Megakaryocyte differentiering og trombocyttal dannelse fra menneskelige ledning blod-afledte CD34+ celler
Summary
En meget ren population af megakaryocytes kan fås fra ledningen blod-afledte CD34+ celler. En metode til CD34+ celle isolation og megakaryocyte differentiering er beskrevet her.
Abstract
Trombocyttal produktion forekommer hovedsagelig i knoglemarv i en proces kendt som thrombopoiesis. Under thrombopoiesis differentiere hæmatopoietisk stamceller til form trombocyt prækursorer kaldet megakaryocytes, der terminalt differentiere for at frigive trombocytter fra længe cytoplasmatisk processer betegnes proplatelets. Megakaryocytes er sjælden celler begrænset til knoglemarven og er derfor vanskelige at høste i tilstrækkeligt antal til laboratoriebrug. Effektiv produktion af menneskelige megakaryocytes kan være opnået i vitro ved dyrkning af CD34+ celler under passende forhold. Protokollen detaljeret her beskriver isolation af CD34+ celler ved magnetisk celle sortering fra navlestrengen blodprøver. De nødvendige skridt til at fremstille meget rene, moden megakaryocytes serumfrit betingelser er beskrevet. Også er oplysninger om fænotypiske analyser af megakaryocyte differentiering og bestemmelse af proplatelet dannelse og trombocyttal produktion. Effektorer, der påvirker megakaryocyte differentiering og/eller proplatelet dannelse, såsom anti-trombocyttal antistoffer eller thrombopoietin mimetics, kan føjes til kulturperler celler til at undersøge biologiske funktion.
Introduction
Isolation af et passende antal primære menneskelige megakaryocytes (MK) til almindelig laboratoriebrug er ikke mulig på grund af deres lave hyppighed i knoglemarven, hvor de udgør ~0.01% af nukleeret celler1. Et bekvemt alternativ er ex vivo ekspansion og differentiering af hæmatopoietisk stamceller og stamceller i overværelse af bestemte vækstfaktorer. En række af cytokiner herunder stamceller faktor (SCF, c-kit ligand) og interleukin (IL) -3 og IL-11 har været er ansat i kultur systemer til at producere MKs. Thrombopoietin (TPO) den mest effektive vækst og differentiering faktor for megakaryocytic kulturer og er effektiv, alene eller sammen med andre cytokiner, såsom SCF og IL-32. TPO kan handle på stamcelle befolkninger til at resultere i spredning og modning af MKs2.
MK producere trombocytter fra cytoplasmatisk fremspring kaldes proplatelets og in vivo ca 1 x 1011 blodplader er er dannet dagligt for at opretholde trombocyt tællinger af 150-400 x 109/L. trombocyt produktion i vitro op til 1000 -fold lavere end i vivo anslår3, og dette har givet anledning til talrige kultur betingelser brug af CD34+ hæmatopoietisk stamceller til at forbedre MK og trombocyttal produktion i vitro. Den oprindelige kilde til CD34+ celler til MK differentiering var humant perifert blod4. Andre cell kilder omfatter knoglemarven5,6, embryonale stamceller/induceret pluripotente stamceller (ESC/iPSC)7og navlestrengen blod (UCB)8,9,10 . Menneskelige knoglemarv CD34+ 11 og mus lineage negative knoglemarv celler5 producere MK og blodplader in vitro; ikke desto mindre, manglen tilgængelighed af menneskelige knoglemarv begrænser dets anvendelse som en kilde til CD34+ celler. Derimod repræsenterer ESC og iPSC en ubegrænset kilde til celler til in vitro- trombocyttal produktion. Trombocyttal produktion fra disse celler kræver feeder celler som murine OP9 celler og kultur længere. Trombocytter fremstillet i feeder-fri betingelser synes at være mindre funktionelle12. iPSC-afledte blodplader er tilbøjelige til at være til nytte i klinisk indstillinger, da de kan udvides til en stor skala. Denne proces kræver lentiviral-medieret transduktion af transkriptionsfaktorer og langsigtede celle kultur13.
UCB er en tilgængelig kilde til CD34+ celler, der let kan anvendes i forskning indstillinger. TPO alene kan fremme differentiering af ledningen blod-afledte CD34+ celler og dette giver anledning til meget ren, modne MKs uden behov for serum tilskud eller fælles kultur med feeder celler. Andre cytokiner som SCF kan nedsætte differentiering fra UCB CD34+ celler, mens Flt-3 ligand og IL-11 fremme produktionen af umodne megakaryocytes14. Denne protokol beskriver produktionen af yderst rene MK kulturer fra navlestrengsblod CD34+ celler i serumfrit betingelser.
Protocol
Representative Results
Discussion
Protokollen beskrevet her egner sig til ensartet produktion af MK og blodplader i kultur fra navlestrengsblod. Disse celler kan bruges til at studere forskellige processer som effekten af lægemidler eller biologiske aktiviteter på MK spredning, differentiering, proplatelet dannelse og trombocyttal produktion.
En række dyrkningsmedier og cytokin kombinationer er blevet præsenteret i litteraturen. Tilsætning af cytokiner som stamceller faktor, Flt-3 ligand, IL-3 og IL-6 understøtter CD34<s…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Forfatterne anerkender støtten fra den australske sundhed og Medical Research Council (project grant 1012409 knyttet til BHC).
Materials
| Cell Culture Reagents | |||
| Recombinant Human TPO | Miltenyi Biotec | 130-094-013 | |
| StemSpan SFEM II | Stem Cell Technologies | 9605 | Serum-free media for CD34+ cells |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| CD34 Isolation Reagents | |||
| CD34 MicroBead kit ultrapure | Miltenyi Biotec | 130-100-453 | This kit includes the FcR human IgG blocking reagent and CD34 microbeads. These beads contain the anti-CD34 antibody clone QBEND/10. Use a different anti-CD34 clone for purity check (e.g. clone 8G12). |
| Lymphoprep | Alere Technologies | 1114545 | Lymphocyte separation media (density 1.077 g/mL) |
| Sterile separation buffer (SB) | Miltenyi Biotec | 130-091-221 | This buffer contains phosphate buffered saline (PBS), pH 7.2 containing 0.5% bovine serum albumin and 2 mM EDTA. It can be prepared using sterile, cell culture grade components. De-gas before use because air bubbles can block the column. |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Flow Cytometry and Cell Staining Reagents | |||
| PE Mouse anti-Human CD34 | BD Biosciences | 340669 | Clone 8G12. This can be used for CD34 purity check. Final antibody concentration 1:10 dilution. |
| PerCP mouse anti-human CD45 | BD Biosciences | 347464 | 1:10 dilution |
| PerCP isotype control | BD Biosciences | 349044 | 1:10 dilution |
| FITC Mouse anti-Human CD41a | BD Biosciences | 340929 | Final antibody concentration 1:5 dilution. |
| APC Mouse anti-Human CD42b | BD Biosciences | 551061 | This antibody can also be used to detect mature MK (the percentage of positive cells in usually lower than with anti CD42a). Final antibody concentration 1:10 dilution. |
| Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human CD42a | AbD Serotec | MCA1227A647T | Currently distributed by Bio-Rad. Final antibody concentration 1:10 dilution. |
| Alexa Fluor 647 Mouse Negative Control | AbD Serotec | MCA928A647 | Currently distributed by Bio-Rad. Isotype control antibody |
| Anti von Willebrand factor rabbit polyclonal | Abcam | AB6994 | 1:200 dilution |
| V450 mouse anti-humna CD41a | BD Biosciences | 58425 | 1: 20 dilution |
| V450 isotype control | BD Biosciences | 580373 | 1:20 dilution |
| PAC1-FITC antibody | BD Biosciences | 340507 | 1:10 dilution |
| Anti CD62p mouse monoclonal | Abcam | AB6632 | 1:200 dilution |
| Alexa Fluor 488 goat anti rabbit IgG | Invitrogen | A11008 | 1:100 dilution |
| Alexa Fluor 594 goat anti mouse IgG | Invitrogen | A11020 | 1:100 dilution |
| Ig Isotype Control cocktail-C | BD Biosciences | 558659 | Isotype control antibody |
| Propidium iodide | Sigma Aldrich | P4864 | |
| CountBright Absolute Counting Beads | Molecular Probes, Invitrogen | C36950 | Counting beads |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Materials | |||
| LS columns | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | Smaller and larger columns are also commercially available |
| MidiMACS Separator magnet | Miltenyi Biotec | 130-042-302 | |
| MACS MultiStand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
| Falcon 5mL round bottom polypropylene FACS tubes, with Snap Cap, Sterile | In Vitro technologies | 352063 | |
| Glass slides | Menzel-Glaser | J3800AMNZ | |
| Mounting media with DAPI | Vector Laboratories | H-1200 | Antifade mounting medium with DAPI |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| Inverted microscope | Leica | DMIRB inverted microscope | |
| Fluorescent microscope | Zeiss | Vert.A1 | |
| Cell analyser | BD Biosciences | FACS Canto II | |
| Cytospin centrifuge | ThermoScientific | Cytospin 4 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Software | |||
| Cell analyser software | BD Biosciences | FACS Diva Software | |
| Single cell analysis software | Tree Star | FlowJo | |
| Fluorescent microscope software | Zeiss | Zen 2 blue edition |
References
- Nakeff, A., Maat, B. Separation of megakaryocytes from mouse bone marrow by velocity sedimentation. Blood. 43 (4), 591-595 (1974).
- Zeigler, F. C., et al. In vitro megakaryocytopoietic and thrombopoietic activity of c-mpl ligand (TPO) on purified murine hematopoietic stem cells. Blood. 84 (12), 4045-4052 (1994).
- Reems, J. -. A., Pineault, N., Sun, S. In Vitro Megakaryocyte Production and Platelet Biogenesis: State of the Art. Transfus. Med. Rev. 24 (1), 33-43 (2010).
- Choi, E., Nichol, J. L., Hokom, M. M., Hornkohl, A. C., Hunt, P. Platelets generated in vitro from proplatelet-displaying human megakaryocytes are functional. Blood. 85 (2), 402-413 (1995).
- Perdomo, J., et al. A monopartite sequence is essential for p45 NF-E2 nuclear translocation, transcriptional activity and platelet production. J Thromb Haemost. 8 (11), 2542-2553 (2010).
- Shim, M. H., Hoover, A., Blake, N., Drachman, J. G., Reems, J. A. Gene expression profile of primary human CD34+CD38lo cells differentiating along the megakaryocyte lineage. Exp Hematol. 32 (7), 638-648 (2004).
- Feng, Q., et al. Scalable generation of universal platelets from human induced pluripotent stem cells. Stem cell reports. 3 (5), 817-831 (2014).
- Bruno, S., et al. In vitro and in vivo megakaryocyte differentiation of fresh and ex-vivo expanded cord blood cells: rapid and transient megakaryocyte reconstitution. Haematologica. 88 (4), 379-387 (2003).
- Iraqi, M., Perdomo, J., Yan, F., Choi, P. Y. I., Chong, B. H. Immune thrombocytopenia: antiplatelet autoantibodies inhibit proplatelet formation by megakaryocytes and impair platelet production in vitro. Haematologica. 100 (5), 623-632 (2015).
- Lev, P. R., et al. Impaired proplatelet formation in immune thrombocytopenia: a novel mechanism contributing to decreased platelet count. Br. J. Haematol. 165 (6), 854-864 (2014).
- Gandhi, M. J., Drachman, J. G., Reems, J. A., Thorning, D., Lannutti, B. J. A novel strategy for generating platelet-like fragments from megakaryocytic cell lines and human progenitor cells. Blood Cells Mol. Dis. 35 (1), 70-73 (2005).
- Lu, S. -. J., et al. Platelets generated from human embryonic stem cells are functional in vitro and in the microcirculation of living mice. Cell Res. 21 (3), 530-545 (2011).
- Moreau, T., et al. Large-scale production of megakaryocytes from human pluripotent stem cells by chemically defined forward programming. Nature Commun. 7, 11208 (2016).
- De Bruyn, C., Delforge, A., Martiat, P., Bron, D. Ex vivo expansion of megakaryocyte progenitor cells: cord blood versus mobilized peripheral blood. Stem Cells Dev. 14 (4), 415-424 (2005).
- Nimgaonkar, M. T., et al. A unique population of CD34+ cells in cord blood. Stem cells. 13 (2), 158-166 (1995).
- Italiano, J. E., Patel-Hett, S., Hartwig, J. H. Mechanics of proplatelet elaboration. J Thromb Haemost. 5, 18-23 (2007).
- Matsunaga, T., et al. Ex vivo large-scale generation of human platelets from cord blood CD34+ cells. Stem cells. 24 (12), 2877-2887 (2006).
- Sullenbarger, B., Bahng, J. H., Gruner, R., Kotov, N., Lasky, L. C. Prolonged continuous in vitro human platelet production using three-dimensional scaffolds. Exp Hematol. 37 (1), 101-110 (2009).
- Proulx, C., Boyer, L., Hurnanen, D. R., Lemieux, R. Preferential ex vivo expansion of megakaryocytes from human cord blood CD34+-enriched cells in the presence of thrombopoietin and limiting amounts of stem cell factor and Flt-3 ligand. J. Hematother. Stem Cell Res. 12 (2), 179-188 (2003).
- Bornstein, R., Garcia-Vela, J., Gilsanz, F., Auray, C., Cales, C. Cord blood megakaryocytes do not complete maturation, as indicated by impaired establishment of endomitosis and low expression of G1/S cyclins upon thrombopoietin-induced differentiation. Br. J. Haematol. 114 (2), 458-465 (2001).
- Chong, B. H., Choi, P. Y. I., Khachigian, L., Perdomo, J. Drug-induced Immune Thrombocytopenia. Hematol Oncol Clin North Am. 27 (3), (2013).
- Stasi, R., et al. Idiopathic thrombocytopenic purpura: Current concepts in pathophysiology and management. Thromb Haemost. 99 (1), 4-13 (2008).
