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Article de méthode

Imagerie de cellules vivantes de la ségrégation des chromosomes pendant la mitose

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DOI :

10.3791/57389

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14 mars 2018

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit une méthode simple et pratique pour étiqueter et visualiser direct chromosomes dans les cellules mitotiques en utilisant l’étiquette Histone2B-GFP BacMam 2.0 et un système de microscopie confocale tourne disque.

Résumé

Chromosomes doivent être fiable et uniforme divisés en cellules filles pendant la division cellulaire mitotique. Fidélité de la ségrégation chromosomique est contrôlée par les mécanismes multiples qui incluent le Checkpoint de montage broche (SAC). Le SAC fait partie d’un système de rétroaction complexe qui est responsable de la prévention d’un progrès de cellulaire par mitose, à moins que tous les kinétochores chromosomiques ont joint à la broche de microtubules. Calorifugeage chromosomique et chromosome anormal est un indicateur des postes de contrôle dysfonctionnel cycle cellulaire de la ségrégation et peut être utilisée pour mesurer la stabilité génomique des cellules en division. Déréglementation du SAC peut entraîner la transformation d’une cellule normale en une cellule maligne à travers l’accumulation des erreurs au cours de la ségrégation chromosomique. Mise en œuvre du SAC et la formation du kinétochore complexe sont étroitement contrôlée par les interactions entre les kinases et phosphatases tels que de la protéine Phosphatase 2 a (PP2A). Ce protocole décrit l’imagerie de cellules vivantes des chromosomes dans les fibroblastes embryonnaires de souris isolés de souris qui avaient un masquage de la sous-unité régulatrice PP2A-B56γ à la traîne. Cette méthode permet de surmonter les défauts des autres cell cycle control techniques d’imagerie comme cytométrie ou immunocytochimie seulement présentent un portrait de cellulaire cytocinèse, au lieu d’une visualisation dynamique spatio-temporelle des chromosomes au cours de la mitose.

Introduction

Dans le protocole suivant, nous décrivons une méthode pratique pour visualiser la ségrégation chromosomique et la progression mitotique au cours du cycle cellulaire dans les fibroblastes embryonnaires de souris à l’aide d’Histone 2 b-GFP, marquage BacMam 2.0 et l’imagerie de cellules vivantes.

Points de contrôle de cycle cellulaire surveillent la ségrégation des chromosomes et jouent un rôle important dans le maintien de l’intégrité génétique de la cellule 1,2,3. Accumulation de mauvaise ségrégation chromosomes peut conduire à aneuploïdie, qui est ....

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Protocole

Toutes les expériences menées dans ces études ont été effectuées conformément aux protocoles approuvés par le Comité de l’emploi et d’institutionnels animalier dans le centre de recherche de Food and Drug Administration (FDA).

1. isolement et Culture de fibroblastes embryonnaires de souris (MEFs)

  1. Isoler les fibroblastes embryonnaires de souris (MEFs) d’une souche de PP2A-B56γ-souris et ceux de type sauvage par le protocole standard 7,8,9.
  2. ExpandMEFs pour 3 passages, congeler et stocker jusqu'à ce que nécessaire pour expériences ....

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Résultats

MEFs de type sauvage et PP2A-B56γ-souris ont été ensemencées dans une chambre de 2 puits couvercle en verre et autorisés à fixer. Jour 2, MEFs ont été synchronisées à l’aide de 0,1 % FBS pendant 24 h. Jour 3, MEFs dans les médias, avec 200 ng/mL nocodazole et 30 CL de PPC-HB regentwere incubés pendant 18 h à 37° C et 5 % CO2. Jour 4, les cellules ont été projetés en utilisant un système de microscope confocal de disque de rotation (Figure 1

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Discussion

Points de contrôle de contrôle cycle cellulaire qui assurent la ségrégation des chromosomes précis empêchent aneuploïdie et cell transformation 1,2,3. Dans la présente étude, nous avons trouvé que l’inactivation de PP2A-B56γ a donné lieu à un poste de contrôle de l’Assemblée broche affaibli. L’imagerie de cellules vivantes nous a permis d’observer la mis-ségrégation chromosomique au cours de la mitose chez MEFs PP2A-B56γ traités.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont aucun intérêt financier concurrentes.

Remerciements

Nous tenons à remercier Dr Guo-Chiuan Hung et m. Bharatkumar Joshi de précieux commentaires qui ont amélioré le manuscrit.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
DMEM/F12Gibco11320082
L-GlutamineGibco25030081
MEM Solution d’acides aminés non essentiels (100X)Gibco11140050
Pénicilline-Streptomycine (10 000 U/mL)Gibco15140122
Dulbecco' s Phosphate Saline tamponnéeGibco14190144
Trypsine-EDTAGibco25300054
Sérum fœtal bovinAtlanta BiologicalsS11150
DMSOEMD MilliporeMX 1458-6
Boîtes de conservation de flacons cryogéniquesFisherbrand10-500-28
Flacons cryogéniquesCorning/costar431416
Fioles T75Cellstar658175
2 verre de couverture bien chambréNunc155380PK
Cellomètre Vision Cell ProfilerNexcelom Bioscience LLCCellomètre Vision Trio
NocodazoleSigmaM1404
CellLight Histone 2B-GFP, BacMam 2.0Thermo Fisher Scientific Inc.C10594
Zeiss Cell Observer Système de microscope confocal à disque rotatifMicroscopie Carl Zeiss ZeissCell Observer SD
Bain-marieThermoscientificsérie
IncubateurSanyo solutions commercialesMCO-18AIC (UV)
Classe II Armoire de sécurité biologiqueThe Baker CompanySterilGard
Logiciel AxiovisionZeissVer.4.8.2
Logiciel ImageJnational de la santéVer. 1.51r
280 Institut

Références

  1. Funk, L. C., Zasadil, L. M., Weaver, B. A. Living in CIN: Mitotic Infidelity and Its Consequences for Tumor Promotion and Suppression. Dev Cell. 39, 638-652 (2016).
  2. Etemad, B., Kops, G. J. Attachment issues: kinetochore transformations and s....

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Réimpressions et autorisations

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