Insertion de maille transvaginale dans le modèle ovine
Summary
Ce protocole décrit l'implantation du maillage dans le septum rectovaginal ovins en utilisant une seule technique d'incision vaginale, avec et sans l'insertion guidée par le trocart des bras d'ancrage.
Abstract
Ce protocole décrit l'insertion de maille dans le septum rectovaginal chez le mouton en utilisant une seule technique d'incision vaginale, avec et sans l'insertion guidée par les trocarts des bras d'ancrage. Le mouton parous a subi la dissection du septum rectovaginal, suivi de l'insertion d'un implant avec ou sans quatre bras d'ancrage, tous deux conçus pour s'adapter à l'anatomie ovine. Les bras d'ancrage ont été mis en place à l'aide d'un trocart et d'une technique "à l'extérieur". Les bras crâniens ont été passés à travers les muscles obturateur, gracilis et adducteur magnus. Les bras caudaux ont été fixés près du ligament sacrotubeux, à travers les muscles du coccygeus. Cette technique permet d'imiter les interventions chirurgicales chez les femmes souffrant de prolapsus d'organe pelvien. Les espaces anatomiques et les éléments sont facilement identifiables. La partie la plus critique de la procédure est l'insertion du trocart crânien, qui peut facilement pénétrer dans la cavité péritonéale ou dans les organes pelviens environnants. ThiS peut être évité par une dissection rétropéritonéale plus étendue et en guidant le trocart plus latéralement. Cette approche n'est conçue que pour le test expérimental d'implants novateurs dans de grands modèles animaux, car l'insertion guidée par un trocart n'est actuellement pas utilisée cliniquement.
Introduction
Le prolapsus de l'organe pelvien est cliniquement diagnostiqué dans la moitié des femmes qui ont eu au moins un accouchement vaginal, mais subjectivement, cela nuit à la moitié des femmes 1 . L'essentiel de la thérapie est la reconstruction chirurgicale en utilisant des tissus indigènes ou des matériaux d'implant, mais chacune de ces méthodes a ses limites, y compris la récurrence ou les complications locales 2 , 3 , 4 . L'implant idéal n'a pas encore été identifié; Par conséquent, il existe une demande continue pour l'innovation des produits et pour le développement d'un pipeline approprié pour l'expérimentation préclinique avant l'introduction de nouveaux produits et techniques sur le marché. L'une des étapes de cette piste est l'évaluation expérimentale sur les modèles animaux 5 , 6 appropriés. Idéalement, ils devraient imiter les environnements anatomiques, biomécaniques et biologiques. Quand il s'agit deE évaluation expérimentale des implants nouveaux, ils sont généralement testés d'abord dans des modèles plus petits, soit pour la biocompatibilité, soit pour la reconstruction des défauts de la paroi abdominale. Ce type d'expériences a été critiqué, car les implants ne sont pas insérés dans la zone d'intérêt ( c'est-à-dire le vagin) 7 . Les modèles de chirurgie vagale sont plus rares, certainement lorsque l'objectif de l'expérience est de documenter les caractéristiques biomécaniques des explants. Pour cette raison, il y a eu un passage des lapins au mouton 8 . Les brebis adultes sont des modèles à gros animaux avec un vagin de taille raisonnable et accessible. Ils peuvent être utilisés pour l'évaluation à mi-parcours d'implants nouveaux, et il est possible de reproduire des expositions vaginales avec certains matériaux 9 , 10 , 11 , 12 , 13 . Non seulement les dimensions et l'anatomieDu vagin des ovins et du plancher pelvien sont comparables à ceux des humains, mais aussi l'apparition spontanée de prolapsus, qui se produit chez 15% des brebis. Les facteurs de risque de prolapsus se chevauchent ( c'est-à-dire multipartite, antécédents de POP, augmentation de la pression intra-abdominale induite par un poids corporel plus élevé ou lors du pâturage sur les collines et effets comparables des œstrogènes phyto) 6 , 14 . En Europe, les moutons sont la seule alternative raisonnable, car la recherche sur les primates non humains a été presque complètement interdite. Ici, le modèle a été pris un peu plus loin en imitant l'insertion transvaginale des implants en utilisant des trocarts et des guides pour le placement sans tension des mailles dans le septum recto-vaginal. Ceci a été suivi par la fixation de l'implant en utilisant l'ancrage avec les bras à travers les ligaments des muscles, ce qui peut être considéré comme équivalent à la pratique clinique 15 , 16 . Jusqu'à présent, cette techniqueN'a pas été étudié, bien que beaucoup croient que des complications spécifiques peuvent se produire en raison de l'utilisation de ces bandes plus longues et / ou du piercing des structures anatomiques.
Dans une étude anatomique détaillée antérieure, le plancher pelvien ovins a été comparé au bassin féminin 17 . En ce qui concerne l'ancrage de l'implant, les moutons n'ont pas le ligament sacrospinique, mais ils ont un ligament sacrotubeux très développé et large. Le nerf pudendal court ventralement, ce qui rend dangereux d'utiliser ce point de repère comme point de suspension. À l'inverse, le muscle coccygeus et son fascia, ainsi que la membrane obturatrice, sont accessibles par l'espace rectovaginal. Ici, l'accès et la position des structures anatomiques pour la fixation des bras d'ancrage sont proposés. Les instruments qui peuvent être utilisés pour positionner le maillage sont discutés. Enfin, la relation des bras ou des trocarts aux structures anatomiques adjacentes, telles que les vaisseaux et les nerfs, uneAinsi que des complications intra-opératoires potentielles, sont également décrits.
Protocol
Representative Results
Discussion
Ici, nous décrivons une procédure expérimentale chez le mouton, visant à imiter la dissection vaginale et l'insertion de maille transvaginale d'un implant avec ou sans bras d'ancrage. Les étapes et les instruments suivants ont été inspirés par des interventions chirurgicales faites pour le POP et l'incontinence urinaire 15 , 16 , 19 , 20 . Après des dissections anatomi…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Nous remercions Ivan Laermans, Rosita Kinart, Ann Lissens (Centre for Surgical Technologies, KU Leuven, Louvain, Belgique). Jo Verbinnen et Kristof Reyniers (Institut Vesalius d'Anatomie, Faculté de Médecine, KU Leuven, Louvain, Belgique) ont fourni un soutien technique lors de l'expérimentation. Nous remercions Leen Mortier pour l'aide en matière de gestion des données et des manuscrits. Nous remercions FEG Textiltechniken de fabriquer des mailles prototypes, de les stériliser et de les faire don de manière inconditionnelle pour la recherche.
Materials
| Animals: | |||
| parous female sheep (45 – 65 kg) | Zoötechnical Institute of the KU Leuven | NA | experimetnal animal |
| Sterile clothing: | |||
| sterile drape 45 x 75 cm | Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany | 33002 | other material |
| sterile OR drape 150 x 180 cm | Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany | 33009 | other material |
| sterile glowes 2x | Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany | 16652 | other material |
| sterile surgical gown 2x | Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany | 19342 | other material |
| surgical head cap 2x | Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany | 17427 | other material |
| surgical face mask 2x | Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany | 11983 | other material |
| Other surgical material | |||
| implant | FEG Textiltechnik GmbH, Aachen, Germany | NA | purposely designed implant |
| 3/0 polypropylene suture | Prolene, Ethicon, Diegem, Belgium | 8762H | suture material |
| 3/0 polygecaprone suture | Vicryl, Ethicon | J311H | suture material |
| gauze swabs 10 x 10 cm 10x, 12-ply | Lohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany | 11574 | other material |
| syringe 20 mL | Becton Dickinsosn S.A., Madrid, Spain | 300613 | aqua-dissection |
| needle 16 gauge | Terumo, Leuven, Belgium | NN-2238R | aqua-dissection |
| Surgical equipment: | |||
| blade no.22 | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 10022-00 | surgical instruments |
| Allis tissue forceps 1x | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 11091-15 | surgical instruments |
| Standart pattern forceps 1×2 theeth 1x | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 11023-14 | surgical instruments |
| Standart pattern forceps straight serrated 1x | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 11000-14 | surgical instruments |
| Scalpel handle 1x | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 10004-13 | surgical instruments |
| Halstead-Mosquito forceps 2x | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 13008-12 | surgical instruments |
| Standart pattern scissors 1x | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 14001-14 | surgical instruments |
| Metzenbaum scissors 1x | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 14016-18 | surgical instruments |
| Crile Wood needle holder 1x | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 12003-15 | surgical instruments |
| Kell forceps 1x | Fine science isntruments, Heidelberg, Germany | 13018-14 | surgical instruments |
| Long Starr Self-Retaining Retractor with eight 5mm sharp stay hooks | Cooper Surgical, Tumbull, USA | 3704 | surgical instruments |
| Heaney Simon Vaginal Retractor | Medical supplies & equipments co., Katy, Texas, USA | 403-129FSI | surgical instruments |
| Trocar (Insnare) | Bard, West Sussex, United Kingdom | NA | any trocar on market for transvaginal mesh implantation |
| Medication: | |||
| amoxilicilline clavulanate 1000mg / 300 mL (Ampiciline) | GSK, Wavre, Belgium | NA | antibiotics |
| buprenorfin 0.3 mg/mL + chlorocresol 1.35 mg/mL (Vetregesic) | Ecuphar, Oostkamp, Belgium | NA | analgesia |
| ketamin HCL 100mg/mL (Ketamine 1000) | Ceva Sante Animale, Brussels, Belgium | NA | anesthesia |
| isoflurane (IsoFlo) | Abbott Laboratories Ltd, Maidenhead, Berkshire, UK | NA | anesthesia |
| polyvidone iodium 7.5% (Braunol) | B. Braun Medical, Machelen, Belgium | NA | local desinfection |
| saline solution 500ml | B. Braun Medical, Machelen, Belgium | NA | aqua-dissection |
| Xxylazine HCl , 1 mL/50 kg | Vexylan, Ceva Sante Animale, Belgium | NA | premedication |
| atropine Sulfate 15 mg/ml (), | Viatris, Belgium | NA | premedication |
References
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