Summary

Жирные кислоты 13C Isotopologue профилирования обеспечивает проницательность в трофических углерода передачи и метаболизма липидов беспозвоночных потребителей

Published: April 17, 2018
doi:

Summary

Жирные кислоты трофических маркер подход, т.е., ассимиляции жирных кислот как весь молекулы и передачи в потребительских ткани с без или незначительные модификации, препятствуют пробелы в знаниях в метаболизме жирных кислот мелких почвенных беспозвоночных. Isotopologue профилирования предусмотрено как ценный инструмент отделить трофических взаимодействий.

Abstract

Жирные кислоты (ФАС) являются полезным биомаркеров в пищевой сети экологии, потому что они обычно усваивается как полный молекулы и переведены в потребительских ткани с несовершеннолетним или без модификации, позволяя диетических маршрутизации между различными трофическими уровнями. Однако FA трофических маркер подход по-прежнему препятствует ограниченные знания метаболизма липидов почвенной фауны. В настоящем исследовании использованы полностью помечены пальмитиновая кислота (13C16:0, 99% атом) как трассировщик в пути метаболизма жирных кислот два широко почвы ногохвостки, Protaphorura fimata и Heteromurus nitidus. Для того, чтобы расследовать судьбу и метаболические изменения этого прекурсора, представлен метод профилирования isotopologue, выполнено по масс-спектрометрии с помощью одного иона мониторинга. Кроме того описан вверх по течению лаборатории кормления эксперимент, а также добыча и метилирования доминирующей Липидные фракции (нейтральные липиды, фосфолипиды) и соответствующие формулы и расчеты. Isotopologue профилирования не только урожай, общий 13C обогащения в жирные кислоты, полученных от 13C пометкой прекурсоры, но также производит шаблон isotopologues, превышения массы родительского Иона (т.е. Молекулярный ион FA М+) каждого помечены FA на одной или нескольких единицах массы (M+ 1M+ 2M+ 3, и т.д.). Это знание позволяет сделать выводы о соотношении диетических маршрутизации полностью потребляются Англии по сравнению с de novo биосинтеза. Isotopologue профилирование предлагается как полезный инструмент для оценки метаболизма жирных кислот в почвенных животных отделить трофических взаимодействий.

Introduction

В загадочные Хабитат такие почвы трофических связей трудно адрес и далее ограничен небольшой размер фауны. Последнее десятилетие было отмечено прогресса в биохимической экологии, особенно в использовании жирных кислот в качестве биомаркеров для определения стратегии кормления почвенной фауны в полевых условиях1,2,3. Это основано на факте, что жирные кислоты из ресурсов могут быть включены в потребительских ткани как весь молекулы, процесс называется диетических маршрутизации4. Течение трех трофических уровней, т.е. от грибов к струнцы ногохвостки5было сообщено передачи жирных кислот. Недавно хищной фауны считался6,7 , и первые обзоры на жирные кислоты как трофические маркеров в пищевых сетях почвы были опубликованы8,9.

Более подробная информация о трофических взаимодействий достигается стабильный изотоп жирных кислот зондирование (FA-SIP). Определение 13C /12C соотношение жирных кислот в рационе и потребителей могут приписывать двоичные ссылки и оценить поток связанного углерода и был нанят в наземных, пресноводных и морских пищевых сетях10,11 ,12,13. Основное предположение — что диетических перенаправленное жирные кислоты не подлежат ферментативных процессов; Таким образом, их 13C сигнал, т.е. 13C /12C соотношение жирных кислот, в потребитель аналогична в диетические1. Однако постепенное истощение 13C подписи вверх по пищевой цепи поступили в водных системах, тем самым препятствуя широкое применение FA-SIP в трофических исследования14,,1516. Кроме того знания метаболизма липидов в большинстве беспозвоночных в наземных пищевых сетях по-прежнему ограничен.

Понимание путей метаболизма липидов в потребителей имеет важное значение для использования трофических маркер жирных кислот, как средство для определения количественной углерод потока в пищевой сети экологии. Имея это в виду, 13C-isotopologue профилирования, который в принципе может быть применен для исследования метаболизма углеродных любой биологической системы17, является перспективным методом. После введения 13C, меченного углерода субстрата, распределение 13C в метаболических сети прослеживается с сгенерированный метаболических продуктов в шоу потребительской распределение конкретных isotopologue. Это могут быть оценены количественных ядерный резонанс метаболических спектроскопии18,19 или масс-спектрометрии20,21, с последнего благоприятствования в биологических образцов с низкой биомассы из-за его выше чувствительность.

Хотя isotopologue профилирования успешно применяется для аминокислот и предоставляет проницательность в метаболизм углерода в естественных условиях , бактериальных патогенов17,22,23, ее осуществление в жирных кислот отстает. Первый подробный анализ на судьбу стабильного изотопа помечены прекурсоров жирных кислот, ее диетических маршрутизации или деградации через β-окисления, в почве беспозвоночных потребителей, недавно была исполнена Мензел и др. 24. здесь, методологические основы для включения экспериментов с 13C маркировкой жирные кислоты, а затем isotopologue анализ ключевых потомков в частых почвенных беспозвоночных, ногохвостки, предоставляются. Эти microarthropods являются хорошей моделью группой, поскольку они являются важными компонентами почвы пищевой сети и хорошо исследованы на8,их трофических маркер в жирные кислоты25.

Понимание путей метаболизма липидов в потребителей имеет важное значение для использования трофических маркер жирных кислот, как средство для определения количественной углерод потока в пищевой сети экологии. Настоящий протокол дает проектирование и настройка для кормления эксперимент и биохимическими процедурами для извлечения и метилирования доминирующей липиды фракций (нейтральные липиды, фосфолипиды) от ногохвостки лаборатории. Он демонстрирует, как isotopologue состав жирных кислот анализируется по масс-спектрометрии и описывает связанные формулы и расчеты. Эта процедура приводит к: (i коэффициентов превышения массы родительского Ион (т.е., жирные кислоты Молекулярный ион М+) на один или более isotopologues массы единицы (M+ 1M+ 2M+ 3, и т.д.) и (ii) общий 13 C обогащения в жирные кислоты, производный от 13C маркировкой прекурсоров. Хотя используется для ногохвостки, этот подход как правило может применяться к любой другой хищник жертва взаимодействия на той предпосылке, что они culturable в достаточном количестве в контролируемых условиях для обеспечения успешного лейбл поглощения и последующих Проверка.

Protocol

Описывается протокол не подпадают под компетенцию животных этики. Однако когда люди адаптировать описанные протоколы для высших животных, заботиться, что институциональные животных этики Комитет утвердил протокол для обработки животных. 1. выращивание животных <p class="j…

Representative Results

Свежие содержание вес и липидов ногохвосткиВ ходе описанных эксперимента содержание в NLFAs и PLFAs сделал существенно не изменилось с течением времени, в то время как свежие вес образцов немного увеличилась, но не значительно24. Оба параметра указы…

Discussion

Isotopologue профилирование

Подробный анализ количественных аспектов в 13C распределения в ФАС требует передовые технологии для присвоения углерода, секционирование в пищевых цепях. Настоящая работа занятых isotopologue профилирования оценить 13C /12C коэф?…

Acknowledgements

Финансовой поддержке р. Мензел и L. Ruess, Deutsche Forschungsgemeinschaft (RU RU780/11-1) с благодарностью. Р. Неринг финансировалась RU 780/10-1. Наконец мы чрезвычайно благодарны доктор Hazel Ruvimbo Мабореке для корректуры наши рукописи.

Materials

neoLab-Round jars neoLab 2-1506 69 x 40 mm, 10 pacs/pack
Charcoal activated Carl Roth X865.1 p.a., powder, CAS No. 7440-44-0
Alabaster Dental RÖHRICH-GIPSE http://www.roehrich-gipse.de/dentalgipse.php
Chloroform Carl Roth 7331.1 HPLC ≥ 99,9 %
Methanol Carl Roth P717.1 HPLC ≥ 99,9 %
Hexan Carl Roth 7339.1 HPLC ≥ 98 %
tert-Butyl methyl ether (MTBE) Carl Roth T175.1 HPLC ≥ 99,5 %
Aceton Carl Roth 7328.2 HPLC ≥ 99,9 %
NaOH Carl Roth 6771.1 p.a. ≥99 %, in pellets
di-Natriumhydrogenphosphat Carl Roth P030.1 p.a. ≥99 % , water free
Na-dihydrogenphosphat Dihydrat Carl Roth T879.1 p.a. ≥99 %
Hypochloric acid (6 N) VWR International 26,115,000 AVS TITRINORM vol. solution
Bond Elut (Columns) Agilent Tech. 14102037 HF Bond Elut-SI, 500 mg, 3 mL, 50/PK
Präparatengläser Duran Glasgerätebau Ochs 135215 Ø 16 x 100 mm, plus screw cap with handy knurl and integrated PTFE/silicone gasket
Supelco 37 Component FAME Mix Sigma-Aldrich 47885-U Supelco 10 mg/mL in methylene chloride, analytical standard
FlowMesh Carl Roth 2796.1 Polypropylene mesh, approximately 0.3 mm thick, with 1 mm strand spacing
Bacterial Acid Methyl Ester (BAME) Mix Sigma-Aldrich 47080-U Supelco 10 mg/mL in methyl caproate, analytical standard
Methyl nonadecanoate Sigma-Aldrich 74208 analytical standard ≥ 98.0 %
Hexadecanoic acid-1-13C (Palmitic) Larodan Fine Chemicals 78-1600 GC ≥ 98.0 % (13C: 99.0 %)
RVC 2-25 CDplus Martin Christ Gefrier-trocknungsanlagen Compact benchtop midi concentrator
Alpha 2-4 LDplus Martin Christ Gefrier-trocknungsanlagen Drying manifold
MZ 2C NT Vacuubrand GMBH Vacuum pump
Roto-Shake Genie Scientific Industries Combined rocking and rotating device
XP64 Micro Comparator Mettler Toledo Super high precision balance
GC-System 7890A Agilent Tech. Gas chromatograph
7000 GC/MS Triple Quad Agilent Tech. Triple Quad mass spectrometer
7683B Series Injector Agilent Tech. Sample injector
Heraeus Multifuge 3SR+ Thermo Scientific Centrifuge with 10 ml tube rotor

References

  1. Ruess, L., et al. Application of lipid analysis to understand trophic interactions in soil. Ecology. 86 (8), 2075-2082 (2005).
  2. Ruess, L., et al. Lipid composition of Collembola and their food resources in deciduous forest stands – Implications for feeding strategies. Soil Biology and Biochemistry. 39 (8), 1990-2000 (1990).
  3. Chamberlain, P. M., Bull, I. D., Black, H. I. J., Ineson, P., Evershed, R. P. Fatty acid composition and change in Collembola fed differing diets: identification of trophic biomarkers. Soil Biology and Biochemistry. 37 (9), 1608-1624 (2005).
  4. Stott, A. W., Davies, E., Evershed, R. P., Tuross, N. Monitoring the routing of dietary and biosynthesised lipids through compound-specific stable isotope (delta C-13) measurements at natural abundance. Naturwissenschaften. 84 (2), 82-86 (1997).
  5. Ruess, L., Haggblom, M. M., Langel, R., Scheu, S. Nitrogen isotope ratios and fatty acid composition as indicators of animal diets in belowground systems. Oecologia. 139 (3), 336-346 (2004).
  6. Pollierer, M. M., Scheu, S., Haubert, D. Taking it to the next level: Trophic transfer of marker fatty acids from basal resource to predators. Soil Biology and Biochemistry. 42 (6), 919-925 (2010).
  7. Ferlian, O., Scheu, S., Pollierer, M. M. Trophic interactions in centipedes (Chilopoda, Myriapoda) as indicated by fatty acid patterns: Variations with life stage, forest age and season. Soil Biology and Biochemistry. 52, 33-42 (2012).
  8. Ruess, L., Chamberlain, P. M. The fat that matters: Soil food web analysis using fatty acids and their carbon stable isotope signature. Soil Biology and Biochemistry. 42 (11), 1898-1910 (2010).
  9. Traugott, M., Kamenova, S., Ruess, L., Seeber, J., Plantegenest, M. Empirically characterising trophic networks: What emerging DNA-based methods, stable isotope and fatty acid analyses can offer. Adv Ecol Res. 49, 177-224 (2013).
  10. Hammer, B. T., Fogel, M. L., Hoering, T. C. Stable carbon isotope ratios of fatty acids in seagrass and redhead ducks. Chemical Geology. 152 (1-2), 29-41 (1998).
  11. Budge, S. M., Iverson, S. J., Koopman, H. N. Studying trophic ecology in marine ecosystems using fatty acids: A primer on analysis and interpretation. Marine Mammal Science. 22 (4), 759-801 (2006).
  12. Haubert, D., et al. Trophic structure and major trophic links in conventional versus organic farming systems as indicated by carbon stable isotope ratios of fatty acids. Oikos. 118 (10), 1579-1589 (2009).
  13. Ngosong, C., Raupp, J., Richnow, H. H., Ruess, L. Tracking Collembola feeding strategies by the natural 13C signal of fatty acids in an arable soil with different fertilizer regimes. Pedobiologia. 54 (4), 225-233 (2011).
  14. Bec, A., et al. Assessing the reliability of fatty acid-specific stable isotope analysis for trophic studies. Methods in Ecology and Evolution. 2 (6), 651-659 (2011).
  15. Gladyshev, M. I., Makhutova, O. N., Kravchuk, E. S., Anishchenko, O. V., Sushchik, N. N. Stable isotope fractionation of fatty acids of Daphnia fed laboratory cultures of microalgae. Limnologica. 56 (Supplement C. 56 (Supplement C), 23-29 (2016).
  16. Gladyshev, M. I., Sushchik, N. N., Kalachova, G. S., Makhutova, O. N. Stable isotope composition of fatty acids in organisms of different trophic levels in the Yenisei river. PLoS One. 7 (3), e34059 (2012).
  17. Eisenreich, W., Dandekar, T., Heesemann, J., Goebel, W. Carbon metabolism of intracellular bacterial pathogens and possible links to virulence. Nature Reviews Microbiology. 8 (6), 401-412 (2010).
  18. Eylert, E., Bacher, A., Eisenreich, W. NMR-based isotopologue profiling of microbial carotenoids. Methods Mol Biol. 892, 315-333 (2012).
  19. Garton, N. J., O’Hare, H. M. Tuberculosis: feeding the enemy. Chemical Biology. 20 (8), 971-972 (2013).
  20. Rosenblatt, J., Chinkes, D., Wolfe, M., Wolfe, R. R. Stable isotope tracer analysis by GC-MS, including quantification of isotopomer effects. Am J Physiol. 263 (3), E584-E596 (1992).
  21. Fernandez, C. A., Des Rosiers, C., Previs, S. F., David, F., Brunengraber, H. Correction of 13C mass isotopomer distributions for natural stable isotope abundance. J Mass Spectrom. 31 (3), 255-262 (1996).
  22. Heuner, K., Eisenreich, W. The intracellular metabolism of legionella by isotopologue profiling. Methods Mol Biol. 954, 163-181 (2013).
  23. Willenborg, J., et al. Characterization of the pivotal carbon metabolism of Streptococcus suis serotype 2 under ex vivo and chemically defined in vitro conditions by isotopologue profiling. J Biol Chem. 290 (9), 5840-5854 (2015).
  24. Menzel, R., Ngosong, C., Ruess, L. Isotopologue profiling enables insights into dietary routing and metabolism of trophic biomarker fatty acids. Chemoecology. 27 (3), 101-114 (2017).
  25. Buse, T., Ruess, L., Filser, J. New trophic biomarkers for Collembola reared on algal diets. Pedobiologia. 56 (3), 153-159 (2013).
  26. Hutson, B. R. Effects of variations of the plaster-charcoal culture method on a Collembolan, Folsomia candida. Pedobiologia. 18, 138-144 (1978).
  27. Fountain, M. T., Hopkin, S. P. Folsomia candida (Collembola): a "standard" soil arthropod. Annu Rev Entomol. 50, 201-222 (2005).
  28. ISO, I. O. f. S. . Soil Quality-Inhibition of reproduction of Collembola (Folsomia candida) by soil pollutants. , (1999).
  29. Welch, D. F. Applications of cellular fatty acid analysis. Clin Microbiol Rev. 4 (4), 422-438 (1991).
  30. Dodds, E. D., McCoy, M. R., Rea, L. D., Kennish, J. M. Gas chromatographic quantification of fatty acid methyl esters: flame ionization detection vs. electron impact mass spectrometry. Lipids. 40 (4), 419-428 (2005).
  31. Kuppardt, S., Chatzinotas, A., Kastner, M. Development of a fatty acid and RNA stable isotope probing-based method for tracking protist grazing on bacteria in wastewater. Appl Environ Microbiol. 76 (24), 8222-8230 (2010).
  32. Zhang, X., He, H., Amelung, W. A GC/MS method for the assessment of 15N and 13C incorporation into soil amino acid enantiomers. Soil Biology and Biochemistry. 39 (11), 2785-2796 (2007).
  33. Vetter, W., Thurnhofer, S. Analysis of fatty acids by mass spectrometry in the selected ion monitoring mode. Lipid Technol. 19 (8), 184-186 (2007).
  34. Thurnhofer, S., Vetter, W. A gas chromatography/electron ionization-mass spectrometry-selected ion monitoring method for determining the fatty acid pattern in food after formation of fatty acid methyl esters. J Agric Food Chem. 53 (23), 8896-8903 (2005).
  35. Haubert, D., Haggblom, M. M., Scheu, S., Ruess, L. Effects of fungal food quality and starvation on the fatty acid composition of Protaphorura fimata (Collembola). Comparative Biochemistry and Physiology B-Biochemistry & Molecular Biology. 138 (1), 41-52 (2004).
check_url/fr/57110?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Menzel, R., Nehring, R., Simsek, D., Ruess, L. Fatty Acid 13C Isotopologue Profiling Provides Insight into Trophic Carbon Transfer and Lipid Metabolism of Invertebrate Consumers. J. Vis. Exp. (134), e57110, doi:10.3791/57110 (2018).

View Video