Summary

Kommer til lys Side: I Vivo overvåking av Pseudomonas aeruginosa Biofilm infeksjoner i kroniske sår i en diabetiker Hairless Murine modell

Published: October 10, 2017
doi:

Summary

Her beskriver vi en roman diabetiker murine modell utnytte hairless mus for sanntid, ikke-invasiv, overvåking av biofilm sårinfeksjoner av bioluminescent Pseudomonas aeruginosa. Denne metoden kan tilpasses å evaluere infeksjon i andre bakterie-art og genmodifiserte mikroorganismer, inkludert flere arter biofilm, og teste effekten av antibiofilm strategier.

Abstract

Tilstedeværelsen av bakterier som strukturert biofilm i kroniske sår, spesielt i diabetespasienter, antas å hindre sårheling og oppløsning. Kronisk musen sår modeller har blitt brukt for forstå underliggende samspillet mellom mikroorganismer og verten. Modeller utviklet ennå stole på bruk av håret dyr og terminal samling av såret vev for fastsettelse av levedyktig bakterier. Mens betydelig innsikt har fått med disse modellene, denne eksperimentelle prosedyren krever et stort antall dyr og prøvetaking er tidkrevende. Vi har utviklet en roman murine modell som flere optimal evaluere biofilm progresjon i kroniske sår: en) den utnytter hairless mus, eliminerer behovet for hårfjerning; b) gjelder pre-formet biofilm sår tillater for umiddelbar evalueringen av utholdenhet og effekten av disse samfunnene på host; c) overvåker biofilm progresjon av kvantifisere lys produksjon av en genmodifisert bioluminescent stamme av Pseudomonas aeruginosa, slik at sanntids overvåking av infeksjonen dermed redusere antall dyr må etter studien. I denne modellen er et enkelt full-dybde sår produsert på baksiden av STZ-indusert diabetiker hairless mus og inokulert med biofilm av P. aeruginosa bioluminescent belastningen Xen 41. Lys-output fra sårene registreres daglig i en i vivo tenkelig system, slik at i vivo og i situ rask biofilm visualisering og lokalisering av biofilm bakterier i sårene. Denne romanen metoden er fleksibel som det kan brukes å studere andre mikroorganismer, inkludert genmodifiserte arter og flere arter biofilm, og kan være av spesiell verdi i testing anti-biofilm strategier, inkludert antimikrobielle occlusive bandasjer.

Introduction

Biofilm er komplekse samfunn av mikroorganismer i en matrise polymere stoffer som har blitt markert som en medvirkende faktor for dårlig løsning av kroniske sår1. Studiet av disse godt organisert, vedvarende mikrobielle populasjoner er spesielt viktig for diabetiker pasienter hvor dårlig sirkulasjon på lemmer og endret perifere sensoriske mekanismer føre til uoppdaget lesjoner2. I USA anslås det at 15% av diabetespasienter vil utvikle minst én sår i løpet av livet. Dette betyr en økonomisk utgift på rundt 28 milliarder dollar behandling3,4, for ikke for å nevne immensurable følelsesmessige og sosiale byrden. Forstå faktorene at mikrobielle samfunn å vedvare i såret sengen og effekten disse biofilm har i helbredende hendelsene er viktig å kjøre bedre omsorg for pasientene påvirkes og drive utviklingen av nye behandlingsmetoder. Derfor er etableringen av reproduserbar og oversettbare i vivo modeller for å utforske bakteriell vert interaksjoner avgjørende.

Murine modeller har blitt utviklet for å studere virkningen av biofilm i kroniske sår. Disse modellene, men ofte utnytte håret arter og evaluere biofilm klarering av platen teller levedyktig bakterieceller forbrukeravgift vev fra ofret dyr, noe som gjør dem tidkrevende og kostbare.

Et biophotonic alternativ til endepunktet prøvetaking av dyr i evaluering infeksjon ble først foreslått av Contag et al. (1995) 5 , som utviklet en metode for å fange luminescence fra constitutively bioluminescent Salmonella typhimurium å måle antibiotikabehandling effekt. Andre studier utnytter bioluminescens-emitting bakterier fulgte. For eksempel Rochetta et al. (2001) 6 godkjent en infeksjon modell for å studere Escherichia coli lår infeksjoner i mus ved å måle luminescence bruker en intensivert kostnad – sammen enhet og senere, Kadurugamuwa et al. (2003) 7 dro fordel av Foton emitting egenskapene til en konstruert stamme av Staphylococcus aureus å undersøke effekten av flere antibiotika i et kateter såret modellen i mus.

Metoden preget Her presenterer en enkel protokoll for å få diabetes i hairless mus, produsere og vaksinere sår med pre-formet bioluminescent biofilm av P. aeruginosa, og utføre biophotonic overvåking av infeksjon med en i vivo imaging system. Det tilbyr en direkte rask i situ, ikke-invasiv og kvantitativ prosessen å evaluere biofilm i kroniske sår og i tillegg gir ytterligere analyse som mikroskopiske bildebehandling av healing sår, intermitterende blod samling for cytokin målinger og terminal vev samling for histology.

Protocol

dyreforsøk ble godkjent av institusjonelle Animal Care og bruk komiteen av Michigan State University. 1. forberedelse av Occlusive dressinger og silikon avstandsstykker kuttet gjennomsiktig occlusive dressing å gjøre rutene ca 1 cm x 1 cm med saks. Kutte 10 mm sirkler på 0,5 mm tykk silikon ark bruker en 10 mm biopsi punch. Center en 5 mm biopsi punch i 10 mm sirkelen og trykk fast for å lage et hull å danne en " bolle "-som plate som skal brukes som en spli…

Representative Results

I utviklingen av denne nye modellen, observerte vi mange fordeler i å utnytte naken SKH-1 over C57BL/6J mus, som vi har brukt tidligere. Dyr utsatt for STZ injeksjoner normalt oppleve gradvis vekttap med utbruddet av diabetes; imidlertid utført sår helbredelse eksperimenter tidligere av våre laboratorier gjengi modellen presentert av Dunn et al. (2012) 9 bruker C57BL/6J, drastiske vekttap ble observert (figur 1). I kontras…

Discussion

Her beskriver vi en ny musemodell for å studere biofilm i diabetiker kroniske sår som har mange fordeler med å opprette en reproduserbare, oversettbare og fleksibel modell.

Den første innovasjonen er bruk av hairless mus. Andre mus modeller er utviklet for å studere diabetiker kronisk sårheling10,11, men alle har stolt på bruk av håret mus krever fjerning av pelsen av prosesser som involverer enten voksing eller hår klipping k…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne gjerne takke American Diabetes Association for å støtte dette arbeidet (Grant # #7-13-BS-180), Michigan State University Research teknologi støtte anlegg for gi opplæring og tilgang i vivo tenkelig system og Michigan State University undersøkende histopatologi Lab for behandling musen biopsier for histopathological eksamen.

Materials

Opsite Smith & Nephew Model 66000041 Smith & Nephew Flexfix Opsite Transparent Adhesive Film Roll 4" x 11yards
SKH-1 mice Crl:SKH1-Hrhr Charles River Breeding Laboratories SKH1 Hairless mice, 8 weeks old
Streptozotocin (STZ) Sigma Aldrich S0130-1G Streptozocin powder, 1g
AccuChek glucometer Accu-Chek Roche Art No. 05046025001 ACCU-CHEK CompactPlus Diabetes Monitoring Care Kit
Pseudomonas aeruginosa Xen 41 Perkin Elmer 119229 Bioluminescent Pseudomonas aeruginosa
Polycarbonate membrane filters Sigma Aldrich P9199 Millipore polycarbonate membrane filters with 0.2 μm pore size
Dulbelcco phosphate buffer saline (DPBS) Sigma Aldrich D8537 PBS
Tryptic soy agar Sigma Aldrich 22091 Culture agar
Meloxicam Henry Schein Animal Health 49755 Eloxiject (Meloxicam) 5mg/mL, solution for injection
10% povidone-iodine (Betadine) Purdue Products LP 301879-OA Swabstick, Betadine Solution. Antiseptic. Individ. Wrapped, 200/case
4% paraformaldehyde Fisher Scientific AAJ61899AK Alfa Aesar Paraformaldehyde, 4% in PBS
Capillary glass tube Fisher Scientific 22-362-566 Heparinized Micro-Hematocrit Capillary Tubes
Silicone to make splints Invitrogen Life Technologies Corp P-18178 Press-to-Seal Silicone Sheet, 13cm x 18cm, 0.5mm thick, set of 5 sheets
Tryptic soy broth Sigma Aldrich 22092 Culture broth
IVIS Spectrum Perkin Elmer 124262 In vivo imaging system
IVIS Spectrum Isolation chamber Perkin Elmer 123997 XIC-3 animal isolation chamber
HEPA filter Teleflex 28022 Gibeck ISO-Gard HEPA Light number 28022
Biopsy punches VWR International Inc 21909-142 Disposable Biopsy Punch, 5mm, Sterile, pack of 50.
Biopsy punches VWR International Inc 21909-140 Disposable Biopsy Punch, 4mm, Sterile, pack of 50.
Glucose J.T.Baker 1916-01 Dextrose, Anhydrous, Powder
Citric acid Sigma Aldrich C2404-100G Citric Acid
Mastisol Eloquest Healthcare HRI 0496-0523-48 Mastisol Medical Liquid Adhesive 2/3 mL vial, box of 48
Corning 96-well black plates Fisher Scientific 07-200-567 96-well clear bottom black polysterene microplates
25 gauge 5/8 inch needle BD 305122 Regular bevel needle
Bransonic M Ultrasonic Cleaning Bath Branson Ultrasonics N/A Ultrasonic Cleaner

References

  1. James, G. A., et al. Biofilms in chronic wounds. Wound Repair Regen. 16 (1), 37-44 (2008).
  2. Gordois, A., Scuffham, P., Shearer, A., Oglesby, A., Tobian, J. A. The health care costs of diabetic peripheral neuropathy in the US. Diabetes Care. 26 (6), 1790-1795 (2003).
  3. Reiber, G. E., McDonell, M. B., Schleyer, A. M., Fihn, S. D., Reda, D. J. A comprehensive system for quality improvement in ambulatory care: assessing the quality of diabetes care. Patient Educ Couns. 26 (1-3), 337-341 (1995).
  4. Driver, V. R., Fabbi, M., Lavery, L. A., Gibbons, G. The costs of diabetic foot: The economic case for the limb salvage team. J Vasc Surg. 52 (Suppl 3), 17S-22S (2010).
  5. Contag, C. H., et al. Photonic detection of bacterial pathogens in living hosts. Mol Microbiol. 18 (4), 593-603 (1995).
  6. Rocchetta, H. L., et al. Validation of a noninvasive, real-time imaging technology using bioluminescent Escherichia coli in the neutropenic mouse thigh model of infection. Antimicrob Agents Chemother. 45 (1), 129-137 (2001).
  7. Kadurugamuwa, J. L., et al. Rapid direct method for monitoring antibiotics in a mouse model of bacterial biofilm infection. Antimicrob Agents Chemother. 47 (0066-4804), 3130-3137 (2003).
  8. Anderl, J. N., Franklin, M. J., Stewart, P. S. Role of antibiotic penetration limitation in Klebsiella pneumoniae biofilm resistance to ampicillin and ciprofloxacin. Antimicrob Agents Chemother. 44 (7), 1818-1824 (2000).
  9. Morton, D. B. A systematic approach for establishing humane endpoints. ILAR J. 41 (2), 80-86 (2000).
  10. Dunn, L., et al. Murine model of wound healing. J Vis Exp. (75), e50265 (2013).
  11. Zhao, G., et al. Delayed wound healing in diabetic (db/db) mice with Pseudomonas aeruginosa biofilm challenge – a model for the study of chronic wounds. Wound Repair Regen. 18 (5), 467-477 (2010).
  12. Holley, A. K., Xu, Y., Noel, T., Bakthavatchalu, V., Batinic-Haberle, I., St. Clair, D. K. Manganese superoxide dismutase-mediated inside-out signaling in HaCaT human keratinocytes and SKH-1 mouse skin. Antioxid Redox Signal. 20 (15), 2347-2360 (2014).
  13. Abbas, S., Alam, S., Pal, A., Kumar, M., Singh, D., Ansari, K. M. UVB exposure enhanced benzanthrone-induced inflammatory responses in SKH-1 mouse skin by activating the expression of COX-2 and iNOS through MAP kinases/NF-ĸB/AP-1 signalling pathways. Food Chem Toxicol. 96, 183-190 (2016).
  14. Watters, C., Everett, J. A., Haley, C., Clinton, A., Rumbaugh, K. P. Insulin treatment modulates the host immune system to enhance Pseudomonas aeruginosa wound biofilms. Infect Immun. 82 (1), 92-100 (2014).
check_url/fr/55991?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Hunt, A. M. A., Gibson, J. A., Larrivee, C. L., O’Reilly, S., Navitskaya, S., Busik, J. V., Waters, C. M. Come to the Light Side: In Vivo Monitoring of Pseudomonas aeruginosa Biofilm Infections in Chronic Wounds in a Diabetic Hairless Murine Model. J. Vis. Exp. (128), e55991, doi:10.3791/55991 (2017).

View Video