Summary

הדמיה גישות הערכות של רעילות לחץ חימצוני באמצעות חיישנים Fluorogenic מקודד גנטית

Published: February 07, 2018
doi:

Summary

כתב יד זה מתאר את השימוש fluorogenic מקודד גנטית כתבים ביישום של הדמיה לחיות תאים עבור הבחינה של xenobiotic-induced סטרס חמצוני. זו גישה נסיונית מציע רזולוציית ייתכן ללא תחרות, רגישות וספציפיות תוך הימנעות רבים את חסרונותיה של שיטות קונבנציונליות המשמש את הגילוי של רעילות סטרס חמצוני.

Abstract

בזמן סטרס חמצוני הוא מנגנון רעילות מצוטט לעתים קרובות, שיטות קונבנציונליות ללמוד אותו סובלים מספר חסרונות, כולל הרס של המדגם, החדרת חפצים פוטנציאל חוסר ירידה לפרטים עבור תגובתי מינים מעורבים. לפיכך, יש צורך הנוכחי בשדה של הרעלים עבור שיטות הרסניות, רגיש, ספציפי יכול לשמש כדי להתבונן ולכמת לפליטת תאיים חמצון-חיזור, יותר נפוץ המכונה סטרס חמצוני. כאן, אנו מציגים שיטה לשימוש של שני חיישנים מקודד גנטית fluorogenic, roGFP2 ו- HyPer, כדי לשמש מחקרי הדמיה לחיות תאים להתבונן בהשפעה xenobiotic תגובות חמצון. roGFP2 equilibrates עם גלוטתיון חמצון-חיזור פוטנציאליים (EGSH), בעוד HyPer ישירות מאתר חמצן (H2O2). שני חיישנים יכול להתבטא לתוך סוגי תאים שונים באמצעות תרביות תאים או התמרה חושית, ניתן לפלח כך תאים סלולריים ספציפיים. והכי חשוב, מיקרוסקופיה לחיות תאים באמצעות חיישנים אלה מציע יכולות ברזולוציה גבוהה אינה אפשרית בשיטות הקונבנציונלית. שינויים בעוצמת פלורסצנטיות למצלמות 510 ננומטר משמש בתור המדידה עבור שני חיישנים fluorogenic מקודד גנטית כשהוא מתרגש ברצף על ידי 404 nm ואור 488 ננומטר. מאפיין זה עושה רציומטרי שני חיישנים, סילוק חפצים מיקרוסקופ נפוצות ובתיקון הבדלים בביטוי חיישן בין תאים. מתודולוגיה זו יכול להיות מיושם במגוון פלטפורמות fluorometric מסוגל פליטת איסוף ומרגש באורכי גל מרשם, שהופך אותו מתאים לשימוש עם מערכות הדמיה קונאפוקלית מיקרוסקופ רחב-שדות קונבנציונלי, צלחת הקוראים. שני חיישנים fluorogenic מקודד גנטית שימשו במגוון של סוגי תאים ומחקרים על רעילות המוצר לפיקוח אלקטרוני הסלולרGSH ו- H2O2 הדור בזמן אמת. שמפורטות כאן היא שיטה סטנדרטית שניתן לסגלה באופן נרחב על פני סוגי תאים ופלטפורמות fluorometric עבור היישום של roGFP2 ושל HyPer לחיות תאים הערכות רעילות של סטרס חמצוני.

Introduction

המונח “עקה” מצוטט לעתים קרובות כמנגנון של רעלים, עדיין רחוקות הוא מונח זה תיאר באופן ספציפי. סטרס חמצוני ניתן להפנות למספר תהליכים תאיים, כולל דור של מינים חמצן תגובתי, הנזק שנגרם על ידי רדיקלים חופשיים, החמצון של מולקולות נוגדות חמצון, וגולש אפילו את הפעלת איתות ספציפיים. מגוון רחב של מזהמים סביבתיים1,2 ו-3,סוכנים התרופות4 תועדו לזירוז סטרס חמצוני על ידי פעולה ישירה או של המתחם xenobiotic עצמה5 ,6 או שנית על-ידי ייצור של חמצון מינים כחלק תגובת תאי7,8,9,10. לכן זה עניין רב ב באימון במדויק לבחון ולאפיין את תהליכי החמצון שמוביל תוצאות שליליות. שיטות קונבנציונליות של מדידת לחץ חימצוני לערב זיהוי של מולקולות מחמצנים11,12,13,14,15 או נוגדי חמצון16 ,17,18,19,20, או מדידה ישירה של מינים תגובתי עצמם21,22,23, 24. עם זאת, שיטות אלה מצריכים בדרך כלל הפרעה הסלולר, אשר לעתים קרובות צורכת את הדגימה מבטלת רזולוציה מרחבית, פוטנציאל מציג ממצאים25. בפיתוח שיטות יותר רגיש וספציפי של זיהוי המינים חמצון, סמנים של סטרס חמצוני ישימה בהרחבה על החקירה של ההשפעות השליליות של החשיפה xenobiotic.

מיקרוסקופ לחיות תאים באמצעות דור חדש של חיישנים fluorogenic מקודד גנטית התפתחה כלי רב עוצמה כדי לפקח על מצב חמצון-חיזור תאיים של תאים חיים. חיישנים אלה מתבטאים בדרך כלל באמצעות וקטור תחת השליטה של יזם ויראלי הוא הציג באמצעות מתודולוגיות תרביות תאים או התמרה חושית. ביטוי גבוה יעילות אינם הכרחיים, מאז התאים לבטא את החיישן פלורסנט ניתן לזהות בקלות באופן חזותי. עבור הערכות רעילות, התאים לבטא חיישנים אלה יכול להיות שנצפו באמצעות מיקרוסקופ פלורסצנטיות כפי שהם נחשפים תרכובות xenobiotic בזמן אמת. עיצוב ניסיוני זה מאפשר מדידות חוזרות באותו התא, המאפשר הבסיסית לכל תא הוקמה לשמש את שליטתה. ברזולוציה הטמפורלית גבוהה המוענקת על ידי הדמיה לחיות תאים הוא מתאים היטב עבור זיהוי אירועים חמצוני, במיוחד אלה צנוע בסולם ריכטר או ארעי בטבע. בנוסף גם רגישה וגם ספציפית כדי מולקולות היעד שלהם, ידי קרינה פלואורסצנטית של כמה חיישנים אלה יכולים להיות שמחים באמצעות שני אורכי הגל של האור. תופעה זו מאפשרת הפליטה לבטא יחס, דבר המאפשר הבחנה של האות שינויים הקשורים עם חיישן אותנטי תגובות מאלה שנגרמו על ידי חפצים כגון וריאציות חיישן ביטוי, עובי התא, מנורת פלורסנט העוצמה, photobleaching, ורגישות של גלאי קרינה פלואורסצנטית26. יתרון נוסף של השימוש של חיישנים fluorogenic הוא כי הם ניתן לפלח כך ספציפי מדורים הסלולר, יצירת רמת רזולוציה מרחבית ללא תחרות על ידי שיטות קונבנציונליות25,26,27.

יש לי משפחה גדולה של חיישנים מקודד גנטית בהתבסס על חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) פותחה, מאופיין לדווח על מגוון רחב של סמנים פיזיולוגיים, כולל ה-pH, טמפרטורה, ריכוזי סידן, היחס ATP/ADP25 ,28,29,30,31. בין אלה נכללים חיישנים של גלוטתיון חמצון-חיזור פוטנציאליים (EGSH), מימן על-חמצני (H2O2) על כל שטח התקליטור. בעוד חיישנים אלה פותחו עבור יישומים חמצון-חיזור ופיזיולוגיה, הם גם הותאמו ללמוד xenobiotic-induced סטרס חמצוני. באופן ספציפי, פרוטוקול שמפורטות כאן מתאר את השימוש roGFP2 חיישן אלקטרוניGSH את החיישן2 2O H HyPer.

roGFP2 מדווח על הפוטנציאל חמצון-חיזור תאיים מופחתת ו מחמצנים גלוטתיון (GSH/GSSG) דרך העברת חמצון-חיזור מעורבים peroxidase גלוטתיון (GPx), glutaredoxin (Grx) ו גלוטתיון רדוקטאז (גר) (איור 1)25, 32 , 33. גלוטתיון הוא המולקולה השולט הסלולר נוגד חמצון, והוא נוכח בעיקר בצורתו מופחתת (GSH) בריכוזים millimolar ב-25,ציטוזול34. בעוד EGSH לא נקשר לכל תוצאה פונקציונלית, הוא מוכר בתור מדד חשוב של מצב חמצוני תאיים34. גידול קטן יחסית של הריכוז של GSSG גורמת עלייה EGSH זה לזיהוי על-ידי roGFP2. לא פחות חשוב, ניטור של EGSH השימוש roGFP2 במהלך חשיפות xenobiotic יכול באופן פוטנציאלי לגלות הרבה על מנגנון הפעולה במספר נקודות הממסר חמצון-חיזור ולעודד מסלולים הקשורים, כגון פוספט פנטוז (איור 1 )35. החיישן השני שנדונו כאן, HyPer, הוא בדיקה תאיים של2 2O H נגזר מן הכניסה של חלבון פלואורסצנטי צהוב (YFP) לתוך תחום הרגולציה של חיידקי H2O2-תמלול רגיש פקטור OxyR136. למרות זאת בעבר נחשב של חמצן תגובתי מזיק ביניים, H2O2 הוא יותר ויותר להכרה של מולקולת איתות תאיים חשובים תחת התנאים הפיזיולוגיים37, 38, רומז כי תפקידים לא מזוהה עבור H2O2 קיימים רעלים גם כן. למשל, עודף H2O2 הנגרם על ידי חשיפה xenobiotic יכול להיות הקדמה dysregulation באיתות או שינוי מצב ביואנרגיה.

שני חיישנים fluorogenic מקודד גנטית הביעו במספר שורות תאים הוקמה, כולל את האנושי קרצינומה epidermoid תא A431 ובין תאי אפיתל הסמפונות אדם הקו BEAS-2B, לצפות לשינויים EGSH ו- H2 O2 בתגובה מגוון של חשיפות רעילות. אלה כוללים מזהמים גזי (אוזון35), מרכיבים מסיסים של חלקיקי החומר (1, 2 naphthoquinone39,40 ואבץ41), ניקל חלקיקים (נתונים שלא פורסמו). מחקרים אלה מייצגים רק קבוצת משנה קטנה של היישומים האפשריים של חיישנים שני אלה. תיאורטית, כל סוג התא מסוגל קבלת ולבטא את ה-DNA של חיישנים אלה באמצעות שיטות בביולוגיה מולקולרית קונבנציונלי יכול להיות מנוצל כדי להעריך את ההשפעות של ואינטראקציות חשד לשנות המדינה חמצוני הסלולר. נכון להיום, אחד או יותר של חיישנים אלה נתגלתה ובמיקומים שונים אאוקריוטים פרוקריוטים, כולל מספר מידע יונקים, צמח, בקטריאלית של שמרים תא סוגי25,26,36,42. המדידה עבור חיישנים2 2O EGSH ו- H הוא שינוי בעוצמת פלורסצנטיות הנפלטים-510 ננומטר על עירור עם 488, 404 אור ננומטר. שיטה זו היא יכולת הסתגלות נרחב הפלטפורמות fluorometric, כולל סוגים שונים של מיקרוסקופ (קונאפוקלית, שדה רחב), קוראי צלחת. השיטה המוצגת כאן מאפשר תצפית רגיש וספציפי של EGSH ו- H תאיים2O2 במערכות במבחנה רעילות.

Protocol

1. הכנת תאים הערה: הליך זה מתאר את התמרה חושית lentiviral של קו תא מונצחים (BEAS-2B; בקרת האוויר, במנאסס, VA) כדי להביע את הכתב הרצויה (roGFP2 או HyPer). יכול להיות מנוצל קווים/סוגי תאים אחרים ו/או שיטות של העברה גנטית, כולל תרביות תאים, כל עוד הם תוצאה של רמה של הכתב ביטוי הולם לדמיין מספר מספיק של…

Representative Results

השימוש roGFP2 HyPer באיתור שינויים EGSH ו- H תאיים2O2 היה טוב כפי שתוארה לעיל25,36,42,43 , הוא שמוצג כאן. תמונות קונאפוקלית של תאים לבטא roGFP2 בסיסית, הבאים תוספת של2O H2 ו- DTT מוצגים <strong class="xf…

Discussion

השימוש roGFP2 HyPer באיתור שינויים תאיים EGSH ו- H2O2, בהתאמה, כבר היטב תיאר הקודם מחקרים פיזיולוגיים רעילות 25,35,36 ,39,40,41,42,43. פרוטוקול ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים רוצה להודות Lavrich שמלת Katelyn לקבלת סיוע עם עיצוב ניסיוני ועורך כתב היד.

Materials

roGFP2 Plasmid University of Oregon N/A Generous gift of S.J. Remington
HyPer Plasmid Evrogen FP941
Hydrogen Peroxide Sigma Aldrich H1009
Dithiothreitol Sigma Aldrich 10708984001
9,10-Phenanthrenequinone Sigma Aldrich 156507
Black Wall Glass Bottomed Dishes Ted Pella 14029-20
BEAS-2B cell line American Type Culture Collection CRL-9609
Keratinocyte Basal Medium Lonza 192151
Keratinocyte Growth Medium BulletKit Lonza 192060
Excel  Microsoft Office Suite N/A
NIS-Elements AR Imaging Software Nikon N/A
Nikon C1si Confocal Imaging System Nikon N/A

References

  1. Cross, C. E., et al. Environmental oxidant pollutant effects on biologic systems: a focus on micronutrient antioxidant-oxidant interactions. Am J Respir Crit Care Med. 166, 44-50 (2002).
  2. Kobzik, L. Environmental particulate-mediated cytokine production in lung epithelial cells (A549): role of preexisting inflammation and oxidant stress. J Toxicol Environ Health. 55, 31-44 (1998).
  3. Jaeschke, H., McGill, M. R., Ramachandran, A. Oxidant stress, mitochondria, and cell death mechanisms in drug-induced liver injury: lessons learned from acetaminophen hepatotoxicity. Drug Metab Reviews. 44, 88-106 (2012).
  4. Wolf, M. B., Baynes, J. W. The anti-cancer drug, doxorubicin, causes oxidant stress-induced endothelial dysfunction. Biochim Biophys Acta. 1760, 267-271 (2006).
  5. Kumagai, Y., Shinkai, Y., Miura, T., Cho, A. K. The chemical biology of naphthoquinones and its environmental implications. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 52, 221-247 (2012).
  6. Pham, H. T., Maccarone, A. T., Campbell, J. L., Mitchell, T. W., Blanksby, S. J. Ozone-induced dissociation of conjugated lipids reveals significant reaction rate enhancements and characteristic odd-electron product ions. J Am Soc Mass Spectrom. 24, 286-296 (2013).
  7. Abdel-Malek, Z. A., Kadekaro, A. L., Swope, V. B. Stepping up melanocytes to the challenge of UV exposure. Pigment Cell Melanoma Res. 23, 171-186 (2010).
  8. Berisha, H., Pakbaz, H., Absood, A., Foda, H., Said, S. Nitric oxide mediates oxidant tissue injury caused by paraquat and xanthine oxidase. Ann N Y Acad Sci. 723, 422-425 (1994).
  9. Gao, X., et al. Mitochondrial dysfunction may explain the cardiomyopathy of chronic iron overload. Free Radic Bio Med. 49, 401-407 (2010).
  10. Shukla, A., et al. Asbestos induces mitochondrial DNA damage and dysfunction linked to the development of apoptosis. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 285, 1018-1025 (2003).
  11. Charles, R., Jayawardhana, T., Eaton, P. Gel-based methods in redox proteomics. Biochim Biophys Acta. 1840, 830-837 (2014).
  12. Thornalley, P. J., Rabbani, N. Detection of oxidized and glycated proteins in clinical samples using mass spectrometry-a user’s perspective. Biochim Biophys Acta. 1840, 818-829 (2014).
  13. Arato, S., Ito, H., Miyashita, K., Hayakawa, K., Itabashi, Y. A facile method for the detection of aldehydes in oxidized lipids using solid-phase microextraction fiber and gas chromatograph equipped with a septum-free injector. J Oleo Sci. 58, 17-22 (2009).
  14. Collins, A. R. Measuring oxidative damage to DNA and its repair with the comet assay. Biochim Biophys Acta. 1840, 794-800 (2014).
  15. Churg, A., Keeling, B., Gilks, B., Porter, S., Olive, P. Rat mesothelial and tracheal epithelial cells show equal DNA sensitivity to hydrogen peroxide-induced oxidant injury. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 268, 832-838 (1995).
  16. Fraga, C. G., Oteiza, P. I., Galleano, M. In vitro measurements and interpretation of total antioxidant capacity. Biochim Biophys Acta. 1840, 931-934 (2014).
  17. Niki, E., Noguchi, N. Evaluation of antioxidant capacity: what capacity is being measured by which method. IUBMB Life. 50, 323-329 (2000).
  18. Pharikal, K., Das, P., Dey, C., Dasgupta, S. Tissue ascorbate as a metabolic marker in cadmium toxicity. Int J Vitam Nut Res. 58, 306-311 (1987).
  19. Tabata, M., Totani, M., Murachi, T. A chemiluminometric method for NADPH and NADH using a two-enzyme bioreactor and its application to the determination of magnesium in serum. Biomed Chrom. 4, 123-127 (1990).
  20. Ballatori, N., et al. Glutathione dysregulation and the etiology and progression of human diseases. Biol Chem. 390, 191-214 (2009).
  21. Nauseef, W. M. Detection of superoxide anion and hydrogen peroxide production by cellular NADPH oxidases. Biochim Biophys Acta. 1840, 757-767 (2014).
  22. Hawkins, C. L., Davies, M. J. Detection and characterisation of radicals in biological materials using EPR methodology. Biochim Biophys Acta. 1840, 708-721 (2014).
  23. Kettle, A. J., et al. Measuring chlorine bleach in biology and medicine. Biochim Biophys Acta. 1840, 781-793 (2014).
  24. Carballal, S., Bartesaghi, S., Radi, R. Kinetic and mechanistic considerations to assess the biological fate of peroxynitrite. Biochim Biophys Acta. 1840, 768-780 (2014).
  25. Meyer, A. J., Dick, T. P. Fluorescent protein-based redox probes. Antioxid Redox Signal. 13, 621-650 (2010).
  26. Dooley, C. T., et al. Imaging dynamic redox changes in mammalian cells with green fluorescent protein indicators. J Biol Chem. 279, 22284-22293 (2004).
  27. Malinouski, M., Zhou, Y., Belousov, V. V., Hatfield, D. L., Gladyshev, V. N. Hydrogen peroxide probes directed to different cellular compartments. PloS One. 6, 14564 (2011).
  28. Guzman, J. N., et al. Oxidant stress evoked by pacemaking in dopaminergic neurons is attenuated by DJ-1. Nature. 468, 696-700 (2010).
  29. Breckwoldt, M. O., et al. Multiparametric optical analysis of mitochondrial redox signals during neuronal physiology and pathology in vivo. Nat Med. 20, 555-560 (2014).
  30. Wolf, A. M., Nishimaki, K., Kamimura, N., Ohta, S. Real-time monitoring of oxidative stress in live mouse skin. J Invest Dermatol. 134, 1701-1709 (2014).
  31. Mishina, N. M., et al. Does cellular hydrogen peroxide diffuse or act locally. Antioxid Redox Signal. , (2011).
  32. Gutscher, M., et al. Real-time imaging of the intracellular glutathione redox potential. Nat Methods. 5, 553-559 (2008).
  33. Lohman, J. R., Remington, S. J. Development of a family of redox-sensitive green fluorescent protein indicators for use in relatively oxidizing subcellular environments. Biochem. 47, 8678-8688 (2008).
  34. Schafer, F. Q., Buettner, G. R. Redox environment of the cell as viewed through the redox state of the glutathione disulfide/glutathione couple. Free Radic Bio Med. 30, 1191-1212 (2001).
  35. Gibbs-Flournoy, E. A., Simmons, S. O., Bromberg, P. A., Dick, T. P., Samet, J. M. Monitoring intracellular redox changes in ozone-exposed airway epithelial cells. Environ Health Perspect. 121, 312 (2013).
  36. Belousov, V. V., et al. Genetically encoded fluorescent indicator for intracellular hydrogen peroxide. Nat Methods. 3, 281-286 (2006).
  37. Wood, Z. A., Poole, L. B., Karplus, P. A. Peroxiredoxin evolution and the regulation of hydrogen peroxide signaling. Science. 300, 650-653 (2003).
  38. Sies, H. Role of Metabolic H2O2 Generation REDOX SIGNALING AND OXIDATIVE STRESS. J Biol Chem. 289, 8735-8741 (2014).
  39. Cheng, W. -. Y., et al. Linking oxidative events to inflammatory and adaptive gene expression induced by exposure to an organic particulate matter component. Environ Health Perspect. 120, 267 (2012).
  40. Cheng, W. -. Y., et al. An integrated imaging approach to the study of oxidative stress generation by mitochondrial dysfunction in living cells. Environ Health Perspect. , 902-908 (2010).
  41. Wages, P. A., et al. Role of H 2 O 2 in the oxidative effects of zinc exposure in human airway epithelial cells. Redox Biol. 3, 47-55 (2014).
  42. Morgan, B., Sobotta, M. C., Dick, T. P. Measuring E GSH and H2O2 with roGFP2-based redox probes. Free Radic Bio Med. 51, 1943-1951 (2011).
  43. Schwarzländer, M., Dick, T. P., Meyer, A. J., Morgan, B. Dissecting redox biology using fluorescent protein sensors. Antiox Redox Signal. 24, 680-712 (2016).
  44. Wang, L., Atkinson, R., Arey, J. Formation of 9, 10-phenanthrenequinone by atmospheric gas-phase reactions of phenanthrene. Atmos Environ. 41, 2025-2035 (2007).
  45. Tantama, M., Hung, Y. P., Yellen, G. Imaging intracellular pH in live cells with a genetically encoded red fluorescent protein sensor. J Am Chem Soc. 133, 10034-10037 (2011).
  46. Matlashov, M. E., et al. Fluorescent ratiometric pH indicator SypHer2: applications in neuroscience and regenerative biology. Biochim Biophys Acta. 1850, 2318-2328 (2015).
  47. Hou, J. -. T., et al. A highly selective water-soluble optical probe for endogenous peroxynitrite. Chem Commun. 50, 9947-9950 (2014).
  48. Kojima, H., et al. Detection and imaging of nitric oxide with novel fluorescent indicators: diaminofluoresceins. Anal Chem. 70, 2446-2453 (1998).
  49. Gabe, Y., Ueno, T., Urano, Y., Kojima, H., Nagano, T. Tunable design strategy for fluorescence probes based on 4-substituted BODIPY chromophore: improvement of highly sensitive fluorescence probe for nitric oxide. Anal Bioanal Chem. 386, 621-626 (2006).
  50. Garner, A. L., et al. Specific fluorogenic probes for ozone in biological and atmospheric samples. Nat Chem. 1, 316-321 (2009).
  51. Cheng, W. -. Y., Larson, J. M., Samet, J. M. Monitoring intracellular oxidative events using dynamic spectral unmixing microscopy. Methods. 66, 345-352 (2014).
  52. Wages, P. A., Cheng, W. -. Y., Gibbs-Flournoy, E., Samet, J. M. Live-cell imaging approaches for the investigation of xenobiotic-induced oxidant stress. Biochim Biophys Acta. 1860, 2802-2815 (2016).
check_url/fr/56945?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Corteselli, E. M., Samet, J. M., Gibbs-Flournoy, E. A. Imaging Approaches to Assessments of Toxicological Oxidative Stress Using Genetically-encoded Fluorogenic Sensors. J. Vis. Exp. (132), e56945, doi:10.3791/56945 (2018).

View Video