Summary

Het creëren van cardiale weefsels die mechanische integratie van sferoïden tonen met behulp van 3D bioprinting

Published: July 02, 2017
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft 3D bioprinting van hartweefsel zonder het gebruik van biomaterialen. 3D bioprinted cardiac patches vertonen mechanische integratie van component sferoïden en zijn zeer veelbelovend in hartweefselregeneratie en als 3D-modellen van hart-en vaatziekten.

Abstract

Dit protocol beschrijft 3D bioprinting van hartweefsel zonder gebruik van biomaterialen, waarbij alleen cellen worden gebruikt. Cardiomyocyten, endotheelcellen en fibroblasten worden eerst geïsoleerd, geteld en gemengd bij gewenste celverhoudingen. Ze worden gecultiveerd in individuele putten in ultra-low attachment 96-wells platen. Binnen 3 dagen slaat er spheroidsvorm. Deze sferoïden worden dan opgevangen door een mondstuk met vacuümzuigkracht en gemonteerd op een naald array met behulp van een 3D bioprinter. De sferoïden mogen dan op de naald array zitten. Drie dagen na 3D bioprinting worden de sferoïden verwijderd als een intacte patch, die al spontaan slaat. 3D bioprinted cardiac patches vertonen mechanische integratie van component sferoïden en zijn zeer veelbelovend in hartweefselregeneratie en als 3D-modellen van hart-en vaatziekten.

Introduction

Er zijn veel verschillende methoden van 3D bioprinting 1 , 2 , 3 . 3D bioprinting wordt vaak geclassificeerd door printtechnologie 1 , met voorbeelden zoals inkjet bioprinting, microextrusion bioprinting, laser assisted bioprinting, een combinatie van methoden of nieuwere benaderingen. 3D bioprinting kan ook worden ingedeeld in steigervrije of steigerafhankelijke methoden 4 . De meeste methoden van 3D bioprinting zijn steigerafhankelijk, waar biomaterialen nodig zijn, bijv. Bioinks 5 of steigers 6 . Echter, steigerafhankelijke 3D bioprinting ondervindt veel problemen en beperkingen 4 , 7 , zoals immunogeniciteit van steigermateriaal, kosten van eigen bio-verbindingen, trage snelheid en toxiciteit van afbraakproducten.

SCAFVouwvrije hartweefseltechniek met behulp van sferoïden is geprobeerd 8 , met het potentieel om deze nadelen van steigerafhankelijke weefseltechniek te overwinnen. Zoals echter door de auteurs in dat papier werd erkend, was het moeilijk om robuuste handgreep en positionering van spheroïden op vaste locaties, in het proces van biofabricatie. Het gelijktijdige gebruik van 3D bioprinting en spiraal gebaseerde weefseltechniek heeft de mogelijkheid om deze moeilijkheden te overwinnen. In dit protocol beschrijven we 3D bioprinting van hartweefsels zonder andere biomaterialen, waarbij alleen cellen in de vorm van sferoïden worden gebruikt.

Steigervrije spheroïde-gebaseerde 3D bioprinters 9 hebben de mogelijkheid om individuele spheroïden op te halen met behulp van vacuümzuigen en positioneren op een naald array. Het concept van positionering sferoïden op een naald array in 3D bioprinting, is geïnspireerd op het gebruik van naald arrays (bekend als " kenzan ") in de oude JapaNese kunst van bloemstuk, ikebana. Met dit systeem kunnen spheroïden precies in elke configuratie gepositioneerd worden, waardoor de individuele spheroïden over een korte periode samenvoegen om een ​​3D bioprintend weefsel te creëren. Met deze methode kunnen spheroïden gemakkelijk worden gemanipuleerd, met mogelijke implicaties voor de toekomst van de stellingvrije organische biofabricatie.

Protocol

1. Bereiding van cardiomyocyten Genereer en kweek menselijke geïnduceerde pluripotente stamcellen (hiPSCs) op 6-putjes platen die zijn bekleed met basismembraanmatrix zoals beschreven 10 . Differentieer hiPSCs in hiPSC afgeleide cardiomyocyten (hiPSC-CMs) met behulp van eerder beschreven methoden 11 , 12 . Op dag 19 na differentiatie isoleren de cardiomyocyten met behulp van 2 ml trypsine / EDTA 0,05% in el…

Representative Results

Aan het einde van stap 4.4 (co-cultuur) moeten de cellen in elke put bij de onderkant van de ultra-lage bevestiging 96-putjes U-bodemplaten samenvoegen om de spheroïden door zwaartekracht te vormen. Deze sferoïden bevatten hiPSC-CM, HCF's en HUVECs, en kunnen visueel geïnspecteerd worden onder lichtmicroscopie, waar ze circulair door tweedimensionale projectie moeten worden weergegeven ( Figuur 1 ). Aan het einde van stap 6.3, moet de 3D bioprinted ca…

Discussion

It is important to use beating, functional spheroids for 3D bioprinting. If spheroids are not beating, continuing to use them will invariably result in a non-functional 3D bioprinted patch.

One benefit of this approach is the ability to manipulate the cell content of the patch by varying the total number of cells and the percentage of cardiomyocytes, endothelial cells, and fibroblasts in the spheroids. This allows for many different types of cardiac patches to be printed, with varying histolog…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs erkennen de volgende financieringsbronnen: Magic That Matters Fund voor Cardiovascular Research en het Maryland Stamcellen Research Fund (2016-MSCRFI-2735).

Materials

Geltrex Invitrogen  A1413202
Trypsin/EDTA 0.05% Thermo Fisher 15400054
Defined Trypsin inhibitor 0.0125% Thermo Fisher R007100
RPMI Cell Media Invitrogen 11875-093 RPMI supplemented with B27 constitutes HIPSC-CM culture media
B-27 Supplement Thermo Fisher 17504044 RPMI supplemented with B27 constitutes HIPSC-CM culture media
Countess Automated Cell Counter Invitrogen C10227
Human cardiac fibroblasts (adult ventricular type) Sciencell 6310
Human umbilical vein endothelial cells Lonza CC-2935
PrimeSurface ultra-low attachment 96-well U-bottom plates  Akita Sumitomo Bakelite Co. MS-9096UZ
Regenova Bio 3D Printer Cyfuse Biomedical K.K. N/A www.cyfusebio.com/en/
Trypan Blue Solution, 0.4% Thermo Fisher 15250061
Troponin T Antibody Thermo Fisher 701620
Connexin 43 (Cx43) Antibody Chemicon MAB3068
ProLong Gold Antifade Mountant with DAPI Thermo Fisher P36935

References

  1. Murphy, S. V., Atala, A. 3D bioprinting of tissues and organs. Nat Biotech. 32, 773-785 (2014).
  2. Bajaj, P., Schweller, R. M., Khademhosseini, A., West, J. L., Bashir, R. 3D biofabrication strategies for tissue engineering and regenerative medicine. Ann Rev Biomed Eng. 16, 247-276 (2014).
  3. Patra, S., Young, V. A Review of 3D Printing Techniques and the Future in Biofabrication of Bioprinted Tissue. Cell Biochem Biophy. 74, 93-98 (2016).
  4. Moldovan, N. I., Hibino, N., Nakayama, K. Principles of the Kenzan Method for Robotic Cell Spheroid-Based Three-Dimensional Bioprinting. Tissue Eng Part B Rev. , (2017).
  5. Cui, X., Boland, T., D’Lima, D. D., Lotz, M. K. Thermal inkjet printing in tissue engineering and regenerative medicine. Recent Pat Drug Deliv Formul. 6, 149-155 (2012).
  6. Murphy, C. M., Haugh, M. G., O’Brien, F. J. The effect of mean pore size on cell attachment, proliferation and migration in collagen-glycosaminoglycan scaffolds for bone tissue engineering. Biomater. 31, 461-466 (2010).
  7. Noguchi, R., et al. Development of a three-dimensional pre-vascularized scaffold-free contractile cardiac patch for treating heart disease. J Heart Lung Transpl. 35, 137-145 (2016).
  8. Mironov, V., et al. Organ printing: tissue spheroids as building blocks. Biomater. 30, 2164-2174 (2009).
  9. Itoh, M., et al. Scaffold-Free Tubular Tissues Created by a Bio-3D Printer Undergo Remodeling and Endothelialization when Implanted in Rat Aortae. PloS One. 10, e0136681 (2015).
  10. Lieu, P. T., Fontes, A., Vemuri, M. C., Macarthur, C. C. Generation of induced pluripotent stem cells with CytoTune, a non-integrating Sendai virus. Methods Mol Biol. 997, 45-56 (2013).
  11. Li, S., Cheng, H., Tomaselli, G. F., Li, R. A. Mechanistic basis of excitation-contraction coupling in human pluripotent stem cell-derived ventricular cardiomyocytes revealed by Ca2+ spark characteristics: direct evidence of functional Ca2+-induced Ca2+ release. Heart Rhythm. 11, 133-140 (2014).
  12. Boheler, K. R., et al. A Human Pluripotent Stem Cell Surface N-Glycoproteome Resource Reveals Markers, Extracellular Epitopes, and Drug Targets. Stem Cell Rep. 3, 185-203 (2014).
  13. ScienCell Research Laboratories. . Human Cardiac Fibroblasts (adult ventricular) Product Sheet. , (2017).
  14. Lonza Walkersville, Inc. . Endothelial Cell Systems – Technical Information & Instructions.,. , (2015).
  15. Thermo Fisher Scientific, Inc. . Immunofluorescence Method for IHC Detection. , (2017).
  16. Murata, D., et al. A preliminary study of osteochondral regeneration using a scaffold-free three-dimensional construct of porcine adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. J Orthop Surg Res. 10, (2015).
  17. Mosadegh, B., Xiong, G., Dunham, S., Min, J. K. Current progress in 3D printing for cardiovascular tissue engineering. Biomed Mater. 10, 034002 (2015).
  18. Chang, C. C., Boland, E. D., Williams, S. K., Hoying, J. B. Direct-write Bioprinting Three-Dimensional Biohybrid Systems for Future Regenerative Therapies. J Biomed Mater Res. Part B, Appl Biomater. 98, 160-170 (2011).
  19. Lee, J. M., Sing, S. L., Tan, E. Y. S., Yeong, W. Y. Bioprinting in cardiovascular tissue engineering: a review. International J Bioprinting. 2 (2016), (2016).
check_url/fr/55438?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ong, C. S., Fukunishi, T., Nashed, A., Blazeski, A., Zhang, H., Hardy, S., DiSilvestre, D., Vricella, L., Conte, J., Tung, L., Tomaselli, G., Hibino, N. Creation of Cardiac Tissue Exhibiting Mechanical Integration of Spheroids Using 3D Bioprinting. J. Vis. Exp. (125), e55438, doi:10.3791/55438 (2017).

View Video