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Article de méthode

Mitochondrial Ca2 + rétention capacité dosage et Ca2 +-déclenchée gonflement Mitochondrial test

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DOI :

10.3791/56236

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1 mai 2018

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole a pour but de décrire une méthode afin d’examiner la capacité de rétention en Ca2 + et Ca2 +- déclenchée mitochondrial gonflement des mitochondries isolées de SH-SY5Y cellules étape par étape.

Résumé

La production d’ATP par phosphorylation oxydative est la principale fonction des mitochondries. Les mitochondries chez les eucaryotes supérieurs participent également à cytosolique Ca2 + mise en mémoire tampon, et la production d’ATP dans les mitochondries peut être véhiculée par intramitochondrial Ca2 + concentration libre. Capacité de ca2 + rétention peut être considérée comme la capacité des mitochondries pour retenir le calcium dans la matrice mitochondriale. Ca intracellulaire accumulé2 + conduit à la perméabilité de la membrane mitochondriale interne, appelé l’ouverture du pore de transition de perméabilité mitochondriale (mPTP), ce qui conduit à la fuite des molécules avec un moléculaire poids moins de 1,5 kDa. Ca2 +-a déclenché des mitochondries gonflement est utilisé pour indiquer l’ouverture du mPTP. Nous décrivons ici deux essais afin d’examiner la capacité de rétention en Ca2 + et Ca2 +-a déclenché un gonflement mitochondrique en mitochondries isolées. Après certains montants de Ca2 + sont ajoutés, toutes les étapes peuvent être remplies en une seule journée et enregistrés par un lecteur de microplaques. Ainsi, ces deux tests simples et efficaces peuvent être adoptées pour évaluer le Ca2 +-fonctions mitochondriales liées.

Introduction

Les mitochondries sont les principaux organes cellulaires pour produire près de 95 % de l’ATP utilisé dans les cellules de mammifère par la phosphorylation oxydative. Il est signalé que la concentration micromolaire séquestrée de Ca2 + par les mitochondries, la présence d’ADP et de phosphate inorganique peut être utilisé pour phosphoryler l’ADP à la synthèse d’ATP1. Quand la concentration cytosolique Ca2 + va au-delà d’un seuil, les mitochondries peuvent absorption Ca2 + rapidement et l’efflux il lentement. Ainsi, les mitochondries de fonctionnement peuvent afflux l’augmentation Ca cytosolique2 +. San....

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Protocole

1. isolation des mitochondries

Remarque : Toutes les solutions et les équipements doivent être prérefroidir 0 - 4 ° C et gardés sur glace.

  1. Semences environ 3 x 106 SH-SY5Y cellules / boîte de Petri de cellule 10 cm. Des cellules de culture en haute-glucose Dulbecco modifiée milieu Eagle avec 10 % sérum de veau fœtal, la pénicilline (100 U/mL)-streptomycine (100 µg/mL). Maintenir à 37 ° C dans un incubateur contenant 5 % de CO2 pendant la nuit.
    NOTE : au moins 1-2 x 107 SH-SY5Y cellules sont nécessaires pour chaque dosage d’isolement.
  2. Retirez le support et laver les cellules avec enviro....

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Résultats

Représentant les résultats de Ca2 + capacité de rétention :
Les résultats ont été exprimés en valeurs de fluorescence. Avec les impulsions supplémentaires du Ca2 + (200 nmols/mg protéine mitochondriale), la fluorescence a augmenté de double au-dessus de référence avec l’ouverture du mPTP. 5 μM Bongkrekate (BKA), un inhibiteur de Ca2 +-induite par le mPTP ouverture ou 1 μM atractyloside (RTA), un activateur de Ca2 +-induite par le mPT.......

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Discussion

Ici, nous avons décrit un protocole simple et efficace pour le mitochondrial Ca2 + rétention capacité dosage et Ca2 +-déclenchée essai de gonflement mitochondrique.

Pour l’isolement mitochondriale, assurez-vous que tous les matériaux et les tubes sont sur la glace, surtout quand les cellules de l’homogénéisation. 0,25 % de trypsine-EDTA peut également servir pour détacher les cellules du plat pendant 5 min à 37 ° C. Après les coups de 15-25, il est nécessaire d’observer l.......

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Déclarations de divulgation

X. Sun supervisé les expériences. Li Wei a effectué des expériences. Chen Zhang et X. soleil a écrit le livre.

Remerciements

Cette étude a été financée par des subventions de l’attribution de le scientifique exceptionnelle du Shandong (JQ201421) et la subvention de la NSFC (81371226).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Lignée cellulaire SH-SY5YATCC (The Global Bioresource Center)Numéro ATCC : CRL-2266
Vert calcique-5NLife Technologiesc-3737Ca2+-liant vert colorant fluorescent
inhibiteurs complets de protéaseRoche Molecular Biochemicals4693116001
homogénéisateur de verreKimble Chase9885303002
glutamateSigma-AldrichRES5063G-A7
malateSigma-Aldrich46940-U
roténoneSigma-AldrichR8875
HEPESSigma-AldrichH3375
MgCl2Sigma-Aldrich00457
K2HPO4Sigma-AldrichV900050
KClSigma-AldrichP9541
CaCl2Sigma-AldrichV900266
Varioskan flash instrumentsThermo ScientificIC100E
BongkrekateBiovision1820-100
atractylosideSigma-AldrichC4992
à haute teneur en glucose Dulbecco' s modified Eagle mediumHycloneSH300224,5 g/L de glucose, L-glutamine, sans pyruvate
de sodium Sérum fœtal bovinHycloneSV30087
pénicillineSigma-AldrichP3032
streptomycineInvitrogen11860-038
Kit de dosage BCAThermo ScientificNCI3225CH
PBSHycloneSH30256.01
Plat de culture cellulaire de 10 cmNEST704001

Références

  1. Rossi, C. S., Lehninger, A. L. Stoichiometry of respiratory stimulation, accumulation of Ca++ and phosphate, and oxidative phosphorylation in rat liver mitochondria. J Biol Chem. 239 (11), 3971-3980 (1964).
  2. Gunter, T. E., Buntinas, L., Sparagna, G., Eliseev, R., Gunter, K.

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Réimpressions et autorisations

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