cellelyse er avgjørende, og bestemme graden av rensing. Et minimu…

Discussion

Metoden som er beskrevet her danner en grei måte å påføre spenning til celleoverflate adhesjonsreseptorer og tillate deres påfølgende rensing. Men noen trinn er kritisk for å utføre effektiv adhesjon rensing og eventuell optimering kan gjøres avhengig av den målrettede adhesjonsreseptorer. Vi presenterer potensielle problemer brukeren kan oppstå under.

Vi brukte 2,8 um diameter magnetiske kuler men større perler kan anvendes, slik som 4,5 um diameter. Imidlertid bør kulediameter…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

CG er støttet med tilskudd fra Agence National de la Recherche (ANR-13-JSV1-0008), fra EU syvende rammeprogram (Marie Curie Career Integration n˚8304162) og fra European Research Council (ERC) under EUs Horizon 2020 forsknings- og innovasjonsprogram (ERC Starting Grant n˚639300).

Materials

Neodymium magnets (on the upper face of 60 mm dish) K&J Magnetics, Inc DX88-N52 grade N52 dimension: 1 1/2" dia. x 1/2" thick
Neodymium magnets (on the lower face of 60 mm dish) K&J Magnetics, Inc D84PC-BLK grade N42 dimension: 1/2" dia. x 1/4" thick Black Plastic Coated 
Dynabeads M280 Tosylactivated Thermofisher 14203 superparamagnetic beads 
DynaMag-2 Magnet Thermofisher 12321D
Fibronectin  Sigma-Aldrich F1141-5MG Fibronectin from bovine plasma
Poly-D-Lysine Sigma-Aldrich P7280-5MG
Apo-Transferrin Sigma-Aldrich T1428-50MG Bovine Apo-Transferrin
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A7906-500G
DMEM high glucose, GlutaMAX supplement, pyruvate  Life Technologies 31966-021 DMEM+GlutaMAX-I 500 ml 
60*15 mm culture dish Falcon 353004

References

  1. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. -. L. . Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. 310 (5751), 1139-1143 (2005).
  2. DuFort, C. C., Paszek, M. J., Weaver, V. M. Balancing forces: architectural control of mechanotransduction. Nat Rev Mol Cell Biol. 12 (5), 308-319 (2011).
  3. Guilluy, C., et al. The Rho GEFs LARG and GEF-H1 regulate the mechanical response to force on integrins. Nat Cell Biol. 13 (6), 722-727 (2011).
  4. Matthews, B. D., Overby, D. R., Mannix, R., Ingber, D. E. Cellular adaptation to mechanical stress: role of integrins, Rho, cytoskeletal tension and mechanosensitive ion channels. J Cell Sci. 119 (3), 508-518 (2006).
  5. Zhao, X. -. H., et al. Force activates smooth muscle alpha-actin promoter activity through the Rho signaling pathway. J Cell Sci. 120 (Pt 10), 1801-1809 (2007).
  6. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126 (4), 677-689 (2006).
  7. Austen, K., Kluger, C., Freikamp, A., Chrostek-Grashoff, A., Grashoff, C. Generation and analysis of biosensors to measure mechanical forces within cells. Meth Mol Biol. 1066, 169-184 (2013).
  8. Grashoff, C., et al. Measuring mechanical tension across vinculin reveals regulation of focal adhesion dynamics. Nature. 466 (7303), 263-266 (2010).
  9. Pelham, R. J., Wang, Y. l. . Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate flexibility. Proc Natl Acad Sci USA. 94 (25), 13661-13665 (1997).
  10. Choquet, D., Felsenfeld, D. P., Sheetz, M. P. Extracellular matrix rigidity causes strengthening of integrin-cytoskeleton linkages. Cell. 88 (1), 39-48 (1997).
  11. Chaudhuri, O., Parekh, S. H., Lam, W. A., Fletcher, D. A. Combined atomic force microscopy and side-view optical imaging for mechanical studies of cells. Nat Meth. 6 (5), 383-387 (2009).
  12. Bays, J. L., et al. Vinculin phosphorylation differentially regulates mechanotransduction at cell-cell and cell-matrix adhesions. J Cell Biol. 205 (2), 251-263 (2014).
  13. Collins, C., et al. Localized tensional forces on PECAM-1 elicit a global mechanotransduction response via the integrin-RhoA pathway. Curr Biol. 22 (22), 2087-2094 (2012).
  14. Gordon, W. R., et al. Mechanical Allostery: Evidence for a Force Requirement in the Proteolytic Activation of Notch. Dev Cell. 33 (6), 729-736 (2015).
  15. Lessey-Morillon, E. C., et al. The RhoA guanine nucleotide exchange factor, LARG, mediates ICAM-1-dependent mechanotransduction in endothelial cells to stimulate transendothelial migration. J Immunol. 192 (7), 3390-3398 (2014).
  16. Osborne, L. D., et al. TGF-β regulates LARG and GEF-H1 during EMT to affect stiffening response to force and cell invasion. Mol Biol Cell. 25 (22), 3528-3540 (2014).
  17. Scott, D. W., Tolbert, C. E., Burridge, K. Tension on JAM-A activates RhoA via GEF-H1 and p115 RhoGEF. Mol Biol Cell. 27 (9), 1420-1430 (2016).
  18. Glogauer, M., Ferrier, J., McCulloch, C. A. Magnetic fields applied to collagen-coated ferric oxide beads induce stretch-activated Ca2+ flux in fibroblasts. Am J Physiol – Cell Physiol. 269 (5), C1093-C1104 (1995).
  19. Glogauer, M., et al. Calcium ions and tyrosine phosphorylation interact coordinately with actin to regulate cytoprotective responses to stretching. J Cell Sci. 110 (Pt 1), 11-21 (1997).
  20. Kuo, J. -. C., Han, X., Hsiao, C. -. T., Yates, J. R., Waterman, C. M. Analysis of the myosin-II-responsive focal adhesion proteome reveals a role for β-Pix in negative regulation of focal adhesion maturation. Nat Cell Biol. 13 (4), 383-393 (2011).
  21. Schiller, H. B., et al. β1- and αv-class integrins cooperate to regulate myosin II during rigidity sensing of fibronectin-based microenvironments. Nat Cell Biol. 15 (6), 625-636 (2013).
  22. Guilluy, C., et al. Isolated nuclei adapt to force and reveal a mechanotransduction pathway in the nucleus. Nat Cell Biol. 16 (4), 376-381 (2014).
  23. Plopper, G. E., McNamee, H. P., Dike, L. E., Bojanowski, K., Ingber, D. E. Convergence of integrin and growth factor receptor signaling pathways within the focal adhesion complex. Mol Biol Cell. 6 (10), 1349-1365 (1995).
  24. Roca-Cusachs, P., Gauthier, N. C., Del Rio, ., A, M. P., Sheetz, Clustering of alpha(5)beta(1) integrins determines adhesion strength whereas alpha(v)beta(3) and talin enable mechanotransduction. Proc Natl Acad Sci USA. 106 (38), 16245-16250 (2009).
  25. Ajeian, J. N., et al. Proteomic analysis of integrin-associated complexes from mesenchymal stem cells. Proteomics Clin Appl. 10 (1), 51-57 (2016).
  26. Horton, E. R., Astudillo, P., Humphries, M. J., Humphries, J. D. Mechanosensitivity of integrin adhesion complexes: Role of the consensus adhesome. Exp Cell Res. , (2015).
  27. Jones, M. C., et al. Isolation of integrin-based adhesion complexes. Curr Protoc Cell Biol. 66, 9.8.1-9.8.15 (2015).
  28. Ng, D. H. J., Humphries, J. D., Byron, A., Millon-Frémillon, A., Humphries, M. J. Microtubule-dependent modulation of adhesion complex composition. PloS One. 9 (12), e115213 (2014).
  29. Byron, A., Humphries, J. D., Bass, M. D., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of integrin adhesion complexes. Sci Sign. 4 (167), pt2 (2011).
  30. Byron, A., Humphries, J. D., Craig, S. E., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of α4β1 integrin adhesion complexes reveals α-subunit-dependent protein recruitment. Proteomics. 12 (13), 2107-2114 (2012).
  31. Marjoram, R. J., Guilluy, C., Burridge, K. Using magnets and magnetic beads to dissect signaling pathways activated by mechanical tension applied to cells. Methods. , (2015).
  32. Pasapera, A. M., Schneider, I. C., Rericha, E., Schlaepfer, D. D., Waterman, C. M. Myosin II activity regulates vinculin recruitment to focal adhesions through FAK-mediated paxillin phosphorylation. J Cell Biol. 188 (6), 877-890 (2010).
  33. Sawada, Y., Sheetz, M. P. Force transduction by Triton cytoskeletons. J Cell Biol. 156 (4), 609-615 (2002).
  34. Grinnell, F., Geiger, B. Interaction of fibronectin-coated beads with attached and spread fibroblasts. Binding, phagocytosis, and cytoskeletal reorganization. Exp Cell Res. 162 (2), 449-461 (1986).
  35. Schroeder, F., Kinden, D. A. Measurement of phagocytosis using fluorescent latex beads. J Biochem Biophys Meth. 8 (1), 15-27 (1983).
  36. Hoffman, B. D., Grashoff, C., Schwartz, M. A. Dynamic molecular processes mediate cellular mechanotransduction. Nature. 475 (7356), 316-323 (2011).
  37. Seo, D., et al. A Mechanogenetic Toolkit for Interrogating Cell Signaling in Space and Time. Cell. 165 (6), 1507-1518 (2016).

Play Video

Citer Cet Article
Millon-Frémillon, A., Aureille, J., Guilluy, C. Analyzing Cell Surface Adhesion Remodeling in Response to Mechanical Tension Using Magnetic Beads. J. Vis. Exp. (121), e55330, doi:10.3791/55330 (2017).

View Video