Summary

Beredning av dissocierade Mouse kortikala Neuron kulturer

Published: December 19, 2007
doi:

Summary

Denna video visar en procedur för att generera neuronala kulturer från slutet av embryot och tidiga postnatala mus cortex. Dessa kulturer kan användas för immuncytokemi, biokemi, elektrofysiologi, kalcium och natrium bildbehandling och tillhandahålla en plattform för att studera nervsystemets utveckling av transgena djur som bär en postnatal dödliga genmutation.

Abstract

Denna video kommer att guida dig genom processen för att skapa kortikala neuronala kulturer från slutet av embryot och tidiga postnatala musen hjärnan. Dessa kulturer kan användas för en mängd olika tillämpningar, inklusive immuncytokemi, biokemi, elektrofysiologi, kalcium och natrium bildbehandling, protein och / eller RNA isolering. Dessa kulturer ger också en plattform för att studera nervsystemets utveckling av transgena djur som bär en sen embryonal eller postnatal dödliga genmutation. Förfarandet är relativt rakt fram, kräver en del erfarenhet av vävnadsodling teknik och bör inte ta längre än två till tre timmar om du är ordentligt förberedd. Noggrann separation av kortikala svålen från thalamo-kortikala fiber tarmkanalen kommer att minska antalet oönskade icke-neuronala celler. För att öka avkastningen av neuronala celler mal sönder bitar av kortikala vävnaden försiktigt efter enzymet inkuberingssteget. Detta är viktigt eftersom det förhindrar onödig skada på celler och för tidig nervcellsdöd. Eftersom dessa kulturer upprätthålls i avsaknad av celler Glia feeder, de erbjuder även en extra fördel att växa kulturer anrikas i nervceller.

Protocol

Förberedelser inför dagen i odling: Förbered steril dissekera lösning (DS). Förbered NBM/B27 (Neurobasal Mediom med B27 tillskott). Autoklav DDH 2 O och sterilisera glas coversilps, om det behövs. Coat vävnadskultur rätter eller täckglas glas med poly-D-lysin. Poly-D-Lysin Beläggning: Förbered dagen innan odling under sterila förhållanden. Tina alikvot av 10X PDL och placera på is. <…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
5-Fluoro-2′-deoxyuridine   Sigma F0503  
Sodium Chloride   Sigma S9625  
Vibraslicer   Campden Instruments Ltd.    
Potassim Chloride   Sigma P4504  
Sodium Phosphate Dibasic   Sigma S0876  
Potassium Phosphate Monobasic   Sigma P5379  
Hepes   Sigma H3375  
D (+)-Glucose   Sigma G8270  
Sucrose   Sigma S0389  
Poly-D-Lysine   Sigma P7280  
B27 Supplement   Invitrogen (Gibco) 17504-044  
Neurobasal Media (NBM)   Invirtogen (Gibco) 21103-049  
2-Amino-5-phosphonopentanoic acid   Sigma A5282  
Bovine Albumin   Sigma A7030  
Trypsin Inhibitor   Sigma T9253  
Sodium Hydroxide, 1N solution   Fisher SS266-1  
L-Cysteine   Sigma C7755  
Bacto Agar   Difco 0140-01  
Papain   Worthington LS 03126  
Sterile 0.2 µm Syringe Filter   Fisher DDA02025S0  
Glass Coverslips, No1, Ø12mm   Bellco Glass Inc. 1943-00012  
Minimum Essential Media (MEM)   Invitrogen (Gibco) 11090-081 with Earle’s salts without L-glutamine, needed for growing non-neuronal cultures
Penicillin/Streptomycin   Invitrogen (Gibco) 15070-063 for non-neuronal culture
Fetal Bovine Serum   Invitrogen (Gibco) 16140-071 needed for non-neuronal cultures
Nunclon “Triple Flask” Tissue Culture Bottle   Fisher 12-565-25 Use for non-neuronal cultures. these flasks are very convenient when producing “conditioned Neurobasal Media/B27”, but any other tissue culture flasks or dishes can be used instead.
Glass bottom “Imaging dishes”   MatTek Corp. P35G-1.5-10-C Glass bottomed, Ø35mm culture dishes ideal for Calcium or Sodium Imaging when using an inverted imaging setup. But expensive!
check_url/fr/562?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Hilgenberg, L. G. W., Smith, M. A. Preparation of Dissociated Mouse Cortical Neuron Cultures. J. Vis. Exp. (10), e562, doi:10.3791/562 (2007).

View Video