Summary

De voorbereiding van gescheiden Mouse Cortical Neuron culturen

Published: December 19, 2007
doi:

Summary

Deze video toont een procedure voor het genereren van neuronale culturen uit de late embryo en de vroege postnatale muis cortex. Deze culturen kunnen worden gebruikt voor immunocytochemie, biochemie, elektrofysiologie, calcium en natrium beeldvorming en een platform te bieden voor de neuronale ontwikkeling van transgene dieren die een postnatale dodelijke genmutatie dragen bestuderen.

Abstract

Deze video zal u door het proces voor het genereren van corticale neuronale culturen uit de late embryo en de vroege postnatale hersenen van muizen. Deze culturen kunnen worden gebruikt voor een verscheidenheid aan toepassingen, waaronder immunocytochemie, biochemie, elektrofysiologie, calcium en natrium beeldvorming, eiwit en / of RNA isolatie. Deze culturen ook een platform om de neuronale ontwikkeling van transgene dieren dat een te late embryonale of postnatale dodelijk genmutatie dragen bestuderen. De procedure is relatief eenvoudig, vergt enige ervaring in weefselkweek techniek en mag niet langer duren dan twee tot drie uur of u goed voorbereid. Een zorgvuldige scheiding van de corticale schil van de thalamo-corticale fiber-darmkanaal vermindert het aantal ongewenste niet-neuronale cellen. Ter verhoging van opbrengsten van neuronale cellen voorzichtig vermaal de stukken van de corticale weefsel na het enzym incubatie stap. Dit is noodzakelijk omdat het voorkomt onnodige schade aan cellen en vroegtijdige neuronale celdood. Aangezien deze culturen worden gehandhaafd in de afwezigheid van glia feeder cellen, ze bieden ook een extra voordeel van de groeiende culturen verrijkt met neuronen.

Protocol

Voorbereidingen voor de dag van het kweken: Bereid steriele ontleden oplossing (DS). Bereid NBM/B27 (Neurobasal Mediom met B27 supplementen). Autoclaaf DDH 2 O en steriliseren glas coversilps, indien nodig. Vacht weefselkweek gerechten of glazen dekglaasjes met poly-D-lysine. Poly-D-Lysine Coating: Bereid de dag voor het kweken van onder steriele omstandigheden. Dooi hoeveelheid van 10X PDL en leg…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
5-Fluoro-2′-deoxyuridine   Sigma F0503  
Sodium Chloride   Sigma S9625  
Vibraslicer   Campden Instruments Ltd.    
Potassim Chloride   Sigma P4504  
Sodium Phosphate Dibasic   Sigma S0876  
Potassium Phosphate Monobasic   Sigma P5379  
Hepes   Sigma H3375  
D (+)-Glucose   Sigma G8270  
Sucrose   Sigma S0389  
Poly-D-Lysine   Sigma P7280  
B27 Supplement   Invitrogen (Gibco) 17504-044  
Neurobasal Media (NBM)   Invirtogen (Gibco) 21103-049  
2-Amino-5-phosphonopentanoic acid   Sigma A5282  
Bovine Albumin   Sigma A7030  
Trypsin Inhibitor   Sigma T9253  
Sodium Hydroxide, 1N solution   Fisher SS266-1  
L-Cysteine   Sigma C7755  
Bacto Agar   Difco 0140-01  
Papain   Worthington LS 03126  
Sterile 0.2 µm Syringe Filter   Fisher DDA02025S0  
Glass Coverslips, No1, Ø12mm   Bellco Glass Inc. 1943-00012  
Minimum Essential Media (MEM)   Invitrogen (Gibco) 11090-081 with Earle’s salts without L-glutamine, needed for growing non-neuronal cultures
Penicillin/Streptomycin   Invitrogen (Gibco) 15070-063 for non-neuronal culture
Fetal Bovine Serum   Invitrogen (Gibco) 16140-071 needed for non-neuronal cultures
Nunclon “Triple Flask” Tissue Culture Bottle   Fisher 12-565-25 Use for non-neuronal cultures. these flasks are very convenient when producing “conditioned Neurobasal Media/B27”, but any other tissue culture flasks or dishes can be used instead.
Glass bottom “Imaging dishes”   MatTek Corp. P35G-1.5-10-C Glass bottomed, Ø35mm culture dishes ideal for Calcium or Sodium Imaging when using an inverted imaging setup. But expensive!
check_url/fr/562?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Hilgenberg, L. G. W., Smith, M. A. Preparation of Dissociated Mouse Cortical Neuron Cultures. J. Vis. Exp. (10), e562, doi:10.3791/562 (2007).

View Video