Summary

Préparation de cultures souris Dissocié neurones corticaux

Published: December 19, 2007
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Summary

Cette vidéo montre une procédure pour générer cultures de neurones de l'embryon et au début du cortex de souris postnatale. Ces cultures peuvent être utilisées pour l'immunocytochimie, la biochimie, l'électrophysiologie, de calcium et de sodium d'imagerie et de fournir une plateforme pour l'étude du développement neuronal des animaux transgéniques qui portent une mutation du gène létal postnatale.

Abstract

Cette vidéo va vous guider à travers le processus pour générer des cultures de neurones corticaux de l'embryon et au début de cerveau de souris postnatale. Ces cultures peuvent être utilisés pour une variété d'applications, y compris immunocytochimie, biochimie, électrophysiologie, d'imagerie du calcium et de sodium, de protéines et / ou d'isolement d'ARN. Ces cultures fournissent également une plateforme pour l'étude du développement neuronal des animaux transgéniques qui portent une mutation du retard embryonnaire ou postnatale gène létal. La procédure est relativement simple, nécessite une certaine expérience dans la technique de culture de tissus et ne devrait pas prendre plus de deux à trois heures si vous êtes bien préparé. Attention séparation de l'écorce corticale par le tractus de fibres thalamo-cortical permettra de réduire le nombre des grossesses non désirées cellules non-neuronales. Pour accroître les rendements des cellules neuronales triturer les pièces du tissu cortical doucement après l'étape d'incubation enzymatique. C'est impératif car elle prévient les blessures inutiles aux cellules et la mort prématurée de cellules neuronales. Étant donné que ces cultures sont maintenues en l'absence de cellules nourricières glie, ils offrent également un avantage supplémentaire de cultures de plus en plus enrichies en neurones.

Protocol

Les préparatifs avant le jour de la culture: Préparer une solution stérile de dissection (DS). Préparer NBM/B27 (Mediom Neurobasal avec B27 suppléments). Autoclave ddH 2 O et stériliser coversilps verre, si nécessaire. Manteau plats de culture de tissu ou de lamelles de verre avec de la poly-D-lysine. Poly-D-Lysine Coating: Préparer la veille de culture dans des conditions stériles. Aliqu…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
5-Fluoro-2′-deoxyuridine   Sigma F0503  
Sodium Chloride   Sigma S9625  
Vibraslicer   Campden Instruments Ltd.    
Potassim Chloride   Sigma P4504  
Sodium Phosphate Dibasic   Sigma S0876  
Potassium Phosphate Monobasic   Sigma P5379  
Hepes   Sigma H3375  
D (+)-Glucose   Sigma G8270  
Sucrose   Sigma S0389  
Poly-D-Lysine   Sigma P7280  
B27 Supplement   Invitrogen (Gibco) 17504-044  
Neurobasal Media (NBM)   Invirtogen (Gibco) 21103-049  
2-Amino-5-phosphonopentanoic acid   Sigma A5282  
Bovine Albumin   Sigma A7030  
Trypsin Inhibitor   Sigma T9253  
Sodium Hydroxide, 1N solution   Fisher SS266-1  
L-Cysteine   Sigma C7755  
Bacto Agar   Difco 0140-01  
Papain   Worthington LS 03126  
Sterile 0.2 µm Syringe Filter   Fisher DDA02025S0  
Glass Coverslips, No1, Ø12mm   Bellco Glass Inc. 1943-00012  
Minimum Essential Media (MEM)   Invitrogen (Gibco) 11090-081 with Earle’s salts without L-glutamine, needed for growing non-neuronal cultures
Penicillin/Streptomycin   Invitrogen (Gibco) 15070-063 for non-neuronal culture
Fetal Bovine Serum   Invitrogen (Gibco) 16140-071 needed for non-neuronal cultures
Nunclon “Triple Flask” Tissue Culture Bottle   Fisher 12-565-25 Use for non-neuronal cultures. these flasks are very convenient when producing “conditioned Neurobasal Media/B27”, but any other tissue culture flasks or dishes can be used instead.
Glass bottom “Imaging dishes”   MatTek Corp. P35G-1.5-10-C Glass bottomed, Ø35mm culture dishes ideal for Calcium or Sodium Imaging when using an inverted imaging setup. But expensive!
check_url/fr/562?article_type=t

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Citer Cet Article
Hilgenberg, L. G. W., Smith, M. A. Preparation of Dissociated Mouse Cortical Neuron Cultures. J. Vis. Exp. (10), e562, doi:10.3791/562 (2007).

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