Summary

Novel analyse for Cold nociception i<em> Drosophila</em> Larver

Published: April 03, 2017
doi:

Summary

Her viser vi en ny analyse for å studere kaldt nociception i Drosophila larver. Denne analysen anvender et spesialbygd Peltier sonde stand til å påføre en fokal skadelig kald stimulus og resulterer i kvantifiserbare kald spesiell oppførsel. Denne teknikken vil tillate ytterligere cellulære og molekylære disseksjon av kald nocicepsjon.

Abstract

Hvordan organismer oppfatte og svare på skadelige temperaturer er fortsatt dårlig forstått. Videre er mekanismene bak sensibilisering av sensoriske maskineri, slik som hos pasienter med perifer nevropati eller skader indusert sensitivering, er ikke godt karakterisert. Den genetisk medgjørlig Drosophila modell er blitt brukt til å studere celler og gener som er nødvendige for skadelige varmedetektor, som har gitt multiple konserverte gener av interesse. Lite er kjent om imidlertid cellene og reseptorer er viktige for skadelige kald avføling. Selv om Drosophila ikke overleve langvarig eksponering for kulde (≤10 ° C), og vil unngå kjølig, og foretrakk varmere temperaturer i atferdspreferanse analyser, hvordan de føler og muligens unngå skadelige kalde stimuli har nylig blitt undersøkt.

Her beskriver vi og karakter den første skadelige kaldt (≤10 ºC) atferdsanalyse iDrosophila. Ved hjelp av dette verktøyet og analysen viser vi en etterforsker hvordan kvalitativt og kvantitativt vurdere kalde nociceptive atferd. Dette kan gjøres ved vanlige / sunne dyrkningsbetingelser, eller antagelig i sammenheng med sykdom, skade eller sensibilisering. Videre kan denne analysen anvendes for å larver valgt for ønskede genotyper, noe som kan påvirke thermosensation, smerte eller nociseptiv sensibilisering. Gitt at smerte er en svært konservert prosess, ved hjelp av denne analysen for å studere termisk nocisepsjon sannsynligvis vil fange opp viktige forståelse av smerte prosesser i andre arter, inkludert virveldyr.

Introduction

Drosophila har vist seg å være svært nyttig for identifisering av nye konserverte gener og neuronal kretser som ligger til grunn komplekse problemer. Fluer tilveiebringe en sofistikert genetisk verktøykasse og et forenklet nervesystemet som gir mulighet for nøyaktig genetisk manipulasjon og neuronal 1, 2, 3, 4 for å dissekere de cellulære og molekylære baser av nociception 5, 6, 7. Larver er spesielt nyttig for disse analysene, gitt at atferdsmessige analyser for svak berøring 8, 9, 10, skadelige varme 11, 12, 13 og mekanisk følelse av skadelige stimuli 4, </sup> 11 allerede har blitt etablert, og den gjennomsiktige larve hårstråene gjør det mulig for levende eller fast avbildning av overhuden og underliggende sensoriske nevroner. Nylig har en analyse for skadelige kaldt også utviklet 7, som vi beskriver i mer detalj her.

Ved hjelp av en fin, konisk tupp kald probe, viser vi at Drosophila larver oppviser et sett av kald-spesifikt reaktive oppførsel, forskjellig fra oppførsel observert under normal bevegelse, etter svak berøring eller etter hard mekanisk eller høy temperatur stimuli 7, 8, 11 . De kalde spesifikke atferd omfatter en robust hele kroppen kontraksjon (CT), en 45-90º høyning av de bakre segmenter (PR) og en samtidig heving av fremre og bakre segmenter inn i en U-form (US). Forekomsten av disse problemene øker med synkende temperatur, men hver topper ved slett forskjellige kalde temperaturer. Nylige studier tyder på at CT-responser blir formidlet av forskjellige perifere sensoriske neuroner enn de som reagerer på skadelig varme eller sterke mekaniske stimuli 7.

Mye som virveldyr nociseptorer, Drosophila multiple dendrittisk (md) perifere sensoriske neuroner har komplekse dendrittiske strukturer som arborize gjennom epidermis 1. md neuroner er til stede i hver larvehylstersegment som rager sine aksoner til den ventrale nerve ledningen 14. md sensoriske neuroner er delt inn i fire forskjellige klasser (I-IV) på basis av dendrittiske morfologi og har varierende sensoriske funksjoner 4, 9, 10, 15, 16, 17. Mens klasse IV neuroner er nødvendig for larvesideveis krengning responserfor høy temperatur eller harde mekaniske stimuli 4, klasse III neuroner er nødvendig for svak berøring responser 9, 10 og ikke bare aktiveres av kulde, men også er nødvendig for den kalde-fremkalte atferdsmessige responser 7. Både Klasse III og klasse IV neuroner anvende diskrete forbigående reseptor potensiale (TRP) kanaler for å lette atferdsmessige respons på skadelig 7, 11, 18 og ikke-skadelige stimuli 9, 10, 17, 19. Videre er larve nocicepsjon sensitivert etter skade, på celle 20 og atferdsmessige nivåer 12, 21.

Analysen beskrevet her gjør det mulig for den quantification av enten normal eller potensielt forandres atferdsmessige responser for lave temperaturer som strekker seg fra skadelige kald (≤ 10 ° C), ufarlige kule (11-17 ° C), til omgivelsestemperatur (18-22 ° C). De lave temperaturene som anvendes i denne analysen er i stand til direkte å aktivere klasse III sensoriske neuroner, utløsning av robuste, reproduserbare kalsium øker og kald-fremkalte atferdsmessige responser, som kan være kvalitativt og kvantitativt analysert 7. Denne analysen kan brukes til larver av praktisk talt hvilken som helst genotype så vel som til larvene utsettes for forskjellige miljøforhold (endres ernæring, skader, farmakologiske midler) for å bestemme både genetiske og miljømessige faktorer som påvirker kald nociception, nociceptiv sensibilisering eller nosiseptiv plastisitet. Gitt at thermosensation er allestedsnærværende i mange arter, gir denne analysen et verdifullt verktøy for studier av nocicepsjon og kan avdekke nye genmål eller neuronal interaksjoner som vil forbedrevår forståelse av virveldyr nociception.

Den spesialbygde kald probe (se kald probe, Table of Materials) benytter en lukket sløyfe temperaturkontrollert Peltier-enhet, som kjøler aluminium akselen og den koniske spiss gjennom varmeledning. En termistor er innkapslet i den aluminium koniske spiss rapporterer sanntid temperatur på styreenheten. En kjøleribbe og vifte er festet til den termoelektriske modul for å regulere den Peltier-effekten varmebelastning (Qc) slik at den ønskede temperaturområdet (22-0 ° C) kan oppnås (se Thermal Control Unit, Table of Materials). Den kalde skadelig stimulus av den kalde sondespissen påføres for hånd til dorsal midtlinjen, for å segment (er) i samme avstand fra fremre og bakre ender (omtrent segment A4, se figur 1A) av larven. Som svar på kalde stimuli, larver produserer generelt en av tre kald-fremkalt adferd innen 10 s cutoff: en full kroppskontraksjon (CT), en 45-90º høyning av fremre og bakre segmenter inn i en U-form (USA), eller en høyning av de bakre segmentene (PR) (beskrevet i resultater). Ingen av disse atferd utføres under normal peristaltiske bevegelse eller foraging atferd. Denne oppførselen er også forskjellig fra svak berøring responser og motvilje rullende respons på høy temperatur eller skadelige mekaniske stimuli.

Protocol

1. Fremstilling av larver Hev aksjer eller genetiske krysninger i en 25 ° C inkubator. Ved dyrking av et kors, bruke 20-25 jomfrue hunner og hanner 15-20 per ampulle inneholdende vanlig maismel fluemateriale. Tillate kvinner å legge egg i ca 48 timer før de overføres til en ny beholder med mat. 4-5 dager etter egg lay, samle 3. stadiums larver av den ønskede genotype ved forsiktig sprut en strøm av vann inn i bløt mat og larver, og helle ut innholdet i en middels…

Representative Results

Drosophila larver beveger seg med en peristaltisk bevegelse som inkluderer tilfeldige pauser, hodebevegelser, og endringer i retning 22. Som svar på fokal påføring av et skadelig stimulus kald imidlertid larver oppviser et sett med unike oppførsel, i motsetning motvilje laterale rull til skadelig varme og mekaniske stimuli. Denne oppførselen er også forskjellig fra responsene til svak berøring 8, <sup class="xref"…

Discussion

Analysen som er beskrevet her kan anvendes for å kvalitativt og kvantitativt vurdere nocisepsjon eller nociseptiv sensibilisering hos larver av forskjellige genetiske bakgrunner, miljøpåvirkninger, og / eller skade-induserte tilstander. Etter denne analysen muliggjør for fokal anvendelse av en kald stimulus, med dette verktøyet kan en fastsette funksjonen av en undergruppe av perifere sensoriske neuroner spesielt i å svare på kalde temperaturer. Interessant disse kalde-fremkalt atferd synes å utnytte forskjellig…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Sarah Wu og Camille Graham for å utvikle tidlige faser av kald sonde analysen, Bloomington Drosophila Stock Center for flue aksjer, og Galko lab medlemmer for kritisk lesing av manuskriptet. Dette arbeidet ble støttet av NIH NRSA (NIH F31NS083306) til HNT, og ved NIH R01NS069828, R21NS087360 og University of Texas MD Anderson Clark Fellowship i grunnforskning til MJG.

Materials

Cold Probe Pro-Dev Engineering Custom-built on demand Part numbers and construction details can be provided on request
Thermal Control Unit TE Technology Custom Built enclosure Part numbers and construction details can be provided on request
Zeiss Stemi 2000 microscope Zeiss NT55-605
Fiber-Lite MI-150 High Intensity Illuminator Dolan-Jenner Industries. A20500
Schott Dual Gooseneck 23 inch Fiber Optic Light Guide Schott North America, Inc. Schott A08575
Forceps FST FS-1670 Used to sort and handle larvae. Be sure to smooth and blunt forceps tips slightly to lower the risk of accidently puncturing or injuring the larvae
Paintbrush Dick Blick Art Materials 06762-1002 Used to sort and handle larvae. It is helpful if the paintbrush is damp during use.
35 X 10 mm Polystyrene Petri Dish Falcon 351008
60 X 10 mm Polystyrene Petri Dish Falcon 351007
Piece of black vinyl (at least 2 x 2 inches) Used to provide contrast and orient larvae to the cold probe
Fisherbrand Scoopula Spatula Fisher Scientific 14-357Q Used to move food
Kimtech Science Kimwipes Fisher Scientific 06-666A Used to dry the larvae and cold probe if there is excess moisture

References

  1. Grueber, W. B., Jan, L. Y., Jan, Y. N. Tiling of the Drosophila epidermis by multidendritic sensory neurons. Development. 129 (12), 2867-2878 (2002).
  2. Gao, F. B., Brenman, J. E., Jan, L. Y., Jan, Y. N. Genes regulating dendritic outgrowth, branching, and routing in Drosophila. Genes Dev. 13 (19), 2549-2561 (1999).
  3. Sweeney, S. T., Broadie, K., Keane, J., Niemann, H., O’Kane, C. J. Targeted expression of tetanus toxin light chain in Drosophila specifically eliminates synaptic transmission and causes behavioral defects. Neuron. 14 (2), 341-351 (1995).
  4. Hwang, R. Y., et al. Nociceptive neurons protect Drosophila larvae from parasitoid wasps. Curr Biol. 17 (24), 2105-2116 (2007).
  5. Im, S. H., Galko, M. J. Pokes, sunburn, and hot sauce: Drosophila as an emerging model for the biology of nociception. Dev Dyn. 241 (1), 16-26 (2012).
  6. Milinkeviciute, G., Gentile, C., Neely, G. G. Drosophila as a tool for studying the conserved genetics of pain. Clin Genet. 82 (4), 359-366 (2012).
  7. Turner, H. N., et al. The TRP Channels Pkd2, NompC, and Trpm Act in Cold-Sensing Neurons to Mediate Unique Aversive Behaviors to Noxious Cold in Drosophila. Curr Biol. , (2016).
  8. Kernan, M., Cowan, D., Zuker, C. Genetic dissection of mechanosensory transduction: mechanoreception-defective mutations of Drosophila. Neuron. 12 (6), 1195-1206 (1994).
  9. Tsubouchi, A., Caldwell, J. C., Tracey, W. D. Dendritic filopodia, Ripped Pocket, NOMPC, and NMDARs contribute to the sense of touch in Drosophila larvae. Curr Biol. 22 (22), 2124-2134 (2012).
  10. Yan, Z., et al. Drosophila NOMPC is a mechanotransduction channel subunit for gentle-touch sensation. Nature. 493 (7431), 221-225 (2013).
  11. Tracey, W. D., Wilson, R. I., Laurent, G., Benzer, S. painless, a Drosophila gene essential for nociception. Cell. 113 (2), 261-273 (2003).
  12. Babcock, D. T., Landry, C., Galko, M. J. Cytokine signaling mediates UV-induced nociceptive sensitization in Drosophila larvae. Curr Biol. 19 (10), 799-806 (2009).
  13. Chattopadhyay, A., Gilstrap, A. V., Galko, M. J. Local and global methods of assessing thermal nociception in Drosophila larvae. J Vis Exp. (63), e3837 (2012).
  14. Grueber, W. B., et al. Projections of Drosophila multidendritic neurons in the central nervous system: links with peripheral dendrite morphology. Development. 134 (1), 55-64 (2007).
  15. Hughes, C. L., Thomas, J. B. A sensory feedback circuit coordinates muscle activity in Drosophila. Mol Cell Neurosci. 35 (2), 383-396 (2007).
  16. Zhong, L., Hwang, R. Y., Tracey, W. D. Pickpocket is a DEG/ENaC protein required for mechanical nociception in Drosophila larvae. Curr Biol. 20 (5), 429-434 (2010).
  17. Xiang, Y., et al. Light-avoidance-mediating photoreceptors tile the Drosophila larval body wall. Nature. 468 (7326), 921-926 (2010).
  18. Neely, G. G., et al. TrpA1 regulates thermal nociception in Drosophila. PLoS One. 6 (8), e24343 (2011).
  19. Zhou, Y., Cameron, S., Chang, W. T., Rao, Y. Control of directional change after mechanical stimulation in Drosophila. Mol Brain. 5, 39 (2012).
  20. Im, S. H., et al. Tachykinin acts upstream of autocrine Hedgehog signaling during nociceptive sensitization in Drosophila. Elife. 4, e10735 (2015).
  21. Babcock, D. T., et al. Hedgehog signaling regulates nociceptive sensitization. Curr Biol. 21 (18), 1525-1533 (2011).
  22. Berrigan, D., Pepin, D. J. How Maggots Move – Allometry and Kinematics of Crawling in Larval Diptera. J. Insect Physiol. 41 (4), 329-337 (1995).
  23. Galko, M. J., Krasnow, M. A. Cellular and genetic analysis of wound healing in Drosophila larvae. PLoS Biol. 2 (8), E239 (2004).
  24. Burra, S., Wang, Y., Brock, A. R., Galko, M. J. Using Drosophila larvae to study epidermal wound closure and inflammation. Methods Mol Biol. 1037, 449-461 (2013).
  25. Dar, A. C., Das, T. K., Shokat, K. M., Cagan, R. L. Chemical genetic discovery of targets and anti-targets for cancer polypharmacology. Nature. 486 (7401), 80-84 (2012).
  26. Pandey, U. B., Nichols, C. D. Human disease models in Drosophila melanogaster and the role of the fly in therapeutic drug discovery. Pharmacol Rev. 63 (2), 411-436 (2011).
  27. Gill, R. D. Multistate life-tables and regression models. Math Popul Stud. 3 (4), 259-276 (1992).
  28. Mantel, N. Ranking procedures for arbitrarily restricted observation. Biometrics. 23 (1), 65-78 (1967).
  29. Breslow, N. A generalized Kruskal-Wallis test for comparing K samples subject to unequal patterns of censorship. Biometrika. 57 (3), 579-594 (1970).
  30. Gehan, E. A. A generalized wilcoxon test for comparing arbitrarily singly-censored samples. Biometrika. 52, 203-223 (1965).

Play Video

Citer Cet Article
Turner, H. N., Landry, C., Galko, M. J. Novel Assay for Cold Nociception in Drosophila Larvae. J. Vis. Exp. (122), e55568, doi:10.3791/55568 (2017).

View Video