Summary

Analys av retinsyra-inducerade Neural differentiering av Mouse embryonala stamceller i två och tre-dimensionella Embryoid organ

Published: April 22, 2017
doi:

Summary

Vi beskriver en teknik för användning av murina embryonala stamceller för generering av två eller tre dimensionella embryoidkroppar. Vi förklarar sedan hur man framkalla neural differentiering av embryoida kroppens celler av retinoinsyra och hur man analyserar deras tillstånd av differentiering av stamceller markör immunofluorescens och immunoblotting.

Abstract

Mus embryonala stamceller (ESC) som isolerats från den inre massan av blastocysten (typiskt vid dag E3.5), kan användas som in vitro-modellsystem för att studera tidig embryonal utveckling. I frånvaro av leukemihämmande faktor (LIF), ESC differentierar som standard till neurala prekursorceller. De kan samlat till en tredimensionell (3D) sfäriska aggregat benämnda embryoid kropp (EB) på grund av dess likhet med det tidiga stadiet embryot. EBs kan ympas på fibronektinbelagda täckglas, där de expanderar genom att odla två dimensionella (2D) förlängningar, eller implanteras i 3D kollagenmatriser där de fortsätter att växa som sfäroider, och differentierar till de tre groddblad: endodermala, mesodermala och ektodermalt. 3D collagen kulturen härmar in vivo miljö närmare än 2D EBS. 2D EB kulturen underlättar analys genom immunofluorescens och immunoblotting att spåra differentiering. Vi har utvecklat en tvåstegs neural differentieringtion-protokollet. I det första steget, är EBs genereras av hängdropp- teknik, och, samtidigt, induceras att differentiera genom exponering för retinsyra (RA). I det andra steget, neurala differentieringsfortskrider i en 2D- eller 3D-format i frånvaro av RA.

Introduction

ESCs härrör från blastocysten inre cellmassan. Dessa celler är pluripotenta, dvs de har förmågan att differentieras till alla celltyper hos organismen ursprungsland. ESC in vitro differentiering är av stort intresse som ett experimentellt system för att utreda utvecklingsvägar och mekanismer. Det erbjuder en potent och flexibel modell för att testa nya terapeutiska metoder för korrigering av cell- och vävnads dysfunktion. EB rekapitulera många aspekter av celldifferentiering under tidig embryogenes. I synnerhet, kan EBs användas när embryonal dödlighet gör det svårt att bestämma den cellulära basen av de embryonala defekter 1, 2. EBs kan bildas antingen av den hängande droppen eller vätskesuspensionstekniker 3. Fördelen av den förra är förmågan att generera EBs av konsekvent storlek och densitet, vilket underlättar experimentell reproducerbarhet.

<p class = "jove_content"> Interaktion med extracellulära matrix (ECM) adhesionsproteiner kan påverka motilitet och överlevnad av vidhäftande celler. I 2D-odlingssystemet, är fibronektin ofta tillämpas för att öka cellvidhäftning till substratet. Fibronektin är ett basal lamina komponent som känns igen av 10 typer av cellytan grin heterodimerer 4.

RA är en liten lipofil metabolit av vitamin A som inducerar neural differentiering 5, 6. Höga koncentrationer av RA främja neural genexpression och undertrycker mesodermala genuttryck under EB formation 7, 8. RA är producerad av vitamin A oxidation till retinaldehyd genom antingen alkohol eller retinol dehydrogenas, följt av retinaldehyd oxidation till den slutliga produkten genom retinaldehyd dehydrogenas 9. Neural differentiering kräver transport av RA från cytoplasman till kärnan genom cellulär RA-bindande protein 2 (CRABP2). I kärnan, binder RA till dess besläktade receptor komplex bestående av en RAR-RXR heterodimer 10. Detta resulterar i rekrytering av transkriptionella co-aktivatorer, och initieringen av transkription 9, 11. Vidare RA befrämjar nedbrytningen av fosforylerade (aktiva) Smad1, således antagonisera BMP och SMAD signalering 12. Förutom dessa aktiviteter ökar RA Pax6 uttryck, en transkriptionsfaktor som stöder neural differentiering 13. RA-signalering moduleras av sirtuin-1 (SIRT1), en nukleär nikotinamidadenindinukleotid (NAD +) – beroende enzym som deacetylates CRABP2, interferera med dess translokation till kärnan, och således med RA bindning till RAR-RXR heterodimer 14, 15, 16.

e_content "> Vårt mål i utformningen av RA-behandlade EB protokoll som beskrivs här är att optimera neural differentiering för att underlätta in vitro-analys av de signalvägar som reglerar ESC differentiering till neuronala prekursorceller. En av fördelarna med detta protokoll är underlättande av analys av cellfunktionen genom immunofluorescens. 3D EBs är inte väl penetrerad av antikroppar och är svåra att bilden. EB dissociation till en 2D monoskikt vid specifika tidpunkter under neural differentiering underlättar immunomärkning och avbildning av cellerna genom konfokalmikroskopi.

Protocol

1. Kultur av Mus Embryonala fibroblaster (MEF) Förbereda MEF-medium, Dulbeccos modifierade Eagles medium (DMEM, hög-glukos), kompletterat med 15% fetalt bovint serum (FBS). Coat 100 mm cellodlingsskålar med 0,5% gelatinlösning under 30 min vid rumstemperatur (RT). Räkna MEFs med användning av en cytometer. Avlägsna gelatinlösning och omedelbart häll MEF-medium förvärmas till 37 ° C. Snabbt tina ampuller med mitomycin C-behandlade MEFs i ett 37 ° C vattenbad under 2 minuter, d?…

Representative Results

Oct4, Nanog och SOX2 är kärntranskriptionsfaktorer som ger ESC självförnyelse och pluripotens. Vi tillämpade ovanstående protokoll för att jämföra den neurala differentieringen av ESCs från vildtyp och från en stam av genetiskt modifierade möss där Syx, en gen som kodar för det RhoA specifika utbyte faktor Syx, störs. Vi hade inblandad Syx i angiogenes 18. Vi märkte skillnader i beteenden EBS aggregerade från Syx + / +…

Discussion

I detta protokoll presenterar vi ett relativt enkelt och tillgänglig metod för att studera neural differentiering av murina ESCs. I tidigare protokoll, till RA till mediet vid dag 2 eller dag 4 av EB hängdropp- 8 eller genom suspensionsodling 7, respektive, eller omedelbart efter EB hängande droppe aggregering 21. I protokollet vi fram var RA lagt tidigare. Trots den tidigare införandet av RA till EBS bildas av suspensionskultur, producerade de…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie stöddes av NIH bidrag R01 HL119984 till AH

Materials

Materials
MEFs EMD Millipore PMEF-CF ESC feeder layer
ESC EMD Millipore CMTI-2
Cell culture dish (60 mm) Eppendorf 30701119 Cell culture
Cell culture dish (100 mm) Falcon 353003 Cell culture
Petri dish (100 mm) Corning 351029 Hanging drops
24-well plate Greiner Bio-One 662160 2D EBs
6-well plate Eppendorf 30720113 Transfection
Dark 1.5 ml centrifuge tube Celltreat Scientific Products 229437 RA stock solution
Microscope cover-glass Fisherbrand 12-545-80 Circular, 12 mm diameter
Superfrost-plus microscope slides Fisherbrand 12-550-15
3D collagen culture kit EMD Millipore ECM675 3D culture
Effectene Transfection Reagent Qiagen 301427 Stem cell transfection
Microcon Centrifugal Filters (10 kDa) EMD Millipore MRCPRT010 Protein concentration
Name  Company Catalog Number Comments
Reagents
DMEM Lonza 12-709F MEFs culture
IMDM Gibco 12440-046 ESCs culture
Fetal bovine serum (FBS) EMD Millipore ES-009-B ESCs culture
Gelatin Sigma-Aldrich G2625 Dish coating
LIF R&D Systems 8878-LF-025 To maintain ESC pluripotency
MEM Non-Essential Amino Acids Solutions Gibco 11140050 Cell culture
2-Mercaptoethanol Gibco 21985023 Cell culture
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140122 Cell culture
Gentamicin Gibco 15750060 Cell culture
MycoZap Plus-PR Lonza VZA-2022 Cell culture
0.25% Trypsin-EDTA Gibco 25200-072 Cell culture
DMSO Sigma-Aldrich D2650
All-trans-retinoic acid Sigma-Aldrich R2625-50MG Induction of neural differentiation
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A7030-50G Blocking and antibody dilution 
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787-100ML Cell membrane permeabilization
Cell strainer Corning 352360
Prolong Gold anti-fade reagent with DAPI Life Tech. P36931 Mounting reagent
16% Paraformaldehyde  Electron Microscopy Sciences 15710 Cell fixation
Fibronectin R&D Systems 1030-FN Dish coating
PBS Gibco 10010049
Collagenase type I Worthington Biochem. Corp LS004196 EB dissociation
Name  Company Catalog Number Comments
Primary Antibodies
Nestin (Rat-401) Santa Cruz Biotech sc-33677 Detection of neural differentiation
Oct4 Santa Cruz Biotech sc-5279 Detection of neural differentiation
Nanog Bethyl Laboratories A300-398A Detection of neural differentiation
Sox2 Cell Signaling 3579 Detection of neural differentiation
Tubulin b3 (AA10) Santa Cruz Biotech sc-80016 Detection of neural differentiation
Name  Company Catalog Number Comments
Secondary Antibodies
Donkey anti-Mouse-Alexa555 Life Tech. A31570 Immunofluorescence
Donkey anti-mouse-Alexa488  Life Tech. A21202 Immunofluorescence
Name  Company Catalog Number Comments
Instruments
Wide-field microscope Nikon Eclipse TS100 Cell culture imaging
Confocal microscope Nikon C2 Immunofluorescence imaging

References

  1. Hopfl, G., Gassmann, M., Desbaillets, I. Differentiating embryonic stem cells into embryoid bodies. Methods Mol Biol. 254, 79-98 (2004).
  2. Itskovitz-Eldor, J., et al. Differentiation of human embryonic stem cells into embryoid bodies compromising the three embryonic germ layers. Mol Med. 6 (2), 88-95 (2000).
  3. Dang, S. M., Kyba, M., Perlingeiro, R., Daley, G. Q., Zandstra, P. W. Efficiency of embryoid body formation and hematopoietic development from embryonic stem cells in different culture systems. Biotechnol Bioeng. 78 (4), 442-453 (2002).
  4. Johansson, S., Svineng, G., Wennerberg, K., Armulik, A., Lohikangas, L. Fibronectin-integrin interactions. Front Biosci. 2, d126-d146 (1997).
  5. Blumberg, B. An essential role for retinoid signaling in anteroposterior neural specification and neuronal differentiation. Semin Cell Dev Biol. 8 (4), 417-428 (1997).
  6. Ross, S. A., McCaffery, P. J., Drager, U. C., De Luca, L. M. Retinoids in embryonal development. Physiol Rev. 80 (3), 1021-1054 (2000).
  7. Bain, G., Ray, W. J., Yao, M., Gottlieb, D. I. Retinoic acid promotes neural and represses mesodermal gene expression in mouse embryonic stem cells in culture. Biochem Biophys Res Commun. 223 (3), 691-694 (1996).
  8. Okada, Y., Shimazaki, T., Sobue, G., Okano, H. Retinoic-acid-concentration-dependent acquisition of neural cell identity during in vitro differentiation of mouse embryonic stem cells. Dev Biol. 275 (1), 124-142 (2004).
  9. Duester, G. Retinoic acid synthesis and signaling during early organogenesis. Cell. 134 (6), 921-931 (2008).
  10. Niederreither, K., Dolle, P. Retinoic acid in development: towards an integrated view. Nat Rev Genet. 9 (7), 541-553 (2008).
  11. Maden, M. Retinoic acid in the development, regeneration and maintenance of the nervous system. Nat Rev Neurosci. 8 (10), 755-765 (2007).
  12. Sheng, N., et al. Retinoic acid regulates bone morphogenic protein signal duration by promoting the degradation of phosphorylated Smad1. Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (44), 18886-18891 (2010).
  13. Gajovic, S., St-Onge, L., Yokota, Y., Gruss, P. Retinoic acid mediates Pax6 expression during in vitro differentiation of embryonic stem cells. Differentiation. 62 (4), 187-192 (1997).
  14. Dong, D., Ruuska, S. E., Levinthal, D. J., Noy, N. Distinct roles for cellular retinoic acid-binding proteins I and II in regulating signaling by retinoic acid. J Biol Chem. 274 (34), 23695-23698 (1999).
  15. Sessler, R. J., Noy, N. A ligand-activated nuclear localization signal in cellular retinoic acid binding protein-II. Mol Cell. 18 (3), 343-353 (2005).
  16. Tang, S., et al. SIRT1-Mediated Deacetylation of CRABPII Regulates Cellular Retinoic Acid Signaling and Modulates Embryonic Stem Cell Differentiation. Mol Cell. 55 (6), 843-855 (2014).
  17. Yang, J., et al. RhoA inhibits neural differentiation in murine stem cells through multiple mechanisms. Sci Signal. 9 (438), ra76 (2016).
  18. Garnaas, M. K., et al. Syx, a RhoA guanine exchange factor, is essential for angiogenesis in Vivo. Circ Res. 103 (7), 710-716 (2008).
  19. Chou, Y. H., Khuon, S., Herrmann, H., Goldman, R. D. Nestin promotes the phosphorylation-dependent disassembly of vimentin intermediate filaments during mitosis. Mol Biol Cell. 14 (4), 1468-1478 (2003).
  20. Arai, T., Matsumoto, G. Subcellular localization of functionally differentiated microtubules in squid neurons: regional distribution of microtubule-associated proteins and beta-tubulin isotypes. J Neurochem. 51 (6), 1825-1838 (1988).
  21. Arnhold, S., Klein, H., Semkova, I., Addicks, K., Schraermeyer, U. Neurally selected embryonic stem cells induce tumor formation after long-term survival following engraftment into the subretinal space. Invest Ophthalmol Vis Sci. 45 (12), 4251-4255 (2004).
  22. Liu, Y., et al. Retinoic acid receptor beta mediates the growth-inhibitory effect of retinoic acid by promoting apoptosis in human breast cancer cells. Mol Cell Biol. 16 (3), 1138-1149 (1996).
  23. Altucci, L., et al. Retinoic acid-induced apoptosis in leukemia cells is mediated by paracrine action of tumor-selective death ligand TRAIL. Nat Med. 7 (6), 680-686 (2001).
  24. Pettersson, F., Dalgleish, A. G., Bissonnette, R. P., Colston, K. W. Retinoids cause apoptosis in pancreatic cancer cells via activation of RAR-gamma and altered expression of Bcl-2/Bax. Br J Cancer. 87 (5), 555-561 (2002).
  25. Kothapalli, C. R., Kamm, R. D. 3D matrix microenvironment for targeted differentiation of embryonic stem cells into neural and glial lineages. Biomaterials. 34 (25), 5995-6007 (2013).
  26. Cai, J., et al. BMP and TGF-beta pathway mediators are critical upstream regulators of Wnt signaling during midbrain dopamine differentiation in human pluripotent stem cells. Dev Biol. 376 (1), 62-73 (2013).
check_url/fr/55621?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Yang, J., Wu, C., Stefanescu, I., Horowitz, A. Analysis of Retinoic Acid-induced Neural Differentiation of Mouse Embryonic Stem Cells in Two and Three-dimensional Embryoid Bodies. J. Vis. Exp. (122), e55621, doi:10.3791/55621 (2017).

View Video