Rening av virus-DNA för identifiering av associerade Viral och cellulära proteiner
Summary
Målet med detta protokoll är specifikt tagga och selektivt isolera virus-DNA från infekterade celler för karakterisering av virusgenom associerade proteiner.
Abstract
Målet med detta protokoll är för att isolera herpes simplex virustyp 1 (HSV-1) DNA från infekterade celler för identifiering av associerade viral och cellulära proteiner av mass spectrometry. Även proteiner som samverkar med virala genomer spelar stora roller i att bestämma resultatet av infektion, var en omfattande analys av virusgenom associerade proteiner inte tidigare genomförbart. Här visar vi en metod som möjliggör direkt rening av HSV-1 genomen från infekterade celler. Replikering av virus-DNA är selektivt märkt med modifierade nukleotider som innehåller en alkynen funktionell grupp. Märkt DNA är sedan specifikt och oåterkalleligt taggade via kovalenta fastsättning av biotin natriumazid via en koppar (I)-katalyseras natriumazid-alkynen cykloadditionen eller klicka reaktion. Biotin-taggade DNA renas på streptividin-belagda pärlor och associerade proteiner är elueras och identifieras med masspektrometri. Denna metod möjliggör selektiv inriktning och isolering av HSV-1 replikering gafflar eller hela genomen från komplexa biologiska miljöer. Dessutom tillåter anpassning av detta tillvägagångssätt för utredning av olika aspekter av herpesviral infektion, liksom granskningen av genomen hos andra DNA-virus.
Introduction
Virus har en begränsad förmåga att utföra grundläggande funktioner och därför beror på värd faktorer att underlätta kritiska aspekter på infektion inklusive viral genuttryck, replikering, reparation, rekombination och transport. Verksamheten i dessa värd faktorer är ofta förstärkta av viralt kodade proteiner. Dessutom måste virus undvika upptäckt och störningar av cellulära svar till virusinfektion. Därför diktera virus värd interaktioner resultatet av infektion. Av största vikt är att förstå hur virus förändrar den cellulära miljön för att anpassa det cellulära maskineriet för att underlätta virala processer. Av särskilt intresse är att identifiera vilka faktorer och processer agera på virala genomer hela smittsamma cykeln.
Herpes simplex virustyp 1 (HSV-1) är en dubbel strandsatta DNA-virus som infekterar en betydande del av den mänskliga befolkningen. Inom den första timmen av infektion in det virala genomet i kärnan, där en beställda kaskad av viral genuttryck inträder i samordning med viral DNA (vDNA) replikering1. I kärnan, genomen omfattas av epigenetisk reglering, genomgå reparation och rekombination och paketeras till förhoppningsvis, så att de första avkomman-virioner produceras inom mindre än sex timmar. Omfattande utvärdering av virusgenom associerade proteiner i hela loppet av infektion kommer att lägga grunden för att undersöka de molekylära detaljerna av processer som agera på virala genomer, och kommer att ge en inblick i vilka viral och cellulära faktorer är involverade i olika stadier av infektionen.
Tidigare metoder för utredning av värd faktorer inblandade i viral infektion inkluderar affinitet rening av virala proteiner för analys av associerade cellproteiner2,3,4,5 , 6 , 7 , 8 , 9. dessa analyser har varit avgörande för identifiering av cellulära faktorer som är inblandade i värd antivirala svar, liksom viral kromatin modifiering, genuttryck, och DNA reparation. Det är dock svårt att få klarhet i huruvida interaktioner beror på föreningen med vDNA och proteomik endast ge inblick i interaktioner som inträffar som en funktion av en specifik viral faktor. Kromatin immunoprecipitation (ChIP) har använts för att identifiera där specifika viral och cellulära proteiner binder till virala genomer10,11,12,13,14 , 15 och fluorescerande in situ hybridisering (FISH) kombinerat med immuncytokemi har möjliggjort visualisering av cellulära faktorer som colocalize vDNA16,17,18, 19 , 20. dessa analyser att rumsliga och tidsmässiga analys. Dock inkluderar begränsningar behovet av mycket specifika antikroppar, begränsad känslighet och behovet av tidigare insikt virus värd-interaktioner. Vi har därför utvecklat en metod baserad på iPOND (isolering av proteiner på begynnande DNA)21 och aniPOND (accelererad infödda iPOND)22 att selektivt etikett och rena vDNA från infekterade celler för objektiv identifiering av virusgenom associerade proteiner av masspektrometri. iPOND har varit avgörande för utredning av cellulära replikering gaffel dynamics.
För selektiv rening av virala arvsmassan från infekterade celler, är replikera vDNA märkt med ethynyl modified nukleosider, 5-ethynyl-2´-deoxiuridin (EdU) eller 5-ethynyl-2´-deoxycytidine (EdC) (figur 1), följt av kovalent Konjugation till biotin natriumazid via Klicka på kemi för att underlätta enda steg rening av virala arvsmassan och associerade proteiner på streptividin-belagda pärlor (figur 2B). Ännu viktigare, utförs infektioner i stationära celler, som inte är engagerade i cellulär DNA-replikation att aktivera särskilda märkning av vDNA. Dessutom HSV-1 infektion orsakar cellcykelarrest och hämmar cellernas DNA replication23,24. Virus kan företiketterade innan infektion för analys av proteiner associerade med inkommande virala arvsmassan (figur 1A) eller märkt under DNA-replikation för analys av proteiner associerade med nyligen synthesized vDNA (figur 1B) 25. Dessutom puls chase analys kan användas för att undersöka arten av proteiner associerade med virusreplikation gafflar (figur 1 c)26. Dessutom kan ethynyl-modifierat vDNA vara kovalent konjugerad till en fluorophore för rumsliga utredning av protein dynamics (figur 2A och figur 3). Imaging möjliggör direkt visualisering av vDNA är en gratis strategi för validering av vDNA-protein interaktioner och kan anpassas för att spåra virala genomer i hela infektion. Vi räknar med att dessa metoder kan ändras ytterligare att studera någon aspekt av herpesviral infektion, inklusive latens och reaktivering, och att studera andra DNA-virus. Dessutom kan märkning med 5-ethynyl uridin (EU) möjliggöra för analys av RNA virala arvsmassan.
Protocol
Representative Results
Discussion
Detta protokoll omfattar flera steg om inte följs noggrant, kan resultera i betydligt reducerad protein avkastning eller kontaminering med cellulär DNA. Det är viktigt att stationära celler används för alla experiment att cellulärt DNA är inte märkt och renas. Detta kan bekräftas genom avsaknad av cellulär DNA-polymerases i protein provet eftersom HSV-1 inte använda cellulär DNA-polymeras för genomet syntes. Under EdC märkning och atomkärnor skörd steg, fördelas prover för att säkerställa att alla be…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Vi erkänner Hannah Fox för hjälp i utarbetandet av detta manuskript. Detta arbete stöds av NIH bevilja R01AI030612.
Materials
| MRC-5 cells | ATCC | CCL-171 | |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Gibco | 26140-179 | |
| Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) | Gibco | 12800-082 | substituted with 10% FBS, 2 mM L-glutamine, 12 mM (for growth in flasks) or 30 mM (for growth in dishes) sodium-bicarbinate |
| 600 cm2 tissue culture dish | Thermo Fisher Scientific | 166508 | |
| Tris Buffered Saline (TBS), pH 7.4 | 137 mM NaCl, 5 mM KCl, 491 mM MgCl, 680 mM CaCl, 25.1 mM Tricine | ||
| HSV-1 stock | stocks with titers greater than 1×109 PFU/mL work best | ||
| Sephadex G-25 column (PD-10 Desalting Column) | GE Healthcare | 17085101 | |
| Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Fisher Scientific | D128-1 | |
| 5´-Ethynyl-2´-deoxycytidine (EdC) | Sigma-Aldrich | T511307 | Dissolve in DMSO to prepare 40 mM stock, aliquot, and store at -20 °C |
| 2´-deoxycytidine (deoxyC) | Sigma-Aldrich | D3897 | Dissolve in water to prepare 40 mM stock, aliquot, and store at -20 °C |
| Nuclear Extraction Buffer (NEB) | prepare fresh (20 mM Hepes pH 7.2, 50 mM NaCl, 3 mM MgCl2, 300 mM Sucrose, 0.5% Igepal) | ||
| Cell scraper | Bellco glass | 7731-22000 | Autoclave before use |
| Trypan blue solution | Sigma-Aldrich | T8154 | |
| PBS, pH 7.2 (10x) | 1.37 M NaCl, 27 mM KCl, 100 mM Na2HPO4, 18 mM KH2PO4 (dilute to 1x in sterile water before use) | ||
| Copper (II) sulfate pentahydrate (CuSO4-5H2O) | Fisher Scientific | C489 | Prepare 100 mM stock and store at 4 °C for up to 1 month |
| (+) Sodium L-ascorbate | Sigma-Aldrich | A4034 | Freshly prepare 100 mM stock and store on ice until use |
| Biotin azide | Invitrogen | B10184 | Prepare 10 mM stock in DMSO, aliquot, and store at -20 °C for up to 1 year |
| Click Reaction Mix | prepare immediately before use by adding reagents in the indicated order (10 mL: 8.8 mL 1x PBS, 200 mL 100 mM CuSO4, 25mL 10 mM Biotin Azide, 1 mL 100 mM sodium ascorbate) | ||
| cOmplete Protease Inhibitor Cocktail | Roche | 11697498001 | Dissolve in 1 mL water to prepare 50x stock, can store at 4 °C for up to 1 week, or directly add 1 pill to 50 mL buffer |
| freezing buffer | prepare fresh (7 mL 100% glycerol, 3 mL NEB, 200 μL 50x protease inhibitor) | ||
| Buffer B1 | prepare fresh (25 mM NaCl, 2 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8, 1% Igepal, 1x protease inhibitor) | ||
| Buffer B2 | prepare fresh (150 mM NaCl, 2 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8, 0.5% Igepal, 1x protease inhibitor) | ||
| Buffer B3 | prepare fresh (150 mM NaCl, 2 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8, 1x protease inhibitor) | ||
| Vibra Cell Ultra Sonic Processer equipped with a 3 mm microtip probe | Sonics | VCX 130 | |
| Cell strainer | Falcon | 352360 | |
| Dynabeads MyOne Streptavidin T1 | Life Technologies | 65601 | |
| DynaMag-2 Magnet | Life Technologies | 12321D | |
| Mini-Tube Rotator | Fisher Scientific | 260750F | |
| 2X Laemmli sample buffer | Mix 400 mg of SDS, 2 mL 100% glycerol, 1.25 mL of 1 M Tris (pH 6.8), and 10 mg of bromophenol blue in 8 mL water. Store at 4 °C for up to 6 months. Before use add 1 M DTT to a final concentration of 200 mM. | ||
| cap locks for 1.5 mL tube | Fisher Scientific | NC9679153 | |
| Standard western blotting reagents | |||
| NOVEX Colloidal Blue Staining Kit | Invitrogen | LC6025 | |
| 12-well tissue culture dish | Corning | 3513 | |
| Coverslips | Fisher Scientific | 12-545-100 | Autoclave before use |
| Microscope slides | Fisher Scientific | 12-552-5 | |
| 16% paraformaldehyde | Electron Microscopy Sciences | 15710 | dilute to 3.7% in 1x PBS before use |
| Bovine serum albumin (BSA) | Fisher Scientific | BP1605 | prepare 3% in 1x PBS |
| Permeabilization buffer (0.5% Triton-X 100) | Sigma-Aldrich | T8787 | prepare 0.5% Triton-X 100 in 1x PBS |
| Click reaction cocktail – Click-iT EdU Alexa Fluor 488 Imaging Kit | Molecular Probes | C10337 | prepare according to manufactorer's protocol |
| Hoechst 33342 | Life Technologies | H1399 | prepare 10 mg/mL in water, can store at 4 °C for up to 1 year |
| mouse anti-ICP8 primary antibody | Abcam | ab20194 | Use a 1:200 dilution in 1x PBS |
| mouse anti-UL42 primary antibody (2H4) | Abcam | ab19311 | Use a 1:200 dilution in 1x PBS |
| Goat anti-mouse 594-conjugated secondary antibody | Life Technologies | a11005 | Use a 1:500 dilution in 1x PBS |
| Immu-mount | Thermo Fisher Scientific | 9990402 | |
| 2x SDS-bicarb solution | 2% SDS, 200 mM NaHCO3 | ||
| Phenol:chloroform:isoamyl alcohol | mix 25:24:1 at least 1 day before use, store at 4 °C in the dark | ||
| chloroform:isoamyl alcohol | mix 24:1 at least 1 day before use, store at room temperature in the dark | ||
| 10x Tris EDTA (TE), pH 8.0 | 100 mM Tris, 10 mM EDTA (dilute to 1x before use) | ||
| Qiaquick PCR purification kit | Qiagen | 28104 | |
| 3 M sodium acetate pH 5.2 | |||
| Qubit 2.0 Fluorometer | Invitrogen | Q32866 | |
| Qubit dsDNA HS Assay Kit | Invitrogen | Q32851 | |
| Qubit assay tubes | Invitrogen | Q32856 | |
| Fluorescence microscope equipped with imaging software | |||
| Microcentrifuge for 1.5 mL tubes | |||
| Tabletop centrifuge for 15 and 50 mL tubes | |||
| Cell culture incubator | |||
| Biosafety cabinet | |||
| Heat blocks | 65 °C and 95 °C |
References
- Knipe, D. M., Howley, P. M. . Fields virology. , (2013).
- Engel, E. A., Song, R., Koyuncu, O. O., Enquist, L. W. Investigating the biology of alpha herpesviruses with MS-based proteomics. Proteomics. 15, 1943-1956 (2015).
- Wagner, L. M., DeLuca, N. A. Temporal association of herpes simplex virus ICP4 with cellular complexes functioning at multiple steps in PolII transcription. PloS One. 8, e78242 (2013).
- Taylor, T. J., Knipe, D. M. Proteomics of herpes simplex virus replication compartments: association of cellular DNA replication, repair, recombination, and chromatin remodeling proteins with ICP8. J Virol. 78, 5856-5866 (2004).
- Fontaine-Rodriguez, E. C., Taylor, T. J., Olesky, M., Knipe, D. M. Proteomics of herpes simplex virus infected cell protein 27: association with translation initiation factors. Virology. 330, 487-492 (2004).
- Greco, T. M., Diner, B. A., Cristea, I. M. The Impact of Mass Spectrometry-Based Proteomics on Fundamental Discoveries in Virology. Annu Rev Virol. 1, 581-604 (2014).
- Conwell, S. E., White, A. E., Harper, J. W., Knipe, D. M. Identification of TRIM27 as a novel degradation target of herpes simplex virus 1 ICP0. J Virol. 89, 220-229 (2015).
- Suk, H., Knipe, D. M. Proteomic analysis of the herpes simplex virus 1 virion protein 16 transactivator protein in infected cells. Proteomics. 15, 1957-1967 (2015).
- Balasubramanian, N., Bai, P., Buchek, G., Korza, G., Weller, S. K. Physical interaction between the herpes simplex virus type 1 exonuclease, UL12, and the DNA double-strand break-sensing MRN complex. J Virol. 84, 12504-12514 (2010).
- Sampath, P., Deluca, N. A. Binding of ICP4, TATA-binding protein, and RNA polymerase II to herpes simplex virus type 1 immediate-early, early, and late promoters in virus-infected cells. J Virol. 82, 2339-2349 (2008).
- Amelio, A. L., McAnany, P. K., Bloom, D. C. A chromatin insulator-like element in the herpes simplex virus type 1 latency-associated transcript region binds CCCTC-binding factor and displays enhancer-blocking and silencing activities. J Virol. 80, 2358-2368 (2006).
- Cliffe, A. R., Knipe, D. M. Herpes simplex virus ICP0 promotes both histone removal and acetylation on viral DNA during lytic infection. J Virol. 82, 12030-12038 (2008).
- Herrera, F. J., Triezenberg, S. J. VP16-dependent association of chromatin-modifying coactivators and underrepresentation of histones at immediate-early gene promoters during herpes simplex virus infection. J Virol. 78, 9689-9696 (2004).
- Kent, J. R., et al. During lytic infection herpes simplex virus type 1 is associated with histones bearing modifications that correlate with active transcription. J Virol. 78, 10178-10186 (2004).
- Oh, J., Fraser, N. W. Temporal association of the herpes simplex virus genome with histone proteins during a lytic infection. J Virol. 82, 3530-3537 (2008).
- Catez, F., et al. HSV-1 genome subnuclear positioning and associations with host-cell PML-NBs and centromeres regulate LAT locus transcription during latency in neurons. PLoS Pathog. 8, e1002852 (2012).
- Everett, R. D., Murray, J., Orr, A., Preston, C. M. Herpes simplex virus type 1 genomes are associated with ND10 nuclear substructures in quiescently infected human fibroblasts. J Virol. 81, 10991-11004 (2007).
- Tang, Q., et al. Determination of minimum herpes simplex virus type 1 components necessary to localize transcriptionally active DNA to ND10. J Virol. 77, 5821-5828 (2003).
- Ishov, A. M., Maul, G. G. The periphery of nuclear domain 10 (ND10) as site of DNA virus deposition. J Cell Biol. 134, 815-826 (1996).
- Maroui, M. A., et al. Latency Entry of Herpes Simplex Virus 1 Is Determined by the Interaction of Its Genome with the Nuclear Environment. PLoS Pathog. 12, e1005834 (2016).
- Sirbu, B. M., Couch, F. B., Cortez, D. Monitoring the spatiotemporal dynamics of proteins at replication forks and in assembled chromatin using isolation of proteins on nascent DNA. Nat Protoc. 7, 594-605 (2012).
- Leung, K. H., Abou El Hassan, M., Bremner, R. A rapid and efficient method to purify proteins at replication forks under native conditions. BioTechniques. 55, 204-206 (2013).
- Hobbs, W. E., DeLuca, N. A. Perturbation of cell cycle progression and cellular gene expression as a function of herpes simplex virus ICP0. J Virol. 73, 8245-8255 (1999).
- Lomonte, P., Everett, R. D. Herpes simplex virus type 1 immediate-early protein Vmw110 inhibits progression of cells through mitosis and from G(1) into S phase of the cell cycle. J Virol. 73, 9456-9467 (1999).
- Dembowski, J. A., DeLuca, N. A. Selective recruitment of nuclear factors to productively replicating herpes simplex virus genomes. PLoS Pathog. 11, e1004939 (2015).
- Dembowski, J. A., Dremel, S. E., DeLuca, N. A. Replication-Coupled Recruitment of Viral and Cellular Factors to Herpes Simplex Virus Type 1 Replication Forks for the Maintenance and Expression of Viral Genomes. PLoS Pathog. 13, e1006166 (2017).
- Bjornberg, O., Nyman, P. O. The dUTPases from herpes simplex virus type 1 and mouse mammary tumour virus are less specific than the Escherichia coli enzyme. J Gen Virol. 77 (Pt 12), 3107-3111 (1996).
- Chiou, S. H. DNA- and protein-scission activities of ascorbate in the presence of copper ion and a copper-peptide complex. J Biochem. 94, 1259-1267 (1983).
- Kennedy, D. C., et al. Cellular consequences of copper complexes used to catalyze bioorthogonal click reactions. J Am Chem Soc. 133, 17993-18001 (2011).
- Snel, B., Lehmann, G., Bork, P., Huynen, M. A. STRING: a web-server to retrieve and display the repeatedly occurring neighbourhood of a gene. Nucleic Acids Res. 28, 3442-3444 (2000).
